ارزیابی خاصیت ضد قارچی عصاره های میوه آستراگالوس کرناتوس و صمغ ترنجبین ایرانی بر روی گونه های کاندیدیایی جدا شده از شیر گاوهای مبتلا به ورم پستان تحت بالینی
الموضوعات : پاتوبیولوژی مقایسه ای
منصوره پاک نژادی
1
(دکترای تخصصی قارچ شناسی، استادیار گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم پایه دانشگاه ازاد اسلامی واحد شهر قدس)
بهاره همت یار
2
(گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم پایه، واحد شهر قدس، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران)
حمیرا سیده سلیمانی
3
(گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم پایه، واحد شهر قدس، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران)
الکلمات المفتاحية: ورم پستان تحت بالینی, گونه های کاندیدا, صمغ ترنجبین, میوه آستراگالوس کرناتوس, PCR-RFLP,
ملخص المقالة :
تشخیص و درمان مناسب ورم پستان تحت بالینی کاندیدیایی می تواند تأثیر بسزائی در سلامت گاوهای شیری و محصولات لبنی داشته باشد. اما عوارض جانبی داروهای ضد قارچی، به عنوان اصلی ترین محدودیت درمانی در حوزه دامپزشکی شناخته شده است. لذا هدف از مطالعه حاضر، شناسایی مولکولی گونه های کاندیدیایی در شیر گاوهای مبتلا به عفونت تحت بالینی و ارزیابی اثر ضد قارچی عصاره میوه آستراگالوس کرناتوس و صمغ گیاه خارشتر (ترنجبین) ایرانی می باشد. در این مطالعه از 70 شیر خام، 32 نمونه براساس افزایش تعداد سلولهای سوماتیک انتخاب شدند. سپس شناسایی اولیه و قطعی گونه های کاندیدا به ترتیب با استفاده از محیط کروموژنیک و PCR-RFLP انجام شد. درنهایت، اثر عصاره های اتانولی و متانولی (غلظت 1000، 500 و 250 mg/ml) هر دو گیاه، توسط روشهای چاهک و دیسک گذاری ارزیابی شدند. یافته ها نشان داد که از 15 نمونه مثبت، گونه های غیرآلبیکنس شامل کاندیدا کفیر، کاندیدا فاماتا و مخلوط آنها، فراوانی بیشتری (33/93%) نسبت به کاندیدا آلبیکنس (67/6%) داشتند. براساس سنجش خاصیت ضد قارچی، میانگین اثر مهاری نیستاتین بر کاندیدا فاماتا (6/28 میلیمتر)، آلبیکنس (7/26 میلیمتر) و کفیر (8/25 میلیمتر) نشان دهنده حساسیت هر سه گونه بدون تفاوت معنا دار (171/0= P-value) بود. درحالیکه، غلظتهای تهیه شده از هر دو عصاره، دارای اثر قابل توجهی در مقایسه با نیستاتین نبودند. با توجه به تنوع عوامل دخیل در کیفیت و میزان اثر ترکیبات گیاهی بر پاتوژنهای حیوانی، شناسایی گسترده تر بر روی فاکتورهای محیطی و ترکیبات ضد قارچی مستخرج از میوه آستراگالوس کرناتوس و صمغ ترنجبین ایرانی ضروری می باشد.
1. Hizlisoy H, Ertas Onmaz N, Al S, Karadal F, Yildirim Y, Gonulalan Z, Gumussoy KS, Aydemir GD, Kasap Tekinsen F, Dinc G. Clonal diversity and antifungal susceptibility of Candida spp. recovered from cow milk. Mljekarstvo: časopis za unaprjeđenje proizvodnje i prerade mlijeka. 2020 Jan 8; 70(1): 40-9.
2. Tomanić D, Kladar N, Radinović M, Stančić I, Erdeljan M. Intramammary Ethno-Veterinary Formulation in Bovine Mastitis Treatment for Optimization of Antibiotic Use. Pathogens. 2023 Feb 6; 12(2): 259.
3. Dolgun HT, Kirkan Ş. Investigation of the Efficacy and Antifungal Drug Resistance of Non-Albicans Candida Species in Mycotic Mastitis. Harran Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi. 2022; 11(1): 113-119.
4. Morales-Ubaldo AL, Rivero-Perez N, Valladares-Carranza B, Velázquez-Ordoñez V, Delgadillo-Ruiz L, Zaragoza-Bastida A. Bovine mastitis, a worldwide impact disease: prevalence, antimicrobial resistance, and viable alternative approaches. Veterinary and Animal Science. 2023 Jul 24: 21; 100306.
5. Akdouche L, Aissi M. Prevalence and Identification of Yeasts Responsible for Mastitis in Dairy Cattle Farms in the Sidi Lahcene Region in the Wilaya of Sidi Bel abbes-Algeria. Advances in Dairy Research. 2018; 6: 206.
6. Ariton AM, Poroșnicu I, Neculai-Văleanu AS, Crivei IC, Sănduleanu C, Postolache AN, Trincă LC. Strategies for identifying and preventing fungal mastitis in dairy cows. Scientific Papers Animal Science and Biotechnologies. 2022; 55(2): 104-112.
7. Krukowski H, Lassa HE, Zastempowska E, Smulski SE, Bis-Wencel H. Etiological agents of bovine mastitis in Poland. Medycyna Weterynaryjna. 2020 Apr 1; 76(04): 221-225.
8. Erbas G, Parin U, Kirkan Ş, Savaşan S, ÖZavci MV, Yüksel HT. Identification of Candida strains with nested PCR in bovine mastitis and determination of antifungal susceptibilities. Turkish Journal of Veterinary & Animal Sciences. 2017; 41(6): 757-763.
9. Bakr EM, El-Tawab AE, Elshemey TM, Abd-Elrhman AH. Diagnostic and Therapeutic Studies on Mycotic Mastitis in Cattle. Alexandria Journal for Veterinary Sciences. 2015 Jul 1; 46(1): 138-145.
10. Raheel IA, Hassan WH, Salam HS, Abed AH, Salem SS. Recovery rate of fungal pathogens isolated from cases of bovine and ovine mycotic mastitis. Journal of Veterinary Medical Research. 2023 Mar 16 (In Press).
11. Du J, Wang X, Luo H, Wang Y. Epidemiological investigation of non-albicans Candida species recovered from mycotic mastitis of cows in Yinchuan, Ningxia of China. BMC veterinary research. 2018 Dec; 14:1-9.
12. Naisi S, Bayat M, Salehi Z, Zarif R, Yahyaraeyat R. In vitro effect of carotenoid pigment of Rhodotorula glutinis on Staphylococcus aureus isolated from bovine Mastitis. Journal of Comparative Pathobiology. 2022 May 22; 19(1): 3773-82.
13. Hadi Z, Ferdousi A, Paknejadi M. Effects of Thymus daenensis essential oil-loaded chitosan nanoparticles on BCR1 gene expression in Candida parapsilosis. Archives of Razi Institute. Articles in Press, Accepted Manuscript Available Online from 24 February 2024.
14. Caneschi A, Bardhi A, Barbarossa A, Zaghini A. Plant Essential Oils as a Tool in the Control of Bovine Mastitis: An Update. Molecules. 2023 Apr 13; 28(8): 3425.
15. Cao G, Liu J, Liu H, Chen X, Yu N, Li X, Xu F. Integration of Network Pharmacology and Molecular Docking to Analyse the Mechanism of Action of Oregano Essential Oil in the Treatment of Bovine Mastitis. Veterinary Sciences. 2023 May 14;10(5): 350.
16. Amsaveni S, Ramesh S, Hariharan P. Anti candidal activity of plant extracts against bovine mastitis isolates. Tamilnadu journal of veterinary and animal sciences. 2012; 8(2): 72-75.
17. Sukumar K, James PC. Antifungal activity of plant extracts against fungal isolates from bovine mastitis. Tamilnadu Journal of Veterinary and Animal Sciences. 2012; 8(3): 115-118.
18. Touza-Otero L, Landin M, Diaz-Rodriguez P. Fighting antibiotic resistance in the local management of bovine mastitis. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2024 Jan 1; 170: 115967.
19. Sadeghi Z, Alizadeh Z, Moridi Farimani M. Recent reports in the biggest herbal genus, Astragalus, in Iran; with a special viewpoint on tragacanth gum production. Natural Product Research. 2023 Jul 6:1-9.
20. Ali SA, Avinash A, Kumar B, Kulshrestha R, Kapur D, Prabhat SK. Efficacy of Astragallus stragallus extract against S. mutans and C. albicans in vitro Study. International Journal of Recent Scientific Research. 2019; 10(05): 32417-32420.
21. Ionkova I, Shkondrov A, Zarev Y, Kozuharova E, Krasteva I. Anticancer Secondary Metabolites: From Ethnopharmacology and Identification in Native Complexes to Biotechnological Studies in Species of Genus Astragalus L. and Gloriosa L. Current Issues in Molecular Biology. 2022; 44: 3884-3904.
22. Zainali H, Tawakli M, Kamalion AR, Noorzad-Moghadam M, Ahmadi K, Pourianjad F, Pourali P. Acquaintance with Camelthorn medicinal plant and its production method. Medicinal Plants Plan of Ministry of Agriculture Jihad. 2018: 1-42.
23. Neamah NF. A pharmacological evaluation of aqueous extract of Alhagi maurorum. Global Journal of Pharmacology. 2012; 6(1): 41-6.
24. Zain ME, Awaad AS, Al-Outhman MR, El-Meligy RM. Antimicrobial activities of Saudi Arabian desert plants. Phytopharmacology. 2012; 2(1): 106-13.
25. Al-Snafi AE, Al-kamel ML, Esmael ME. Antifungal effect of Alhagi maurorum phenolic extract. IOSR Journal of Pharmacy. 2019; 9(8): 7-14.
26. Sulaiman GM. Antimicrobial and cytotoxic activities of methanol extract of Alhagi maurorum. African Journal of Microbiology Research. 2013; 7(16): 1548-1557.
27. Eldesouky I, Mohamed N, Khalat D, Salama A, Elsity A. Candida Mastitis in Dairy Cattle with Molecular Detection of Candida albicans. Kafkas Üniversitesi Veteriner FakÜltesi Dergisi. 2016; 22(3): 461-464.
28. Fadda ME, Pisano MB, Scaccabarozzi L, Mossa TV, Deplano M, Moroni P, Liciardi M, Cosentino S. Use PCR-restriction fragment length polymorphism analysis for identification yeast species isolated from bovine intramammary infection. Journal of dairy science. 2013 Dec 1; 96(12): 7692-7697.
29. Paknejadi M, Mansour Bayat M, Razavilar V. Investigating the Frequency of Candida glabrata in Diabetic Women of Tehran with Recurrent and Non-recurrent Vulvovaginal Candidiasis Using PCR-RFLP Assay. Journal of Medical Microbiology and Infectious Diseases, 2019, 7 (1-2): 44-51.
30. Sharifi H, Badaghabadi M, Sardooei MA, Kataj JK, Babaei H. Cumulative incidence of mastitis in dairy herds in Tehran province. Journal of Veterinary Research. 2016; 71(3): 271-273.
31. Cİlvez P, Turkyİlmaz S. Molecular diagnosis of Candida species isolated from cases of subclinical bovine mastitis. Israel Journal of Veterinary Medicine. 2019; 74(3): 134-140.
32. Khalaf DD, Soliman MM, Mansour AS. Conventional and molecular identification of mycotic mastitis caused by Candida in farm animals. International Journal of Veterinary Science. 2021; 10(1): 64-8.
33. Milanov D, Prunic BO, Velhner MA, Bojkovski J. Diagnosis of yeast mastitis in dairy cows. Lucrari Stiintifice Medicina Veterinara. 2014; 47 (1): 56-64.
34. Reda M, Eltamany EE, Ahmed S. Antimicrobial and Antifungal Activities of Alhagi maurorum Crude Extract and Its Fractions. Records of Pharmaceutical and Biomedical Sciences. 2023 Jan 1; 7(2): 128-30.
35. Abd-Ellatif S, Abdel Rahman SM, Deraz SF. Promising antifungal effect of some folkloric medicinal plants collected from El-Hammam habitat, Egypt against dangerous pathogenic and toxinogenic fungi. ARPN Journal of Agricultural and Biological Science. 2011 Sep; 6(9): 25-32.
36. Mehrnia M, Maassoumi AA. Distribution of Astragalus Spp. in Lorestan Province. Taxonomy and Biosystematics. 2017; 9(32): 65-78.
37. Mirzaeea-ghchegheshlagh F, Ghorbani A, Seifdavati J, Mehdizadeh S, Valizadeh-youjnali R. Determination of nutritional value and degradability of dry matter and cell walls of Astragalus crenatus Schult at different phenological stages in Hir-Neor rangelans of Ardabil province. Journal of Rangeland. 2015; 9(1): 14-28.
38. Ashour MA. Comparative chemical and biological investigations of three Saudi Astragalus species. Journal of Applied Biology and Biotechnology. 2019 Sep 10; 7(5): 56-61.
39. Mikaeili A, karimi I, shamspur T, Gholamine B, Modaresi M, et al. Anti- candidal actinity of Astragalus verus in the vitro and in vivo guinea Pig models of cutaneous and systemic candidiasis. Revista Brasileira de Farmacognosia. 2012; 22(5): 1035-1043.
40. Çaçan E, Kiliç Ö, Kökten K. Determination of Macro, Micro Element and Heavy Metal Contents of Astragalus Taxa Collected from Nature. Tekirdağ Ziraat Fakültesi Dergisi. 2023; 20(2): 334-42.
