تاثیر سلول های بنیادی آندومتریال به همراه داروی پومالیدوماید بر میزان گلوتاتیون و لیپید سرمی در پارکینسون القاء شده توسط 6-‌هیدروکسی‌دوپامین در رت نر نژاد ویستار

الموضوعات : فصلنامه زیست شناسی جانوری

الهام قاسمی دلیگانی ¹ (گروه زیست شناسی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران)
مریم خسروی ² (گروه زیست شناسی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران)
محمود سلامی زواره ³ (مرکز تحقیقات فیزیولوژی–دانشگاه علوم پزشکی کاشان، ایران)
رامین حاجی خانی ⁴ (گروه زیست شناسی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران)

تاريخ الإرسال : 27 السبت , محرم, 1443 تاريخ التأكيد : 24 السبت , ربيع الأول, 1443 تاريخ الإصدار : 25 الثلاثاء , محرم, 1444

الکلمات المفتاحية: پارکینسون, گلوتاتیون, 6-‌هیدروکسی‌دوپامین, سلول های بنیادی آندومتریوم, پومالیدوماید, لیپیوپروتئین با دانسیته پایین,

ملخص المقالة :

بیماری پارکینسون، دومین بیماری شایع نورودژنراتیو مرتبط با سن می باشد که تاکنون، روش درمانی موثری برای این بیماری شناخته نشده است. هدف از این تحقیق بررسی اثرات سلول های بنیادی آندومترانسانی به همراه داروی ضدالتهاب پومالیدوماید بر میزان گلوتاتیون (GSH) و لیپیدهای سرمی (کلسترول تام TCو لیپیوپروتئین با دانسیته پایینLDL:) در مدل پارکینسونی رت نر نژاد ویستار می باشد. 40 سر رت نر به صورت تصادفی به 5 گروه (8 حیوان در هر گروه) شامل: کنترل، پارکینسونی و 3 گروه تجربی پارکینسونی دریافت‌کننده سلول های بنیادی، پومالیدوماید و ترکیب سلول های بنیادی و پومالیدوماید تقسیم شدند. القای پارکینسون با تزریق 6- هیدروکسی دوپامین (غلظت 6 میکروگرم) در جسم مخطط به روش استریوتاکسی انجام شد. در هفته چهارم پس از جراحی، گروه های تجربی سه گانه، به ترتیب با4 میلی گرم بر کیلو گرم روزانه داروی پومالیدوماید، یکبار تزریق 100000 سلول بنیادی آندومتریال و ترکیب پومالیدوماید با دوز 4 میلی گرم بر کیلو گرم روزانه و تزریق سلول بنیادی آندومتریال به تعداد 100000 سلول طی مدت 28 روز تیمار شدند در پایان روز 28، از گروه‌ها نمونه خونی تهیه و فاکتورها سنجش شدند. نتایج نشان داد که افزایش معناداری در گلوتاتیون میان گروه های تیمارشده در مقایسه با گروه پارکینسونی وجود دارد. همچنین کاهش معناداری در گلوتاتیون گروه پارکینسونی در مقایسه با گروه کنترل مشاهده گردید. مقایسه میان گروه پارکینسونی و گروه تیمار شده با ترکیب پومالیدوماید و سلول های آندومتری بنیادی، کاهش معناداری را در میزان کلسترول نشان داد. سنجش میزان LDL نیز، کاهش معنادار میزان LDL در گروه های تیمار شده را در مقایسه با گروه پارکینسونی نشان داد. با توجه به بهبودنسبی فاکتورهای مورد سنجش در موش های پارکینسونی می توان از سلول های بنیادی آلوژنیک به عنوان منبعی بالقوه در تحقیقات آینده برای درمان بیماری پارکینسون همراه با داروی پومالیدوماید استفاده نمود.

المصادر:

1. Adibhatla R.M., Hatcher J.F. 2007. Role of lipids in brain injury and diseases. Future lipidology, 2(4): 403-422.


2. Ai J., Shahverdi A.R., Barough S.E., Kouchesfehani H.M., Heidari S. Derivation of adipocytes from human endometrial stem cells (EnSCs). Journal of Reproduction and Infertility, 13(3): 151.


3. Andican G., Konukoglu D., Bozluolcay M., Bayülkem K., Firtiına S., Burcak G. 2012. Plasma oxidative and inflammatory markers in patients with idiopathic Parkinson’s disease. Acta Neurologica Belg., 112(2): 155-159.


4. Bagheri-Mohammadi S., Alani B., Karimian M., Moradian-Tehrani R., Noureddini M. 2019. Intranasal administration of endometrial mesenchymal stem cells as a suitable approach for Parkinson’s disease therapy. Molecular Biology and Reproduction, 46(4): 4293-4302.


5. Bagheri‐Mohammadi S., Karimian M., Alani B., Verdi J., Tehrani R.M. 2019. Stem cell‐based therapy for Parkinson’s disease with a focus on human endometrium‐derived mesenchymal stem cells. Journal of Cell Physiology, 234(2): 1326-1335.


6. da Conceição F.S., Ngo-Abdalla S., Houzel J.C., Rehen S.K. 2010. Murine model for Parkinson's disease: from 6-OH dopamine lesion to behavioral test. Journal of Visualized Experiments, 35: e1376.


7. Dominici M., Le Blanc K., Mueller I., Slaper-Cortenbach I., Marini F. 2006. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy, 8(4): 315-7.


8. Duke C.M., Taylor H.S. 2013. Stem cells and the reproductive system: Historical perspective and future directions. Maturitas, 76(3): 284-289.


9. Dunnett S.B., Björklund A., Lindvall O. 2001. Cell therapy in Parkinson's disease–stop or go?. Nature Reviews Neurrology, 2(5): 365-369.


10. Fearnley J.M., Lees A.J. 1991. Ageing and Parkinson's disease: substantia nigra regional selectivity. Brain, 114(5): 2283-2301.


11. Gregório M.L., Pinhel M.A., Sado C.L., Longo G.S., Oliveira F.N. 2013. Impact of genetic variants of apolipoprotein E on lipid profile in patients with Parkinson's disease. BioMedical Research International, 641515.


12. Hammond C.L., Lee T.K., Ballatori N.J. 2001. Novel roles for glutathione in gene expression, cell death, and membrane transport of organic solutes. Journal of Hepatolog, 34(6): 946-54.


13. Harris V.K., Stark J., Vyshkina T., Blackshear L., Joo G. 2018. Phase I trial of intrathecal mesenchymal stem cell-derived neural progenitors in progressive multiple sclerosis. EBioMedicine, 29: 23-30.


14. Huang X., Auinger P., Eberly S., Oakes D., Schwarzschild M. 2011. Serum cholesterol and the progression of Parkinson's disease: results from DATATOP. PLoS One, 6(8): e22854.


15. Kandel E.R., Schwartz J.H., Jessell TM., 2000. Principles of neural science. 4th ed.McGraw-hill New York.


16. Kitada M., Dezawa M. 2012. Parkinson's disease and mesenchymal stem cells: potential for cell-based therapy. Parkinson’s Disease, 2012: 873706.


17. Kundu S., Ghosh P., Datta S., Ghosh A., Chattopadhyay S., Chatterjee M. 2012. Oxidative stress as a potential biomarker for determining disease activity in patients with rheumatoid arthritis. Free Radical Research, 46(12): 1482-1489.


18. Lindvall O., Kokaia Z. 2009. Prospects of stem cell therapy for replacing dopamine neurons in Parkinson's disease. Trends of Pharmacological Sciences, 30(5): 260-267.


19. Lindvall O., Kokaia Z. 2006. Stem cells for the treatment of neurological disorders. Nature, 441(7097): 1094-1096.


20. Maria S., Helle B., Tristan L., Gaynor S., Arnar A., et al. 2013. Improved cell therapy protocol for Parkinson’s disease based on differentiation efficiency and safety of hESC-, hiPSC and non-human primate iPSC-derived DA neurons. Stem Cells, 31(8): 1548.


21. Parmar M. 2018. Towards stem cell based therapies for Parkinson's disease. Development, 145(1): 156117.


22. Paxinos G., Watson C. 2006. The rat brain in stereotaxic coordinates: hard cover edition. Elsevier.


23. Salama M., Sobh M., Emam M., Abdalla A., Sabry D. 2017. Effect of intranasal stem cell administration on the nigrostriatal system in a mouse model of Parkinson's disease. Experimantal Therapy Medicine, 13(3): 976-982.


24. Su P., Loane C., Politis 2011. The Use of Stem Cells in the Treatment of Parkinsons Disease. Insciences Journal, 1(3): 136-156.


25. Sugiyama K., Ohishi K., Muramatsu K., Chemistry B. 1987. Effects of dietary glutathione on plasma and liver lipid levels in rats fed on a high cholesterol diet Agricultural Biological Chemistry, 51(6): 1601-1606.


26. Trupp M., Jonsson P., Öhrfelt A., Zetterberg H., Obudulu O. 2014. Metabolite and peptide levels in plasma and CSF differentiating healthy controls from patients with newly diagnosed Parkinson's disease. Journal of Parkinson's Disease, 4(3): 549-560.


27. Valera E., Mante M. ,Anderson S., Rockenstein E., Masliah E. 2015. Lenalidomide reduces microglial activation and behavioral deficits in a transgenic model of Parkinson’s disease. Journal of Neuroinflammation, 12(1): 93.


28. Wang J.Y., Huang Y.N., Chiu C.C., Tweedie D., Luo W. 2016. Pomalidomide mitigates neuronal loss, neuroinflammation, and behavioral impairments induced by traumatic brain injury in rat. Journal of Neuroinflammation., 13(1): 1-17.


29. Xia R., Mao Z.H. 2012. Progression of motor symptoms in Parkinson’s disease. Neuroscience Bulletin, 28(1): 39-48.