• صفحه اصلی
  • بررسی آناتومی کلیه و میکروسکوپی لوله های در هم پیچیده دور و نزدیک بخش میانی و خلفی بافت کلیه در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) و اسکار (Astronotus ocellatus)

اشتراک گذاری

آدرس مقاله


کد مقاله : 18483 بازدید : 48 صفحه: 3287 - 3298

نوع مقاله: پژوهشی

بررسی آناتومی کلیه و میکروسکوپی لوله های در هم پیچیده دور و نزدیک بخش میانی و خلفی بافت کلیه در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) و اسکار (Astronotus ocellatus)

محورهای موضوعی : پاتوبیولوژی مقایسه ای

سحر محمدعلی پور 1 (.دانشکده دامپزشکی واحد علوم و تحقیقات دانشگاه آزاد اسلامی تهران ایران)
ایرج پوستی 2 (عضو هیئت دانشگاه علوم و تحقیقات)
سعید حصارکی 3 (واحد علوم و تحقیقات دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران)

تاریخ دریافت : 1400/08/10 تاریخ پذیرش : 1400/08/10 تاریخ انتشار : 1399/09/01

کلید واژه: بافت شناسی, آناتومی, کلیه, قزل آلای رنگین کمان, اسکار,

چکیده مقاله :

پژوهش حاضر به منظور، مقایسه آناتومی بافت کلیه و بافت شناسی لوله های پروکسیمال(I وII) و دیستال در دو گونه ماهی قزل آلای رنگین کمان و اسکار انجام شد. قزل آلای رنگین کمان(Rainbow trout)، با نام علمی Oncorhynchus mykiss، از خانواده Salmonidae که جز ماهیان پرورشی و سرد آبی است و اسکار(Oscar) با نام علمی Astronotus ocellatus ، از شناخته شده ترین ماهی های زینتی از خانواده Chichlidae است که از لحاظ تجاری باارزش می باشد. پنج قطعه از هر دو گونه ماهی به صورت تصادفی انتخاب و خصوصیات ماکروسکوپیک و اندازه گیریهای مورفومتریک آنها (Morphometric measurement) ثبت شد. نمونه ها در فرمالین بافر10% فیکس و برشها با ضخامت پنج میکرون آماده سازی شدند و سپس به روش هماتوکسیلن و ائوزین و پریودیک اسید شیف رنگ آمیزی و توسط میکروسکوپ نوری مورد مطالعه قرار گرفتند. داده های حاصل از آزمایش، با نرم افزار SPSS و آزمون آماری T-Test (P<0/05)مورد تجزیه و تحلیل آماری قرار گرفت. لوله های پروکسیمال و دیستال شناسایی و متغیرها مورد اندازه گیری قرار گرفتند. اندازه هسته سلولهای لوله پروکسیمال I و اندازه قطر خارجی آن در بین دو گونه اختلاف معناداری وجود دارد(P<0/001). از نظر تعداد، اندازه سلول، اندازه هسته، اندازه قطر خارجی و قطر داخلی (لومن) لوله های پروکسیمال II اختلاف معناداری وجود دارد (P<0/001). در بین تعداد و اندازه سلول لوله های دیستال اختلاف معناداری وجود دارد(P<0/001). در هر دو گونه ماهی اندازه هسته، قطر خارجی و داخلی (لومن) لوله های دیستال اختلاف معناداری وجود دارد (P<0/001). با توجه به نتایج بدست آمده، آناتومی و بافت شناسی بافت کلیه در ماهی قزل آلای رنگین کمان و اسکار تفاوت دارد.

چکیده انگلیسی:

The present study was conducted to compare the histology of renal proximal tubules (I) and (II) in two species (Rainbow trout and Oscar). Rainbow trout, known as Oncorhynchus mykiss scientific name from the Salmonidae family which is cultivated and freshwater. Oscar fish, the scientific name is Astronotus Ocellatus, which is one of the most well-known ornamental fish of the Chichlidae family. Five piece of the two fish species were selected randomly and their macroscopic specification and morphometric measurements were recorded. Samples were fixed in %10 formalin buffer and the cuts were prepared with a thickness of five micron and then they were stained by Hematoxylin and eosin and Periodic acid–Schiff method and studied by light microscopy. The data were analyzed with SPSS software and T-Test statistical test (P <0.05). Proximal and distal tubes were detected and the variables were measured. The size of the cell nucleus and the outer diameter of the proximal (I) had a significant difference (P<0.01). There has been significant difference in the number and the size of cell and its nucleus, the inner and outer diameter of the proximal II between two species (P<0.001). The number, cell size of the distal tubules has been significant difference between two species (P<0.01). The size of the cell nucleus, the inner and outer diameter of the distal tubules have been significant difference between two species (P<0.001). According to the results, the anatomy and histology of kidney tissue are different in the Rainbow trout and Oscar fish. 

منابع و مأخذ:


  1. Schlenk D. , Benson W.H. New Perspectives: Toxicology and the Environment: Target Organ Toxicity in Marine and Freshwater Teleosts. CRC Press, Taylor & Francis Us. 2001; 93-98
    2.
  2. Baltz D. M. Introduced fishes in marine systems and inland seas. Biological Conservation, 1991; 56: 151-177.
    3.
  3. Pronek N. translated by Emami F & Heidaripour S. Oscars. Scientific-Research Journal of Experimental Animal Biology. 2015; 4:12-41, 56-61
    4.
  4. Morovvati H , Khaksary Mahabady M , Mesbah M, Fakoori R. Anatomical and histological study of kidney in Barbus grypus. Journal of Marine Science and Technology, 2017; 16(2): 49-61
    5.
  5. Takashima F. An atlas of fish histology: Normal and pathological features. 2nd ed, 8th chapter. 1994; 171-174, 294-303.
    6.
  6. Roberts, R. J. Fish pathology. 4th ed. Wiley-Blackwell publishing Ltd. Chapter2: the anatomy and physiology of teleosts. 2012; 35-90
    7.
  7. Roomiani E, Abdi R, Zolgharnein H, Savari A, Morovvati H. Localization and Effect of Hyper and Hypo-osmotic Environments on Distribution of Na+, K+- ATPase in Kidney Tubules of Juveniles of (Epinephelus coioides) Na+/K+-ATPase Epinephelus Coioides . Journal of Cell & Tissue (JCT). 2012; 2(4): 407-414
    8.
  8. Eslami M., Movahedinia A., Rounagh M. Study of anatomical variety and tissue structure of kidney in som  fish  spicies  from  the  north  of  the Persian  Gulf. Aquatic Ecology Magazine. 2016; 8(1); 104-112
    9.
  9. Anthony L. Mescher, McGraw Hill NY, Text and Atlas: Junquiera’s Basic Histology,13 th ed.2013;1-5,385-401
    10.
  10. Krayushkina L. S. Characteristics of osmotic and ionic regulation in marine diadromous sturgeons Acipenser brevirostrum and Acipenser oxyrhynchus (Acipenseridae). Ichthyology, 1998; 38: 660 -668.
    11.
  11. Cataldi E., Garibaldi L., Crosetti D., Leoni C.& Cataudella S. Variations in renal morphology during adaptation to salinities in tilapia. Environmental Biology of Fishes, 1999; 31: 101-106.
    12.
  12. Charmi A., Parto P., Bahmani M. and Kazemi R. Morphological and Histological Study of Kidney in Juvenile Great Sturgeon (Huso huso) and Persian Sturgeon (Asipenser persicus). Agricltural and Enviromental Sciences, 2010; 7: 505-511
    13.
  13. Morovvati H., Erfanimajd N., Peyghan R., Mobaraki GH. Histological Study of Exceretory portion of kidney in Grass Carp (Ctenopharygodon Idella). Scientific Research Iranian Veterinary Journal. 2011; 4 (29):25-32
    14.
  14. Tang C. H., Wu W. Y., Tsai S. C., Yoshinaga T. and Lee, T. H. Elevated Na+/K+-ATPase responses and its potential role in triggering ion reabsorption in kidneys for homeostasis of marine euryhaline milkfish (Chanos chanos) when acclimated to hypotonic fresh water. Comparative Physiology and Biochemistry, 2010; 180: 813 -824.
    15.
  15. Khalil R. M. Histological studies on the kidneys of the red sea Syngnathiformes fishes. Society of Zoology Egyptian Bulletin, 1979; 29: 28-36.
    16.
  16. Tojar S., khodadadi M., Javaheri M. Compare the appropriate doses of three anesthetics: 2-phenoxyethanol, clove extract and PI22 in silver carp. Journal of Marine Science and Technology Research.  2011; 6(3): 41-52
    17.
  17. Kessel R.G. Basic medical histology: The Biology of Cells tissue and organs. New York: Oxford University Press. Chapter 1 and 2. 1998; 1-4, 452-469
    18.
  18. Bancroft J.D. & Gamble M. Theory and practice of histological techniques. Fifth edition, 2002; 80,85-97,113,153.
    19.

 

  1. Luna HT. Manual of Histologic Staining of the armed forces institute of pathology. New York: Blackiston Division: mc grow hill. 3th ed. 1968;1-46
    2.
  2. Ostrandef G. K. The laboratory, 1st ed. Diego Academic press. 2000.
    3.
  3. Lőw P.; Molnár K. & Kriska G. Atlas of Animal Anatomy and Histology. Springer Cham Heidelberg New York Dordrecht, London Springer International Publishing Switzerland, 2016; ix
    4.
  4. Aughey E. & L Frye,F. Comparative veterinary histology with clinical correlates. Manson publishing, CRC Press , 2001;137-142
    5.
  5. Mumford S., Heidel J., Smith C., Morrison J., MacConnell B & Blazer V. Fish histology and histopathology. Chapter2, 2007p:1-10
    6.
  6. Krayushkina L. S., Panov A. A., Gerasomov A. A. & Potts W. T. W. Changes in sodium, calcium and magnesium ion concentrations in sturgeon (Huso huso) urine and in kidney morphology. Comparative Physiology and Biochemistry, 1996; 165: 527-533.
    7.
  7. Baustian M. D. and Beyenbach K. W. Natriuretic peptides and the acclimation of aglomerular toadfish to hypo-osmotic media. Compparative Physiology and Biochemistry, 1979;169: 507-514.
    8.
  8. Miraali A, Movahedinia E, Abdi R, Salati EP. Investigation of the tissue structure of all Sparidentex hasta. Scientific-Research Journal of Marine Biology, Ahvaz Branch. 2013; 5(18); 71-80
    9.
  9. Khodabandeh S., Khoshnood Z. and Mosafer S. Immunolocalization of Na+/K+- ATPase-rich cells in the gill and urinary system of Persian sturgeon (Acipenser persicus), fry. Aquaculture Research, 2009; 40: 329 -336.
    10.
  10. Chenari F, Morovvati H. , Ghazilou A. , Savari A. , Ronagh M. Rapid variation in kidney histology in spotted scat Scatophagus argus on exposed to abrupt salinity changes. Iranian Journal of Veterinary Research, 2011; 12( 3):256-259
    11.
  11. Heidari B, Avarjeh S, Taghavi Jelodar H. The combined effects of gradual changes in salinity and temperature on gill tissue of common carp (Cyprinuscarpio). Journal of Aquatic Physiology and Biotechnology. 2015; 2:80-94
    12.
  12. Azizi S, Kochanian P, Peyghan R, Khansari A, Darvish Bastami K. Effects of different salinities on histological changes of kidney in (Cyprinus carpio L.). Journal of Animal Environment, 2010;1(3):47-50
    13.

 

_||_

مقالات مرتبط

حقوق این وب‌سایت متعلق به سامانه مدیریت نشریات دانشگاه آزاد اسلامی است.
حق نشر © 1403-1400

صفحه اصلی| عضویت/ ورود| درباره سند| تماس با ما|
[English] [العربية] [en] [ar]