استفاده از تکنیک ایمونوهیستوشیمی برای شناسایی آنتی ژن آدنوویروس در مقاطع بافتی پارافینه متعلق به ریه بزهای مبتلا به پنومونی

محورهای موضوعی : ویروس شناسی

کیوان جمشیدی ¹

1 - گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد گرمسار

تاریخ دریافت : 1399/06/07 تاریخ پذیرش : 1400/03/20 تاریخ انتشار : 1400/12/01

کلید واژه: ایمونوهیستوشیمی, آدنوویروس, بز, ریه,

چکیده مقاله :

بیماری های موثر بر مجاری تنفسی گوسفند و بز یکی از مهم ترین فاکتورهای محدود کننده تولید در این گونه ها در سراسر جهان می باشند. هدف اصلی از مطالعه پیش رو تعیین و شناسایی آنتی ژن آدنوویروس (AdV) در بافت ریه متعلق به بزهای مبتلا به پنومونی، تثبیت شده در فرمالین و قالب گیری شده در پارافین با استفاده از تکنیک ایمونوهیستوشیمی می باشد. به همین منظور ریه های متعلق به 402 راس بز، که در مزارع دامپروری شهرستان های گرمسار و آرادان و مناطق اطراف پرورش داده شده و جهت کشتار بین ماه های فروردین تا شهریور سال 1398 به کشتارگاه نیمه صنعتی شهرستان گرمسار اعزام شدند مورد معاینات پس از کشتار قرار گرفتند. یافته های ماکروسکپیک پنومونی در لوب های مختلف بویژه در لوب های رأسی و کاردیاک ریه های متعلق به 26 رأس بز (46/6%) شناسایی و ثبت شد. درجات ملایم، متوسط و شدیدی کبدی شدن در ریه های پنومونیک به ترتیب در 8/59%، 3/26%، 6/11% ریه ها مشاهده شد. در معاینات میکروسکپی، پنومونی در بزهای مورد مطالعه تحت عناوین پنومونی بینابینی (15) (69/57%)، برونکوپنومونی چرکی (4) (38/15%)، پنومونی برونکواینترستیشیال (3) (53/11%)، و پنومونی انگلی (4) (38/15%) طبقه بندی شدند. در مجموع با حذف ریه های مبتلا به پنومونی انگلی، 22 ریه پنومونیک به منظور شناسایی آنتی ژن AdV تحت مطالعات میکروسکپی با استفاده از تکنیک ایمونوهیستوشیمی قرار گرفتند. آنتی ژن AdV در 3 مورد ریه (63/13%) شناسایی شد. در نهایت حضور آنتی ژن AdV در بافت ریه بزها می تواند بیانگر این نکته باشد که پنومونی طبیعی در بزها ممکن است با منشاء AdV بوجود بیاید. بعلاوه تصور می شود AdV می تواند به عنوان یک عامل مستعد کننده برای بروز پنومونی های باکتریایی ثانویه عمل کند.

منابع و مأخذ:

 Afshar, A. (1969): The occurence of precipitating antibodies to bovine adenovirus in sera of farm animals and man in Iran. Veterinary Record. 84: 571-572.

• Belak, S., V. Palfi, V. Palya (1976): Adenovirus infections in lambs, I. Epizootiology of the Zentralbl Veterinarmed B. 23: 320-330.


• Belak, S., V. Palfi (1974): An adenovirus isolated from sheep and its relationship to type 2 bovine adenovirus. Archiv für die gesamte Virusforschung. 46: 366-369


• Belak, S., F. Vetesi, V. Palfi, L. Papp (1980): Isolation of a pathogenic strain of ovine adenovirus type 5 and a comparison of its pathogenicity with that of another strain of the same serotype. Journal of Comparative Pathology. 90: 169-176.


• Biswas, S., S. Bandypadhyay, U. Dimiri, P. H. Patra (2013): Bovine herpesvirus-1 (BHV-1) - a re-emerging concern in livestock: a revisit to its biology, epidemiology, diagnosis, and prophylaxis. Veterinary Quarterly. 33: 68-81.


• Caswell, J., K. Williams (2007): Respiratory system. In: Jubb, Kennedy, and Palmers Pathology of Domestic Animals (Maxie, M., Ed.), Edinburgh, UK. Elsevier, pp. 594-


• Ceribasi, A. O., M. Ozkarca, S. Ceribaci, H. Ozer (2014): Histopathologic,
  immunoperoxidase and immunofluorescent examinations on natural cattle pneumonia originated from Parainfluenza type 3, Respiratory Syncytial virus, Adenovirus type 3 and Herpesvirus type 1. Revu e Med. Vet. 165: 201-212.


• Çeribasi Ali O., Çeribasi Songül, and Ozkaraca Mustafa. (2016). Immunohistochemical detection of bovine herpesvirus type 1 and bovine adenovirus type 3 antigens in frozen and paraffinized lung sections of pneumonic sheep and goats. VETERINARSKI ARHIV. 86: 9-21.


• Cutlip, R. C., H. D. Lehmkuhl (1983): Experimental infection of lambs with ovine adenovirus isolate RTS-15 1: Lesions. American Journal of Veterinary Research. 44: 2395-2402. PMID: 6318616


• Cutlip, R. C., H. D. Lehmkuhl (1986): Pulmonary lesions in lambs experimentally infected with ovine adenovirus 5 strain RTS-42. Veterinary Pathology. 23: 589-


• Cutlip, R. C., H. D. Lehmkuhl, K. A. Brogden, N. J. Hsu (1996): Lesions in lambs experimentally infected with ovine adenovirus serotype 6 and Pasteurella hemolytica. Journal of Veterinary Diagnostic Invest. 8: 296-


• Debey, B. M., H. D. Lehmkuhl, C. Chard Bergstrom, L. A. Hobbs (2001): Ovine adenovirus serotype 7-associated mortality in lambs in the United States. Veterinary Pathology. 38: 644 -


• Debey, S. C., D. V. Joshi, S. N. Sharma (1985): Serological evidence for ovine adenovirus antibodies in sheep, goats and bovine in Punjab. Indian Journal of Animal Sciences. 55: 652-653.


• Edwards, S., H. White, R. H. Newman, P. Nixon (1988): A veterinary services scheme for the rapid diagnosis of viral infections in ruminants, using immunofl uorescence. State Veterinary Journal. 42: 41-47.


• Forghani, B. (2010): Diagnosis by viral antigen detection. In: Lennettes Laboratory diagnosis of viral infections. (Jerome, K. R., Ed.), Informa Healthcare, pp. 113-132.


• Fulton, R. W., M. M. Downing, H. V. Hagstad (1982): Prevalence of bovine herpes virus-1, bovine viral diarrhea, parainfl uenza-3, bovine adenoviruses-3 and -7 and goat respiratory syncytial viral antibodies in goats. American Journal of Veterinary Research. 43: 1454-1457.


• Giuliani, S., R. Sharma (2013): Experimental infection of lambs with bovine herpesvirus type-1 (BHV-1). Veterinary Quarterly. 33:68–81, http://dx.doi.org/10.1080/01652176.2013.799301


• Gulbahar Y. M., Cabalar. M., Erturk A. (2003) Detection by immunoperoxidase technique of parainfluenza type-3 virus and respiratory syncytial virus antigens in naturally occurring pneumonia in lambs. Vet. Fak. Derg. 13: 74-77. DOI: 10.17094/ataunivbd.364602


• Gur S., T. Aydinoglu, Y. Akca (2008): Serologic investigation of respiratory viruses in captive Goitred Gazella (Gazella subgutturosa subgutturosa). Revu e Med. Vet. 159: 221-223.


• Haines, D. M., B. J. Chelack (1991): Technical considerations for developing enzyme immunohistochemical staining procedures on formalin-fixed parafin-embedded tissues for diagnostic pathology. Journal of Veterinary Diagnostic Invest. 3: 101-112. https://doi.org/10.1177/104063879100300128


• Jericho, K. W. F. (1983): Histological changes in the respiratory tract of calves exposed to aerosols of bovine herpesvirus 1 and Pasteurella haemolytica. Journal of Comparative Pathology. 93: 73-82. doi: 10.1016/0021-9975(83)90044-0.


• Karami, M. Evaluation and comparison of sheep housing characteristics on performance in village management system. Journal of Ruminant Researche. 1: 87-91


• Lehmkuhl, H. D., R. C. Cutlip, J. T. Meehan, B. M. Debey (1997): Pathogenesis of infection induced by an adenovirus isolated from a American Journal of Veterinary Research. 58: 608-611.


• Mahmoud, M. A., S. A. Ahmed (2009): Prevalence of bovine herpes virus-1 in sheep and goats in Egypt. Global 3: 472-479.


• Narita, M, K. Kimura, N. Tanimura, T. Tsuboi (2000): Pneumonia induced by endobronchial inoculation of calves with bovine herpesvirus 1. Journal of Comparative Pathology. 122: 185-192. PMID: 10684687 DOI: 1053/jcpa.1999.0358


• Narita, M., M. Yamada, T. Tuboi, K. Kawashima (2003): Bovine Adenovirus Type 3 Pneumonia in Dexamethasone-treated Calves. Veterinary Pathology. 40: 128-135. https://doi.org/10.1354/vp.40-2-128


• Nettleton, F., J. A. Herring, A. J. Herring (1983): Evaluation of an immunofluorescent test for the rapid diagnosis of field infections of infectious bovine rhinotracheitis. Veterinary Record. 112: 298-300. PMID: 6302972 DOI: 1136/vr.112.13.298


• Okurgumusova, S., Y. Akca (2002): Survey for antibodies against ovine adenoviruses (OAV-1,2,3,5) and bovine adenoviruses (BAV-1,2,3) in goats of Marmara region. Veterinary Journal. Ankara Univ. 49: 125-128. PMID: 8214895 


• Okurgumusova, S., Z. Yazici, H. Albayrak, D. Cakeroglu (2007): Seroprevalence of bovine viral respiratory diseases. Acta veterinaria. (Beograd) 57: 11-16 DOI: 10.2298/AVB0701011O


• Rushton, B., J. M. Sharp (1977): Pathology of ovine adenovirus type 4 infection in SPF Iambs: pulmonary and hepatic lesions. Journal of Pathology. 121: 163-167.


• Sharp, J. M., P. F. Nettelton (2007): Acute respiratory virus infections. In: Diseases of Sheep. (Aitken I. D., Ed.), Blackwell Publishing, pp. 207-208


• Stevenson, R. G. (1969): Immunofluorescence studies of parainflunza 3 virus in the lungs of Journal of Comparative Pathology. 79: 483-490. PMID: 4310873 DOI: 10.1016/0021-9975(69)90068-1


• Thiry, J., V. Keuser, B. Muylkens, F. Meurens, S. Gogev, A. Vanderpalsschen, Thiry (2006): Ruminant alpha herpesviruses related to bovine herpesvirus 1. Veterinary Research.121: 145-149 DOI: https://doi.org/10.1051/vetres:2005052


• Valizadeh R. 2010. Iranian sheep and goat industry at a glance. Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran. P.O. Box: 91775-1163,