بررسی فراوانی و الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی باکتری های آئروموناس هیدروفیلا و یرسینیا راکری جدا شده از ماهیان بیمار قزل آلای رنگین کمان پرورشی در استان چهارمحال و بختیاری

محورهای موضوعی : فصلنامه زیست شناسی جانوری

نیما پناهی فر ¹ , محسن پورنیا ² , رضا سلیقه زاده ³ , مرجان مسافر ⁴

1 - گروه دامپزشکی، واحد شوشتر، دانشگاه آزاد اسلامی، شوشتر، ایران
2 - گروه میکروبیولوژی، واحد مسجدسلیمان، دانشگاه آزاد اسلامی، مسجدسلیمان، ایران
3 - گروه دامپزشکی، واحد شوشتر، دانشگاه آزاد اسلامی، شوشتر، ایران
4 - گروه بیولوژی دریا، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران

تاریخ دریافت : 1401/06/23 تاریخ پذیرش : 1401/10/18 تاریخ انتشار : 1402/06/01

کلید واژه: قزل آلای رنگین کمان, آئروموناس هیدروفیلا, استان چهارمحال و بختیاری, حساسیت آنتی بیوتیک, یرسینیا راکری,

چکیده مقاله :

شناخت میزان مقاومت و حساسیت باکتری های مشکل ساز مانند یرسینیا راکری و آئروموناس هیدروفیلا در مزارع پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان، در انتخاب مناسب و صحیح آنتی بیوتیک و کنترل عفونت در استخرهای پرورشی نقش موثری دارد. در این مطالعه، تعداد یکصد قطعه ماهی بیمار از استخرهای پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان استان چهارمحال و بختیاری جمع آوری شده و پس از انجام تست های بیوشیمیایی و خالص سازی گونه های آئروموناس هیدروفیلا و یرسینیا راکری، با استفاده از تست PCR با پرایمرهای اختصاصی مورد تایید نهایی قرار گرفتند. حساسیت آنتی بیوتیکی باکتری ها با روش انتشار دیسک با کشت بر روی محیط کشت مولر هینتونآگار مورد بررسی قرار گرفت. نتایج حاصل از آنتی بیوگرام جدایه های آئروموناس هیدروفیلا مشخص نمود که بیشترین مقاومت، مربوط به آنتی بیوتیک های آمپی سیلین (100 درصد)، کولیستین (80 درصد)، انروفلوکساسین (80 درصد)، فلومکوئین (80 درصد) و پس از آن، نسبت به آنتی بیوتیک های تتراسایکلین (60 درصد) و فلورفنیکل (60 درصد) می باشد. بیشترین حساسیت جدایه ها، مربوط به آنتی بیوتیک های تریمتوپریم- سولفامتوکسازول (60 درصد) و فسفومایسین (60 درصد) بود. بررسی نتایج حاصل از آنتی بیوگرام جدایه های یرسینیا راکری نشان داد که بیشترین مقاومت در بین جدایه های مورد بررسی، مربوط به آنتی بیوتیک های آمپی سیلین (100 درصد)، اریترومایسین (100 درصد)، تریمتوپریم- سولفامتوکسازول (100 درصد) وکولیستین (34/83 درصد) و پس از آن نسبت به آنتی بیوتیک تتراسایکلین، فلورفنیکل و فسفومایسن مقاومت حدود 67 درصدی را نشان دادند. مقاومت به آنتی بیوتیک های فلومکوئین، لینکومایسین+ اسپکتینومایسین و انروفلوکساسین هم 50 درصد مشاهده شد و این بدین معنی است که هیچ یک از آنتی بیوتیک های مورد اشاره گزینه ی مناسبی برای درمان عفونت باکتریایی حاصل از باکتری یرسینیا راکری نخواهند بود. برای جلوگیری از افزایش مقاومت، باید از مصرف بی رویه و خودسرانه آنتی بیوتیک ها ممانعت کرده و قبل از استفاده، کشت باکتریایی و تست آنتی بیوگرام صورت گیرد.

چکیده انگلیسی:

Recognition of resistance and susceptibility of problematic bacteria such as Yersinia ruckeri and Aeromonas hydrophila in rainbow trout farms, in proper selection of antibiotics and infection control in breeding ponds. It plays an effective role. In this study, 100 diseased fish were collected from rainbow trout farms in Chaharmahal and Bakhtiari province and after performing biochemical tests and purification of Aeromonas hydrophila and Yersinia ruckeri species, using PCR test with specific primers were finally approved. Antibiotic susceptibility of bacteria was investigated by disk diffusion method by culture on Müller-Hinton agar medium. Examination of the results of antibiogram of Aeromonas hydrophila isolates showed that the highest resistance was related to the antibiotics ampicillin (100%), colistin (80%), enrofloxacin (80%), flumquin (80%) and then, Compared to tetracycline (60%) and fluorophenicol (60%) antibiotics. The most sensitive isolates were related to trimethoprim-sulfamethoxazole (60%) and phosphomycin (60%) antibiotics. Examination of the antibiogram results of Yersinia ruckeri isolates showed that the highest resistance among the isolates was related to the antibiotics ampicillin (100%), erythromycin (100), trimethoprim-sulfamethoxazole (100%) and colistin (83.34%) and then showed about 67% resistance to tetracycline, fluorophenicol and phosphomycin antibiotics. Resistance to the antibiotics flumequin, lincomycin + spectinomycin (lincospectin) and enrofloxacin were also observed to be 50%, which means that none of these antibiotics would be a viable option for the treatment of bacterial infections caused by Yersinia ruckeri. In order to avoid growing bacterial resistance and to take the most effective decision in terms of antibiotic therapy, usage of antibiotics without antibiogram must be avoided. .

منابع و مأخذ:

1. Arzani N., Darvishi H., Sharifian G.H., Rabiepur A. 2016. Evaluation of antibiotic sensitivity of bacteria Aeromonas hydrophila fish ponds Tonekabon city. Iranian Journal of Marine Science and Technology, 20(79):65-72. (in Persian)


2. Castro-Escarpulli G., Figueras M.J., Castro-Escarpulli G., Soler L., Fernandez Rendon E., Aparicio G.O., Guarro J., Chacon M.R. 2003. Characteristion of Aeromonas Isolated from frozen fish intended for human consumption in mexico. International Journal of Food Microbiology, 84(1):41-49.


3. CLSI, Clinical and Laboratory Standards Institute. 2007. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Fifteenth Informational Supplement, CLSI document M100-S15, Clinical and Laboratory Standards Institute, Pennsylvania, Wayne.


4. Delcero A., Marquez I., Guijarro J.A. 2002. Simultaneous Detection of Aeromonas salmonicida , Flavobacterium psychrophilum, and Yersinia ruckeri, Three major Fish Pathogen , by multiplexPCR. Applied and Environmental Microbiology, 68(10):5177-5180.


5. Dorsch M., Ashbolt N.J., Cox P.T., Goodman A.E. 1994. Rapid identification of Aeromonas species using 16s rDNA targeted oligonucleotide primers: a molecular approach based on screening of environmental isolates. Journal of Applied Microbiology, 77(6):722-726.


6. Fadaeifard F., Sharifzadeh A., Raissy M., Mazrooi H., Safari S., Moumeni M. 2014. Molecular identification of Yersinia ruckeri isolates by polymerase chain reaction test in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. European Journal of Experimental Biology, 4:1-4.


7. 2019. Fisheries and Aquaculture Department, Statistics and Information Service Fish StatJ: Universal software for fishery statistical time series. Copyright 2016. Rome. http://www.fao.org/fishe ry/statistics/globa l-aquaculture production/ query/en. (Accessed 30 July 2019)


8. Harikrishnan R., Kim J.S., Kim M.C., Balasundaram C., Heo M.S. 2011. Lactuca indica extract as feed additive enhances immunological parameters and disease resistance in Epinephelus bruneus to Streptococcus iniae. Aquaculture, 318(1-2): 43-47.‏


9. Igbal M.M., Chowdhury M.B.R., Islam M.A., Baqui M., Karim M.R., Tajima K., Ezura Y. 1999. Seasonal flactuation of motile Aeromonas and Pseudomonas in cultured pond of Cirrhinus mrigala in Bangladesh. The Journal Promotes Fisheries Science, 12(1):17-24.


10. Mata A.I., Gibello A., Casamayor A., Blanco M.M., Domínguez L., Fernández-Garayzábal J.F. 2004. Multiplex PCR assay for detection of bacterial pathogens associated with warm-water Streptococcosis in fish. Applied and Environmental Microbiology, 70(5):3183-3187.


11. Önalana S., Cevika M. 2020. Investigation of the effects of some phytochemicals on Yersinia ruckeri and antimicrobial resistance. Brazilian Journal of Biology, 80(4):934-942.


12. Orozova P., Chikova V., Sirakov I. 2014. Diagnostics and Antibiotic Resistance Of Yersinia Ruckeri Strains Isolated From Trout Fish Farms In Bulgaria. International Journal of Development Research, 5(1):3013-3019.


13. Ranjbar R., Salighehzadeh R., Sharifiyazdi H. 2019. Antimicrobial Resistance and Incidence of Integrons in Aeromonas Species Isolated from Diseased Freshwater Animals and Water Samples in Iran. Antibiotics, 8:198.


14. Saha D., Pal J. 2002. Invitro antibiotic susceptibility of bacteria isolated from Eus-affected fishes in India. Letters in Applied Microbiology, 34(5):311-