ارزیابی یافته های بالینی و اولتراسونوگرافی روده ها در گاوهای مبتلا به بیماری یون
محورهای موضوعی :
آسیب شناسی درمانگاهی دامپزشکی
محمد طلوعی
1
,
غلامعلی مقدم
2
,
محدثه فهیمی
3
1 - گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران.
2 - گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران.
3 - دامپزشک عمومی، کلینیک بخش خصوصی، تبریز، ایران.
تاریخ دریافت : 1394/09/25
تاریخ پذیرش : 1395/03/05
تاریخ انتشار : 1395/03/01
کلید واژه:
گاو,
بیماری یون,
اولتراسونوگرافی,
روده ها,
چکیده مقاله :
چکیده
پاراتوبرکلوزیس یا بیماری یون نوعی عفونت مزمن روده‌های کوچک با عامل مایکوباکتریوم اویوم تحت گونه پاراتوبرکلوزیس می‌باشد که در گاو با اسهال پیش رونده و مزمن، کاهش وزن و در نهایت مرگ مشخص می‌شود. برای تأیید تشخیص گاوهای مبتلا به یون، روش فارمی سریع و مناسبی وجود ندارد. اولتراسونوگرافی ترانس آبدومینال یک روش بالینی مفیدی است که می تواند به راحتی در ارزیابی بیماران مبتلا به التهاب مزمن روده به‌کار رود. هدف از این مطالعه بررسی یافته‌های بالینی و اولتراسونوگرافی ترانس آبدومینال در گاوهای مبتلا به بیماری یون بود. این مطالعه روی 20 رأس گاو هلشتاین ماده مبتلا به اسهال مزمن و یا لاغری، انجام شد. تمام دام ها به صورت بی خبر مورد آزمایش خون برای ارزیابی آنتی بادی ضد مایکوباکتریوم پاراتوبرکلوزیس با روش الایزا و سنجش ضخامت دیواره روده های باریک و سایر پارامترها با سونوگرافی روده ها از روی پوست ناحیه شکم قرار گرفتند. نتایج آزمایش الایزا نشان داد که 35 درصد از دام های مورد بررسی واجد آنتی بادی ضد مایکوباکتریوم پاراتوبرکلوزیس بودند. فراوانی نسبی گاوهای مبتلا به اسهال مزمن، لاغری یا هردوی آنها در بین دام های آلوده به ترتیب 100 درصد، 4/71 درصد و 4/71 درصد بودند. در ارزیابی اولتراسونوگرافی از روی پوست شکم، میانگین ضخامت دیواره روده های کوچک در گاوهای آلوده (4/1±9/7 میلی متر) به طور معنی داری (001/0>p) بیشتر از گاوهای غیرآلوده (13/0±7/2 میلی متر) بود. نتایج این مطالعه نشان می‌دهد که ارزیابی اولتراسونوگرافی روده ها و ناحیه شکمی گاوها در سطح فارم می‌تواند روش مفید و سریعی با ویژگی نسبتاً بالا در تشخیص بیماری یون باشد.
چکیده انگلیسی:
Paratuberclosis or Johne’s disease is an infection of small intestine caused by Mycobacteriom avium paratuberculosis characterized by persistent and progressive diarrhea, weight loss, debilitation, and eventual death in cattle. A suitable and rapid method for diagnosis of the disease in farms is not available. Trans-abdominal ultrasound is a rapid, clinical and non-invasive diagnostic method recommended for diagnosis of animals with chronic inflammation of the intestine. The purpose of the present study was clinical and trans-abdominal ultrasound examination of cattle infected with organism of the Johns disease. This study was done on 20 female Holstein cattle with consist chronic diarrhea and/or weight loss. All animals were blindly tested for Mycobacteriom paratuberculosis antibodies in blood samples by ELISA and also examined by trans-abdominal ultrasound for intestinal wall thickness. The result of the ELISA test showed that 35% of the samples had antibodies against Mycobacteriom paratuberculosis. The rates of chronic diarrhea, low body condition score and both of them in cattle with positive ELISA were 100%, 71.4% and 71.4%, respectively. In the trans-abdominal ultrasound examination, the intestinal wall thickness of the infected animals (7.9±1.54 mm), was significantly (p<0.001) more than non- infected group (2.7±0.13 mm). This study indicates that the ultasonographic evaluation of the intestine and abdomen can be a quick, useful and on farm method with relatively high specificity in the diagnosis of cattle with John's disease.
منابع و مأخذ:
شاهمرادی ، ا.، مصوری، ن.، عارف پژوهی، ر.، حیدری، م.، نعمان، و. و نبی نژاد، ع. (1388). بررسی بیماری یون در دامداریهای صنعتی و نیمه صنعتی اصفهان. مجله پژوهشهای دامپزشکی در پژوهش و سازندگی، شماره 82، صفحات: 17-13.
Baez, J.L., Hendrick, M.J., Walker, L.M. and Washabau, R.J. (1999). Radiographic, ultrasonographic and endoscopic findings in cats with inflammatory bowel disease of the stomach and small intestine: 33 cases (1990-1997). Journal of the American Veterinary Medicine Association, 215: 349-354.
Boelaert, F., Walravens, K., Biront, P., Vermeersch, P., Berkavens, D. and Froid, G. (2000). Prevalence of Paratuberculosis in the Beljian cattle population. Veterinary Microbiology Journal, 77: 269-281.
Braun, U. (2003). Ultrasonography in gastrointestinal disease in cattle. The Veterinary Journal, 166: 112-124.
Braun, U. and Amrein, E. (2001). Ultrasonographic examination of the caecum and the proximal and spiral ansa of the colon of cattle. Veterinary Record, 149: 45-48.
Braun, U. and Blessing, S. (2006). Ultrasonographic examination of the omasum in 30 health cows. Veterinary Record, 159: 812-815.
Braun, U. and Gotz, M. (1994). Ultrasonography of the reticulum in cows. American Journal of Veterinary Research, 55: 325-332.
Braun, U. and Marmier, O. (1995). Ultrasonographic examination of the small intestine of cows. Veterinary Record, 136: 239-244.
Braun, U., Pusterla, N. and SchÖnmann, M. (1997). Ultrasonographic findings in cows with left displacement of the abomasum. Veterinary Record, 141: 331-335.
Burgelt, C.D., Layton, A.W., Ginn, P.E., Taylor, M., King, J.M., Habecker, P.L., et al. (2000). The pathology of spontaneous paratuberculosis in the North American bison (Bison bison). Veterinary Pathology, 3: 428-438.
Chiodini, R.J., Van Kruiningen, H.J. and Merkal, R.S. (1984). Ruminant paratuberculosis (Johne’s disease): the current status and future prospects. Cornell University College of Veterinary Medicine, 74: 218-262.
Clark, C.J. (1997). The pathology and pathogenesis of paratuberculosis in ruminants and other species. Journal of Comparative Pathology, 116: 217-261.
Collins, M.T. and Sockett, D.C. (1993). Accuracy and economics of the USD Alicensed enzyme-linked immunosorbent assay for bovine paratuberculosis. Journal of the American Veterinary Medicine Association, 203: 1456-1463.
Collins, M.T., Sockett, D.C., Ridge, S. and Cox, J.C. (1991). Evaluation of a commercial enzyme-linked immunosorbent assay for Johne’s disease. Journal of Clinical Microbiology, 29: 272-276.
Cox, J.C., Drane, D.P., Jones, S.L., Ridge, S. and Milner, A.R. (1991). Developmentand evaluation of a rapid absorbed enzyme immunoassay test for the diagnosis of Johne’s disease in cattle. Australian Veterinary Journal, 68: 157-160.
Dargatz, D.A., Byrum, B.A. and Barber, L.K. (2001). Evaluation of a commercial ELISA for diagnosis of paratuberculosis in cattle. Journal of the American Veterinary Medical Association, 218: 1163-1166.
Fathi, R., Sarkarati, F., Eslami, M., Rezavand, B. and Nourizadeh, A. (2011). Detection of Mycobacterium avium subsp. Paratuberculosis in Cow Milk Using Culture and PCR methods, 66(2): 95-100.
Garrido, J.M., Cortabarria, N., Oguisa, J.A., Aduriz, G. and Juste, R.A. (2000). Use of PCR method on faecal samples for diagnosis of sheep paratuberculosis.Veterinary Microbiology, 77: 339-349.
Gyles, C.L. and Theon, O.C. (1993). Pathogenesis of Bacterial Infection in Animals.2ed edition. USA: Ames, Iowa, Iowa State University, pp: 44-54.
Hardin, L.E. and Thorne, J.G. (1996). Comparison of milk with serum ELISA for the detection of paratuberculosis in dairy cows. Journal of the American Veterinary Medicine Association, 209: 120-122.
Hasanova, L. and Pavlik, I. (2006). Economic impact of paratuberculosis in dairy cattle herds: A review on Veterinary Medicine, Czech, 51: 193-211.
Jones, T.C., Hunt, R.D. and King, N.W. (1997). Paratuberculosis. In: Veterinary Pathology. 6th ed., Baltimore, Maryland: Williams and Wilkins, pp: 498-501.
Kennedy, D.J. and Benedictus, G. (2001). Control of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis infection in agricultural species. Revue scientifique et technique, 20: 151-179.
Kofler, J. and Hittmair, K. (2006). Diagnostic ultrasonography in animals - Continuation of the clinical examination. Veterinary Journal, 171(3): 393-395.
Lilenbaum, W., Mavassi, C.D. and Oelemann, W.M.R. (2007). Paratuberculosis, an update. Brazilian Journal of Microbiology, 38: 580-590.
McKenna, S.L., Keefe, G.P. and Barkema, H.W. (2004). Cow-level prevalence of paratuberculosis in culled dairy cows in Atlantic Canada and Maine. Journal of Dairy Science, 87: 3770-3777.
Milner, A.R., Mack, W.N., Coates, K.J., Hill, J., Gill, I. and Sheldrick, P. (1990). The sensitivity and specificity of a modified ELISA for the diagnosis of Johne’s disease from a field trial in cattle. Veterinary Microbiology, 25: 193-198.
Nielsen, S.S. and Nielsen, K.K. (2001). Diagnostic Techniques for paratuberculosis. Bulletin of the IDF, 362: 1-17.
Nielsen, S.S. and Toft, N. (2008). Ante mortem diagnosis of paratuberculosis: a review of accuracies of ELISA, interferon-gamma assay and faecal culture techniques. Veterinary Microbiology, 129: 217-235.
Quinn, P.G., Carter, M.E., Merkey, B. and Carter, G.R. (1994). Clinical Veterinary Microbiology. London: Mosby, pp: 156-168.
Raymond, W., Sweeney, L., Robert, H., Whitlock, S., McAdams, S. and Fyock, T. (2006). Longitudinal study of ELISA seroreactivity to Mycobacteriumavium subsp. paratuberculosis in infected cattle and culture-negative herd mates. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 18: 2-6.
Rudorf, H., Van Schaik, G., O'brien, R.T., Brown, P.J., Barr, F.J. and Hall, E.J. (2005). Ultrasonographic evaluation of thethickness of the small intestinal wall in dogs with inflammatory bowel disease. Journal of Small Animal Practice, 46: 315-316.
Sockett, D.C., Conrad, T.A., Thomas, C.B. and Collins, M.T. (1992). Evaluation of four serological tests for bovine paratuberculosis. Journal of Clinical Microbiology, 30: 1134-1139.
Swceney, R.W., Whitlock, R.H., Buckley, C.L. and Spencer P.A. (1995). Evaluation of a commercial enzyme-linked immune sorbent assay for the diagnosis of Paratuberculosis in dairy cattle. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 7: 488-493.
Sweeney, R.W., Whitlock, R.H., Buckley, C.L., Spencer, P., Rosenberger, A.E. and Hutchinson, L.J. (1994). Diagnosis of paratuberculosis in dairy cattle, using enzyme-linked immunosorbent assay for detection of antibodies against Mycobacterium paratuberculosis in milk. American Journal of Veterinary Research, 55: 905-909.
Tharwat, M., Al-Sobayil, F., Ahmed, A., Hashad, M. and Buczinski, S. (2012). Clinical, ultrasonographic, and pathologic findings in 70 camels (Camelus dromedarius) with Johne’s disease. Canandian Veterinary Journal, 53: 543-548.
Tharwat, M., Al-Sobayil, F., Hashad, M. and Buczinski, S. (2011). Transabdominal ultrasonographic findings in goats with paratuberculosis. The Canadian Veterinary Journal, 52: 1062-1070.
Tschuor, A. and Clauss, M. (2008). Investigations on the stratification of fore stomach contents inruminants: an ultrasonographic approach. European Journal of Wildlife Research, 54: 627-633.
Vander Giessen, J.W., Eger, A., Haagsma, J., Haring, R.M., Gaastra, W. and Vander Zeijst, B.A. (1992). Amplification of 16S rRNA sequences to detect Mycobacterium paratuberculosis. Journal of Medical Microbiology, 36: 255-263.
Whitlock, R.H. and Buergelt, C. (1996). Preclinical and clinical manifestations of paratuberculosis (including pathology). Veterinary Clinics of North America Food Animal Practice, 12: 345-356.
Whitlock, R.H., Wells, S.J., Sweeney, R.W. and Van Tiem, J. (2000). ELISA and fecal culture for paratuberculosis (Johne’s disease): sensitivity and specificity of each method. Veterinary Microbiology, 77: 387-398.
Yokomizo, Y., Merkal, R.S. and Lyle, P.A. (1983). Enzyme-linked immunosorbent assay for detection of bovine immunoglobulin G1 antibody to a protoplasmic antigen of Mycobacterium paratuberculosis. American Journal of Veterinary Research, 44: 2205-2207.
