مقایسه اندازه بدن و هورمون های استروئیدی فیل ماهی (Huso hus) ماده براساس وضعیت اکوژنسیته گناد در سونوگرافی

محورهای موضوعی : مجله پلاسما و نشانگرهای زیستی

رقیه بهره ور ¹ , محمد رضا قمی ² , مهدی سهراب نژاد ³

1 - دانشجوی دکتری تکثیر و پرورش آبزیان، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن، ایران.
2 - دانشیارگروه شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن، ایران.
3 - دکتری تکثیر و پرورش آبزیان، مرکز پرورش ماهیان خاویاری آبزی گستران ساری، ایران.

تاریخ دریافت : 1398/07/21 تاریخ پذیرش : 1398/10/01 تاریخ انتشار : 1398/10/01

کلید واژه: اولتراسونوگرافی, Ultrasonography, فیل ماهی پرورشی, اکوژنسیته گناد, اندازه بدن, هورمون های استروئیدی, Cultured Beluga Sturgeon, Gonad Echogenicity, Body Size, Steroid Hormones,

چکیده مقاله :

زمینه و هدف: فیلماهی از مهم ترین گونه های با ارزش ماهیان خاویاری می باشد. آگاهیاز کیفیت گناد،لازمه موفقیت در امر پرورش و تکثیر این ماهی است.تحقیق حاضر با هدف بررسی اختلاف طول، وزن و هورمون های استروئیدی براساس اکوژنسیته مشاهده شده از گناد در سونوگرافی، بر روی 20 قطعه فیل ماهی پرورشی 4 ساله ماده انجام پذیرفت. روش کار: ماهیان مورد زیستسنجی و آنالیز خونی قرارگرفتند.جهت سونوگرافی از دستگاه SonoAce R3 با فرکانس 8-9 مگا هرتز استفاده و سنجش هورمونی به روشرادیوایمنوواسی انجام شد. یافته ها:میانگین وزن کل، طول کل و طول استاندارد به ترتیب 96/9 کیلوگرم، 45/114 سانتی متر، 65 /101 سانتی متر و میانگین هورمون های 17بتا-استرادیول،تستوسترون، 17آلفا-20بتا-دی هیدروکسیپروژسترون، به ترتیب 49/0، 28/0 و 7/41 نانوگرم بر میلی لیتر به دست آمد. نتایج نشان داد که بین میانگین پارامترهای مورفومتریک در رنگ های مختلف گناد در مشاهدات سونوگرافی، اختلاف معناداری وجود نداشت(05/0p>) ولی بین میانگین آن ها با توجه به حجم های مختلف گناد در مشاهدات سونوگرافی، اختلاف معنادار بوده(05/0p<) به طوری که ماهیان با میانگین بیشتری از پارامترهای مورفومتریک، حجم گناد خوبی را در مشاهدات سونوگرافی نشان دادند. بین میانگین هورمون ها به تفکیک حجم و رنگ گناد، اختلاف معنادارنبوده است(05/0p>). نتیجه گیری:با توجه به این که ماهیان بزرگ تر از حجم گناد مطلوب در مشاهدات سونوگرافی برخوردار بودند، لذا جداسازی و نگهداری ماهیان درشت تر در سن پائین برای تبدیل به مولد جهت جلوگیری از اتلاف وقت و هزینه می تواند سودمند باشد. هم چنین سنجش هورمون در این سن، نمی تواند در بررسی وضعیت اکوژنسیته گناد موثر واقع گردد.

چکیده انگلیسی:

Inroduction & Objective: Beluga sturgeon(Huso huso) is one of the most valuable species of sturgeon for breeding and rearing in aquaculture farms. Understanding the quality of gonads, especially gonads in female, is essential to the success of breeding and reproducing. The purpose of this study was to investigate the differences in body size (length and weight) and steroid hormones based on the echogenicity (volume and color) observed from gonad in ultrasound on 4-year-old female beluga sturgeon (n=20) Material and Method: For this purpose, the fish were bio-assayed and blood analyzed. The SonoAce R3 was used for ultrasound by adjusting the frequency between 8-9 Hz, hormonal assay was performed by radioimmunoassay (RIA). Results: Mean total weight (TW), total length (TL), standard length (SL), condition factor (CF) of fish were 9.96 kg, 114.45 cm, 101.65 cm, 0.93 and mean of E2, T and 17,20OH-P were 0.49, 0.28 and 41.7 ng/ml, respectively. The results of one-way ANOVA showed that there was no significant difference between the mean of morphometric parameters in different gonadal colors in sonographic observations (p> 0.05). However, there was a significant difference between their mean values with respect to different gonad volumes in the ultrasound observations (p<0.05) whereas fish with a higher average of total weight, total length, standard length, and condition factor showed good gonad volume in the ultrasound observations. There was also no significant difference between mean values of steroid hormones in terms of volume and color of gonad (p> 0.05). Conclusion: Since the larger fish had a favorable gonad volume in the ultrasound observations, thus, separation and maintenance of such stocks for reproduction is more desired and reduces costs. Also steroid hormones in 4-year-old female beluga are not associated with gonadal echogenicity characteristics and cannot be used as a determination method.

منابع و مأخذ:

1-آذری تاکامی، ق. 1397. تکثیر و پرورش تاسماهیان. چاپ چهارم. تهران: انتشارات دانشگاه تهران، 418 ص.

2-بهمنی، م.، کاظمی، ر. 1377. مطالعه بافت شناسی غدد جنسی در تاسماهیان جوان پرورشی. مجله علمی شیلات ایران. سال هفتم. شماره1. ص16-1

3-ســراجیان، ش.، زمینی، ع.، یوســفیان، م. 1386. بررســی مقایسه ای سطوح برخی از هورمون های استروئیدی جنسی سرم خون درمولدین نارس و بالغ کفال طلایی (Liza aurata)دریای خزر. مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی آزادشهر. سال اول. پیش شماره 3 .ص 60-51.

4-طاعتی، ر.، سلطانی، م.، بهمنی، م. 1393. ارزیابی شاخص های رشد، بقا و ترکیب لاشه فیل ماهیان جوان پرورشی (Huso huso)تغذیه شده با پربیوتیک ایمنواستر. مجله پژوهش های جانوری، دوره بیست و هفتم. شماره 1. ص 79-71.

5-فلاحتکار، ب. 1395. دستورالعمل مراکز تکثیر ماهیان خاویاری. چاپ اول. تهران: انتشارات تحقیقات آموزش کشاورزی، 1395، 331 ص.

6-قلیچی، ا.، جرجانی، س.، اکرمی، ر.، مخدومی، ن.، کاظمی، ر. 1391. نوسانات استروئیدهای جنسی سنین مختلف فیلماهیان پرورشی(Huso huso) کارگاه شهید مرجانی گرگان. مجله علمی شیلات ایران. سال بیست و یکم. شماره دوم . ص 88-77.

7-هدایتی، ع.، باقری، ط. 1389. بررسی شاخص های طول و وزن فیلماهیان پرورشی در شرایط آب لب شور. مجله پژوهش های علوم دامی ایران. جلد دوم. شماره 1. ص 124-113.

8-وجهی، ع.، مسعودی فرد، م.، مقیم، م.، وشکینی، ع.، زهتاب ور، ا. 1390. اولتراسونوگرافی ماهیان خاویاری برای تشخیص جنسیت و مرحله رسیدگی جنسی. چاپ اول. تهران: انتشارات دانشگاه تهران،1390، 164ص.

9.AOAC. )2005(. Official Methods of analysis of AOAC international. USA; 771P.

10.Bahmani, M., Kazemi, R., Hallajian, A., Dejandian, S., Jourdehi, Y., Charmi, A. (2013). Gonad development in  Acipenser persicus and  Huso huso sturgeon fish. Online Journal of Veterinary Research, 17; 630-638.

11.Barannikova, I., Bayunova, L., Semenkova, T. (2004). Serum levels of testosterone, 11-ketotestosterone and estradiol-17β in three species of sturgeon during gonadal development and final maturation induced by hormonal treatment. Journal of Fish Biology, 64(5); 1330-1338.

12.Berrigan, D., Charnov, E.L. (2000). Reaction norms for age and size at maturity in response to temperature. A Puzzle for Life Historians, 70(1); 474–478.

13.Bilio, M. (2007). Controlled reproduction and domestication in aquaculture. Aquaculture Europe, 32(1); 5-14

14.Bryan, J.L., Wildhaber, M.L., Papoulias, D.M., DeLonay, A.J., Tillitt,  D.E., Annis, M.L. (2007). Estimation of gonad volume, fecundity, and reproductive stage of shovelnose sturgeon using sonography and endoscopy with application to the endangered pallid sturgeon. Journal of Applied Ichthyology, 23; 411–419.

15.Chebanov, M.S., Galich, E.V. (2009). Ultrasound diagnostics in sturgeon brood stock management. 6^th International symposium on sturgeon, Wuhan, China, Workshop on sturgeon sexing and gonad staging.

16.Craig, J.M., Papoulias, D.M., Thomas, M.V., Annis, M.L., Boase, J. ( 2009). Sex assignment of lake sturgeon(Acipenser fluvescens) based on plasma sex hormone and vitellogenin levels. Journal of Applied Ichthyology, 25; 60–67.

 

17.Colombo, R.E., Willis, P.S., Garvey, J.E. (2004). Use of ultrasound imaging to determine sex of shovelnose sturgeon. North

American Journal of Fisheries Management,24; 322–326.

18.Dahle, R., Taranger, G.L., Karlsen, O., Kjesbu, O.S., Norberga, B. (2003). Gonadal development and associated changes in liver size and sexual steroids during the reproductive cycle of captive male and female Atlantic cod(Gadus morhua). Comparative Biochemistry and Physiology, Part A, 136; 641–653.

19.Esmaeili Mola, A., Hovannisyan, H.G., Nazari, R.M., Ovissipour, M.R. (2011). Early sex identification in cultured beluga(Huso huso) using plasma steroid hormones. African Journal of Biotechnology, 10(10); 1959-1965.

20.Esmailnia, R., Ghomi, M.R., Sohrabnezhad, M. (2019). Early sex identification of 18‐month cultured beluga sturgeon(Huso huso) using ultrasonography, small surgery and plasma steroid hormones. J Appl. Ichthyol, 00;1–7.

21.Falahatkar, B., Akhavan, S.R., Tolouei Gilani, M.H., Abbasalizadeh, A. (2013). Sex identification and sexunal maturity stages in farmed great sturgeon(Huso huso) Through biopsy. Iranian Journal of veterinart Research, Shiraz university, 14; 133-139.

22.Feist, G., Van Eenennaam, J.P., Doroshov, b.S.I., Schreckc, C.B., Schneiderd, R.P., Fitzpatricke M.S. (2004). Early identification of sex in cultured white sturgeon(Acipenser transmontanus) using plasma steroid levels. Aquaculture, 232; 581–590.

23.Kazemi, R., Yousefi Jourdehi, A., Pourdehghani, M., Dejhandian, S., Hallajian, A., Bahmani, M. (2014). Classification of sex and maturity stages of farmed Great sturgeon(Huso huso) using blood plasma steroid hormone and calcium ion levels. Iran J Fish Sci, 13(3); 597-607

24.Kopp, R., Mares, J., Palikova, M., Navratil, S., Kubicek, Z., Zikova, A. (2009). Biochemical parameters of  blood plasma and content of microcystins in tissues of common carp(Cyprinus carpio) from a hypertrophic pond with cyanobacterial water bloom. Aquat Research, 40; 1683-1693.

25.Luo, G., Xu, J., Teng, Y., Ding, C.,Yan, B. (2010). Effects of dietary lipid levels on the growth, digestive enzyme, feed utilization and fatty acid composition of Japanese sea bass(Lateolabrax japonicus) reared in freshwater. Aquaculture Research, 41; 210-219.

26.Malekzadeh Viayeh, R., Hallajian, A., Kazemi, R., Pahlavan Yali, M. (2000). Biochemical and morphometric parameters as indicators of sex and gonadal stages in maturing Persian sturgeon(Acipenser persicus). Journal of Applied Ichthyology, 22(2); 364–368.

27.Masoudifard, M., Vajhi, A.R., Moghim, M., Nazari, R.M., Naghavi, A.R., Sohrabnejad,  M. (2011). High validity sex determination of three years old cultured bluga sturgeon(Huso huso) using ultrasonography. Journal of Applied Ichthyology, 27(1); 643–647.

28.Moghim, M., Vajhi, A.R., Veshkini, A., Masoudifard, M. (2002). Determination of sex and maturity in Acipenser stellatus by using ultrasonography. J Appl Ichthyol, 18; 325–328.

29.Naddafi, R., Abdoli, A., Hassanzadeh Kiabi, B., Mojazi Amiri, B., Karami, M. (2005). Age, growth and reproduction of the Caspian roach(Rutilus rutilus caspicus) in the Anzali and Gomishan wetlands, North Iran. Journal of Applied Ichthyolog, 21; 492-497.

30.Nagahama, Y. (2000). Gonadal steroid hormones: major regulators of gonadal sex differentiation and gametogenesis in fish. In: Norberg O, Kjesbu OS, Taranger GL, Andersson E, Stefansson SO (eds) Proc 6th Int Symp Rep Phy Fish. Bergen, Norway, 211–222.

31.Patino, R., Yoshizaki, G., Thomas, P., Kagawa, H. (2002). Gonadotropic control of ovarian follicle maturation: The two-stage concept and it's mechanisms. Comparative Biochemistry and Physiology, Part B. 19; 427-439.

32.Rocha, A., Zanuy, S., Carrillo, M., Gómez, A. (2009). Seasonal changes in gonadal expression of gonadotropin receptors, steroidogenic acute regulatory protein and steroidogenic enzymes in the European sea bass. General and Comparative Endocrinology, 162; 265-275.

33.Vajhi, A.R., Moghim, M., Veshkini, A., Masoudifard, M. (2002). Sex and maturity determination by ultrasonography in Persian Sturgeon (Acipenser guldenstaedti persicus). 4^th International Symposium on Sturgeon. Oshkosh,Wisconsin, USA, 72.

34.Vajhi, A.R.., Veshkini, A., Masoudifard, M., Moghim, M., Molazem, M. (2009). ultrasonography finding of ovary and testis in adult Acipenser persicusduring artificial propagation (stage Ѵ of maturation ).6^th international symposium on sturgeon.wuhan,china, 182-183.

35.Webb, M.A.H., Doroshov, S., Rasco, R., Cavinato, A., Sealey, W., Fornshell, G., Lemon, L., Ray, L. (2009). Determining ripeness in whitesturgeon females to maximize yield and quality of caviar. Annual Progress Report. Part II. Western Region Aquaculture Center, United States Department of Agriculture, 1–36.

36.Webb, M.A.H., Feist, G.W., Foster, E.P., Schreck, C.B., Fitzpatrick, M.S. (2002). Potential classification of sex and stage of gonadal maturity of wild white sturgeon using blood plasma indicators. Transaction of the American Fisheries Society, 131(1); 132–142.

37.Wildhaber, M.L., Papoulias, D.M., Deloney, A.J., Tillitt, J.L., Bryan, D.E., Annis, M.L. Allert J.A. (2005). Gender identification of shovelnose sturgeon using ultrasonic an endoscopic imagery and the application of the method to the pallid sturgeon. Journal of Fish Biology, 67(1); 114–132.

38.Zhang, Y., Doroshov, S., Famula, T., Conte, F., Kueltz, D., Linartes Casenave, J., et al. ( 2011). Egg quality and plasma testosterone and estradiol-17β in white sturgeon (Acipenser transmontanus) farmed for caviar. J.Appl. Ichthyol, 27; 558-564.