بررسی اثرات تزریق داروهای هوشبری وریدی پروپوفل، تیو پنتال سدیم، فنتانیل در زمان لانه گزینی بر میزان ناهنجاری ها در موش های صحرایی
اثرات داروهای هوشبری پروپوفل، تیو پنتال سدیم، فنتانیل در زمان لانه گزینی بر میزان ناهنجاری ها
محورهای موضوعی : فیزیولوژی تجربی و آسیب شناسی
شیوا شجاعی فرد
1
(
گروه بیهوشی ، دانشگاه علوم پزشکی زنجان ، زنجان ، ایران
)
محمد رضا جمشیدی
2
(
گروه بیهوشی ، دانشکده پزشکی ، دانشگاه علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران.
)
الهام حسینی
3
(
گروه زنان و زایمان، بیمارستان موسوی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران
)
سمیه عبدالهی ثابت
4
(
گروه پزشکی اجتماعی، دانشکده پزشکی، مرکز تحقیقات عوامل اجتماعی سلامت، دانشگاه علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران
)
مهدی رهنما
5
(
دانشیار گروه زیست شناسی فیزیولوژی جانوری، دانشکده علوم پایه، واحدزنجان، دانشگاه آزاد اسلامی، زنجان. ایران
)
کلید واژه: ناهنجاری, فنتانیل, : پروپوفول, تیوپنتال سدیم, کاشت جنین,
چکیده مقاله :
زمینه و هدف: بیهوشی برای فناوری کمک باروری بسیار مهم است تا حداقل اثرات نامطلوب بر روی تخمک فراهم کند. ایجاد نقص در رشد جنین یا ناهنجاری در پدیده رشد آن ، در بیشتر موارد منجر به شکست IVF می شود. تعداد ناهنجاری ها در موش های آزمایشگاهی RAT است.مواد و روش ها: از سه داروی بیهوشی پروپوفول، نستونال و فنتانیل برای بیهوشی به صورت تک و ترکیبی استفاده شد. گروه شم برای کنترل استرس تزریق با تزریق آب مقطر و گروه کنترل بدون دریافت دارو مورد مطالعه قرار گرفتند. در مرحله بعد شرایط باروری موش ها فراهم شد. اثربخشی داروها نسبتا مشابه دوزهای انتخابی است و پس از شمارش، عمل جراحی به صورت سزارین روی هر جنین انجام می شود و پس از جداسازی دقیق جفت از جنین، هر دو به دقت وزن و اندازه گیری و ثبت می شوند.نتایج: تفاوت در تعداد تولدها مشاهده نشد، اما وزن جفت و وزن جنین به عنوان شاخص تعیین کننده تأثیر داروها بر روی جنین مورد بررسی قرار گرفت که می تواند نمادی از ناهنجاری های جنینی باشد. نتایج نشان داد که داروهای استفاده شده تاثیری بر لقاح و میزان موفقیت آن نداشتند، اما بر رشد جنین موثر بودند و پروپوفول کمترین تاثیر را بر ناهنجاری داشت و تفاوت معنی‌داری در جفت و وزن جنین بین این گروه و گروه وجود داشت. وزن هنگام تولد موش ها بر اساس نوع دارو، بیشترین وزن هنگام تولد مربوط به داروی نستونال (TP) و کمترین وزن هنگام تولد مربوط به داروی فنتانیل (PH) بود. بر اساس نوع دارو، وزن تولد زنده موش‌ها بیشترین وزن موش‌های زنده مربوط به داروی نستونال (TP) و کمترین آن مربوط به داروی فنتانیل (PH) بود.نتیجه گیری:بررسی داروهای بیهوشی برای یافتن ایمن ترین و بهترین دارو از اهمیت بالینی و تحقیقاتی بالایی برخوردار است. مطالعه ناهنجاری های کروموزومی یکی از برنامه های اصلی مطالعات آتی برای تجزیه و تحلیل ناهنجاری های جنینی است.
Background & Aim: Background and purpose: Anesthesia is very important for assisted reproductive technology to provide minimal adverse effects on the oocyte. Defects in the development of the embryo or abnormality in its growth phenomenon lead to IVF failure in most cases. The number of abnormalities in laboratory rats is RAT.Materials & methods: Propofol, Nestonal, and Fentanyl were used for single and combined anesthesia. The sham group was studied to control injection stress by injecting distilled water and the control group without receiving drugs. In the next step, the fertility conditions of the mice were provided. The effectiveness of the drugs is relatively similar to the selected doses, and after counting, cesarean surgery is performed on each fetus, and after the placenta is carefully separated from the fetus, both are carefully weighed, measured, and recorded.Results: The difference in the number of births was not observed, but the weight of the placenta and the weight of the fetus were investigated as indicators determining the effect of drugs on the fetus, which can be a symbol of fetal abnormalities. The results showed that the drugs used had no effect on conception and its success rate, but they were effective on fetal growth, and propofol had the least effect on abnormalities, and there was a significant difference in placenta and fetal weight between this group and the other group. The birth weight of mice was based on the type of drug, the highest birth weight was related to the drug Nestonal (TP) and the lowest birth weight was related to the drug Fentanyl (PH). Based on the type of drug, the live birth weight of the mice was the highest weight of the live mice related to Nestonal drug (TP) and the lowest was related to Fentanyl drug (PH).Conclusion: Examining anesthetic drugs to find the safest and best drug is of great clinical and research importance. The study of chromosomal abnormalities is one of the main programs of future studies for the analysis of fetal abnormalities.
1. Haikin Herzberger E, Levy O, Sun B, Miller N, Rahav R, Dana E, et al. General anesthesia with propofol during oocyte retrieval and in vitro fertilization outcomes: retrospective cohort study. Scientific Reports. 2023;13(1):8021.
2. Sharma R, Qureshi N, Mogra S, Panwar K. Lead Induced Infertility in Swiss Mice and Role of Antioxidants. Universal Journal of Environmental Research & Technology. 2012;2(2).
3. NRCU R. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. National Academies Press (US) Washington (DC); 1996.
4. Hilderbrand DC, Der R, Griffin WT, Fahim MS. Effect of lead acetate on reproduction. American journal of obstetrics and gynecology. 1973;115(8):1058-65.
5. Dhir V, Dhand P. Toxicological approach in chronic exposure to lead on reproductive functions in female rats (Rattus norvegicus). Toxicology international. 2010;17(1):1.
6. Pathak S, Lees C. Ultrasound structural fetal anomaly screening: an update. Archives of Disease in Childhood-Fetal and Neonatal Edition. 2009;94(5):F384-F90.
7. Pierce S. SVH AEC SOP. 26. Euthanasia of Mice and Rats Melbourne, Australia: Animal Ethics Committee of St Vincent’s Hospital. 2006.
8. Franks PA, Laughlin NK, Dierschke DJ, Bowman RE, Meller PA. Effects of lead on luteal function in rhesus monkeys. Biology of reproduction. 1989 Dec 1;41(6):1055-62.
9. Dumitrescu E, Chiurciu V, Muselin F, Popescu R, Brezovan D, CRISTINA RT. Effects of long-term exposure of female rats to low levels of lead: ovary and uterus histological architecture changes. Turkish Journal of Biology. 2015;39(2):284-9.
10. Piasek M, Kostial K. Reversibility of the effects of lead on the reproductive performance of female rats. Reproductive Toxicology. 1991 Jan 1;5(1):45-51.
11.Lee K-s, Khoshnood B, Chen L, Wall SN, Cromie WJ, Mittendorf RL. Infant mortality from congenital malformations in the United States, 1970–1997. Obstetrics & Gynecology. 2001;98(4):620-7.
12. Şincai M. Tehnici de citohistologie normalã si patologicã: Mirton; 2000.
13. Qureshi N, Sharma R, Mogra S, Panwar K. Amelioration of lead induced alterations in ovary of Swiss mice, by antioxidant vitamins. J Herbal Med Toxicol. 2010;4(1):89-95.
14. Menache A. The European Citizens’ Stop Vivisection Initiative and the Revision of Directive 2010/63/EU. Alternatives to Laboratory Animals. 2016;44(4):383-90.
15. Borja-Aburto VH, Hertz-Picciotto I, Lopez MR, Farias P, Rios C, Blanco J. Blood lead levels measured prospectively and risk of spontaneous abortion. American Journal of Epidemiology. 1999;150(6):590-7.
16. Tchernitchin AN, Gaete L, Bustamante R, Báez A. Effect of prenatal exposure to lead on estrogen action in the prepubertal rat uterus. International Scholarly Research Notices. 2011;2011.
17. Taupeau C, Poupon J, Nomé F, Lefèvre B. Lead accumulation in the mouse ovary after treatment-induced follicular atresia. Reproductive toxicology. 2001;15(4):385-91.
18. Boyd PA, DeVigan C, Khoshnood B, Loane M, Garne E, Dolk H, et al. Survey of prenatal screening policies in Europe for structural malformations and chromosome anomalies, and their impact on detection and termination rates for neural tube defects and
Down’s syndrome. BJOG: An International Journal of Obstetrics & Gynaecology. 2008;115(6):689-96.
19. Jiwani SS, Amouzou-Aguirre A, Carvajal L, Chou D, Keita Y, Moran AC, et al. Timing and number of antenatal care contacts in low and middle-income countries: Analysis in the Countdown to 2030 priority countries. Journal of global health. 2020;10(1).
20. Pan M, Huang LY, Zhen L, Li DZ. A cost-effectiveness analysis comparing two different strategies in advanced maternal age: Combined first-trimester screening and maternal blood cell-free DNA testing. Taiwanese Journal of Obstetrics and Gynecology. 2018 Aug 1;57(4):536-40.
21. Junaid M, Chowdhuri D, Saxena RNRSD. Lead-induced changes in ovarian follicular development and maturation in mice. Journal of Toxicology and Environmental Health Part A. 1997;50(1):31-40.
22. Winder C. Lead, reproduction and development. Neurotoxicology. 1993;14(2-3):303-17.
23. Ahmed N. Correlation of blood lead levels with atresia of ovarian follicles of albino mice. Ann Pak Inst Med Sci. 2008;4(4):188-92.
24. Azmude A, Agha'amou S, Yousefshahi F, Berjis K, Mirmohammad'khani M, Sadaat'ahmadi F, Ghods K, Dabbagh A. Pregnancy outcome using general anesthesia versus spinal anesthesia for in vitro fertilization. Anesthesiology and Pain Medicine. 2013 Sep;3(2):239.
25. Gonen O, Shulman A, Ghetler Y, Shapiro A, Judeiken R, Beyth Y, Ben-Nun I. The impact of different types of anesthesia on in vitro fertilization-embryo transfer treatment outcome. Journal of assisted reproduction and genetics. 1995 Nov;12:678-82.
26. Reshan RG, Ameen BG, Hassan AA. Effect of TIVA with Propofol Versus Inhalational Anasthesia Plus Ketamine on Fertilization and Clinical Pregnancy Rate in ICSI. International Journal of Psychosocial Rehabilitation. 2020 Apr 1;24(05).
