تعیین حداقل غلظت ممانعت کنندگی و باکتری کشی اسانس و عصاره واریته های مختلف گیاه نرگس (.Narcissus tazetta L)
محورهای موضوعی : میکروبیولوژیمحمد یونس ماهن 1 , محمد محمودی سورستانی 2 , حسین معتمدی 3 , سیدمنصور سیدنژاد 4
1 - دانش آموخته کارشناسی ارشد گیاهان دارویی گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
2 - دانشیار گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
3 - استاد گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
4 - استاد گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
کلید واژه: اسانس, باکتری گرم مثبت, باکتری گرم منفی, عصاره, گل نرگس,
چکیده مقاله :
زمینه و هدف مطالعه: اسانس گیاهان به دلیل داشتن اثرات ضدمیکروبی در صنایع داروسازی و نگهداری مواد غذایی مورد استفاده قرار می گیرند. این مطالعه با هدف بررسی اثر ضدباکتریایی اسانس و عصاره واریتههای مختلف گل نرگس و مقایسه اثرات مهاری آنها با یکدیگر انجام شد. مواد و روشها: در این آزمایش، اسانس گل نرگس به روش چربی جاذب و عصاره با استفاده از حلالهای آلی هگزان و اتانول استخراج گردید. سپس خاصیت ضدمیکروبی اسانس و عصاره واریتههای مختلف گل نرگس Narcissus tazetta L. (شهلا، مسکینک، پنجه گربهای و پُرپر) به دو روش، انتشار دیسک و مهار کنندگی رشد روی چهار گونه باکتری شامل (باسیلوس سابتیلیس، استافیلوکوکوس اورئوس، اشرشیا کلی و سودوموناس آئروژینوزا) مورد بررسی قرار گرفت. در روش انتشار دیسک، باکتریها در محیط مولر هینتون آگار کشت و بعد از 24 ساعت قطر هالههای عدم رشد اندازهگیری شد و در روش رقتهای متوالی از دو رقت (1:2 و 1:4) استفاده شده، باکتریها در محیط مولر هینتون براث کشت و بعد از 24 ساعت، رشد و عدم رشد باکتریها از طریق بررسی کدورت لوله های کشت و مقایسه آنها با شاهد تعیین گردید. نتایج: نتایج بدست آمده از روش انتشار دیسک نشان داد که اسانس واریته شهلا بیشترین اثرکشندگی را روی باکتریهای گرم مثبت دارد. از بین عصاره های هگزانی، بیشترین اثر کشندگی در واریته پنجه گربه ای و در مورد عصاره اتانولی، بیشترین اثر کشندگی در واریته شهلا ثبت گردید. نتایج روش مهارکنندگی رشد نشان داد که اسانس و عصاره هگزانی واریتههای مختلف تنها در رقت 1:2 روی رشد تمام باکتریها اثر گذاشته و در تیمارهای عصاره اتانولی در هیچ یک از رقتها تاثیری مشاهده نشد. نتیجه گیری: بطور کلی نتایج حاصل از این آزمایشات نشان داد که اسانس و عصاره گل نرگس دارای خاصیت ضدمیکروبی میباشد اما روش انتشار دیسک در مقایسه با روش مهارکنندگی رشد، اثرات بیشتری روی باکتریها دارد.
Introduction: Essential oil has been used in the pharmaceutical and food industries due to its antimicrobial effects. The aim of this study was to evaluate the antibacterial effect of the essential oil and extract of different varieties of daffodil. Materials and methods: In this experiment, the essential oil of narcissus was extracted by the infleurage method and the extract was obtained using organic solvents; hexane and ethanol. Then, the antimicrobial properties of the essential oil and extracts of different varieties of daffodil (Shahla, Meskinack, Panjegorbai and Porpar) were examined by two methods; disc diffusion and growth inhibition, on four bacterial species including Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus, Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa. In the disc diffusion method, bacteria were cultured in Mueller-Hinton agar and after 24 hours, the diameter of the growth inhibitory halos was measured. In the serial dilution method, two dilutions (1:2 and 1:4) were used, and after 24 hours of bacterial growth, the turbidity of the culture tubes was compared with the control. Results: The results obtained from the disc diffusion method showed that the essential oil of Shahla variety had the highest activity against Gram-positive bacteria. Among the hexane extracts, the highest activity was observed in variety of Panjegorbai, and for ethanol extract, the highest activity was registered in variety of Shahla. The results of the growth inhibitory method showed that the essential oil and hexane extracts of different varieties affected the growth of all bacteria only in the 1:2 dilutions. However, no significant effect on bacteria was obtained in any of the ethanol extracts treatments. Conclusion: In overall, the results of these experiments showed that the essential oil and extract of daffodil flowers have antimicrobial properties, but the disc diffusion method showed more impact on bacteria than the growth inhibition method.
1. Abers, M., Schroeder, S., Goelz, L., Sulser, A., Tiffany St. Rose, T. S., Puchalski, K. and Jeffrey L. 2021. Antimicrobial activity of the volatile substances from essential oils. BMC Complementary Medicine and Therapies, 21 (124): 1 - 14. doi.org/10.1186/s12906-021-03285-3
2. Benedec, D., Oniga, I., Hanganu, D., Gheldiu, A. M., Puscas, C., Silaghi-Dumitrescu, R., Duma, M., Tiperciuc, B., Vârban, R. and Vlase, L. 2018. Sources for developing new medicinal products: biochemical investigations on alcoholic extracts obtained from aerial parts of some Romanian Amaryllidaceae species. BMC Complementary and Alternative Medicine, 18 (226): 1-12. https://doi.org/10.1186/s12906-018-2292-8
3. Burt, S. 2004. Essential oils: Their antibacterial properties and potential applications in foods–A review. International Journal of Food Microbiology, 94(3): 223 - 253. doi:10.1016/j.ijfoodmicro.2004.03.022
4. Eloff, J. N. 2000. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 44 (1): 1457 - 1463.
5. Ferri, D., Ubaldi, C., Marcozzi, G., Facsiani, P., Bacchetta, L. and Pace, L. 2017. Chemical Characterization of Narcissus poeticus from Sirente –Velino (Apennines - Italy): Galantamine Accumulation and Distribution of Allergenic Compounds in the Flower. Natural Product Communications, 12 (1): 15-18.
6. Halawani, E. M. 2014. Antimicrobial activity of Rosa damascena petals extracts and chemical composition by gas chromatography-mass spectrometry (GC/MS) analysis. African Journal of Microbiology Research, 8 (24): 2359-2367. DOI: 10.22192/lsa.2017.3.2.6
7. Hesham, H.A., Abdurahman, H.N. and Rasoli, M.Y. 2016. Techniques for Extraction of Essential Oils from Plants: A Review. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 10 (16): 117-127.
8. Kalemba, D. and Kunicka, A. 2003. Antibacterial and Antifungal Properties of Essential Oils. Current Medicinal Chemistry, 10. 813-829.
9. Koksal, N., Kafkas, E., Sadighazadi, S., and Kulahlioglu, I. 2015. Floral Fragrances of Daffodil under Salinity Stress. Romanian Biotechnological Letters, 20 (4):10600-10610.
10. Locarek, M., Novakva, J., Kloucek, P., Host alkova, A., Kokoska, L., Gabrlova, L., Safratova, M., Opleta, L. and Cahlikova, L. 2015. Antifungal and Antibacterial Activity of Extracts and Alkaloids of Selected Amaryllidaceae Species. Natural Product Communications, 10 (9): 1537-1540.
11. Lubbe, A. and Verpoorte, R. 2011. Cultivation of medicinal and aromatic plants for specialty industrial materials. Industrial Crops and products, 34 (1): 785 - 801. doi:10.1016/j.indcrop.2011.01.019
12. Mahen, M. Y., Mahmoodi Sourestani, M., Motamedi, H. and Seeyednejad, S. M. 2022. The Study on the hexane and ethanol extracts Components in difference varieties of narcissus (Narcissus tazetta L.). Plant Productions, 45 (3): 323-333. Doi: 10.22055/ppd.2022.40498.2027(In Persian)
13. Malaie, Y. and Najjari, Q. 2017. Pests and Diseases of Daffodils. First Edition. Publication of Agriculture Education, Tehran, Iran. P: 29. (In Persian)
14. Nazzaro, F., Fratianni, F., Coppola, R. and De Feo, V. 2017. Essential Oils and Antifungal Activity. Pharmaceuticals, 10 (86): 2-20. doi:10.3390/ph10040086
15. Nostro, A., Gernano, M. P., Angelo, V. A., Marino, A. and Cannatelli, M. A. 2000. Extraction methods and bioautography for evaluation of medicinal plant antimicrobial activity. Letters of Applied Microbiology, 30: 379-384. DOI: 10.1046/j.1472-765x.2000.00731
16. Oktavianawati, I., Letisya, N., Citra, P. and Utari, D. P. 2019. Essential Oil Composition of Rose Flowers from Karangpring Village Jember District Extracted by Distillation and Enfleurage. Journal ILMU DASAR, 20 (2): 67-74.
17. Omid Baigi, R. 2013. Production and processing of medicinal plants. First Vol. Qus Razavi Pub. Mashhad p 60. (In Persian)
18. Rota, C., Carraminana, J. J., Burillo, J. and Herrera, A. 2004. In vitro antimicrobial activity of essential oils from aromatic plants against selected foodborne pathogens. Journal of Food Protection, 67: 1252-1256.
19. Safaei-Ghomi, J. and Abbasi, A. 2010. Antimicrobial and antifungal properties of the essential oil and methanol extracts of Eucalyptus largiflorens and Eucalyptus intertexta. Pharmacognosy Magazine, 6 (23): 172 - 175. DOI: 10.4103/0973-1296.66930
20. Saranraj, P. and Durga Devi, V. 2017. Essential Oils and Its Antibacterial Properties – a Review. Life Science Archives, 3 (2): 994-1011. DOI: 10.22192/lsa.2017.3.2.6
21. Talib, W. H. and Mahasneh, A. M. 2010. Antimicrobial, Cytotoxicity and Phytochemical Screening of Jordanian Plants Used in Traditional Medicine. Molecules, 15. 1811-1824. Doi: 10.3390/molecules15031811
22. Tariq, H., Rafi. M., Amirzada, M. I., Muhammad, S. A., Yameen, M. A., Abdul Mannan., Ismail, T., Shahzadi, I., Ghulam Murtaza. and Fatima, N. 2022. Photodynamic cytotoxic and antibacterial evaluation of Tecoma stans and Narcissus tazetta mediated silver nanoparticles. Arabian Journal of Chemistry, 15. 1-10. https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2021.103652
23. Terry, M. I., Hernandez, V. R., Aquila, D. J., Weiss, J. and Cortines, M. E. 2021. The Effect of Post-harvest Conditions in Narcissus sp. Cut Flowers Scent Profile. Journal of Frontiers in Plant Science, 11. 1-14. doi: 10.3389/fpls.2020.540821
24. Ulusoy, S., Bosgelmez–Tenaz, G. and Secilmis–Canbay, H. 2009. Tocopherol, carotene, phenolic contents and antibacterial properties of rose essential oil, hydrosol and absolute. Current Microbiology, 59: 554-558. DOI 10.1007/s00284-009-9475-y
