تاثیر عصاره الکلی بره موم بر فعالیت پروتئازی جدایه های بالینی کاندیدا آلبیکنس

محورهای موضوعی : پاتوبیولوژی مقایسه ای

نکیسا سهرابی حقدوست ¹ ( گروه پاتوبیولوژی. واحد علوم تحقیقات. دانشگاه ازاد اسلامی. تهران. ایران )
نازیلا متدین ² ( گروه پاتوبیولوژی ، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران )
امیر علی انوار ³ ( استادیار گروه بهداشت و کنترل کیفی مواد غذائی، واحد علوم وتحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران )
پوریا عسگری ⁴ ( دانشجوی دکتری حرفه ای، دانشکده دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ارومیه، ایران )

تاریخ دریافت : 1399/04/27 تاریخ پذیرش : 1399/04/27 تاریخ انتشار : 1398/09/01

کلید واژه: فعالیت پروتئازی˓ عصاره بره موم,

چکیده مقاله :

کاندیدا آلبیکنس (Candida albicans) یکی از شایع ترین مخمرهای فرصت طلب انسانی و حیوانی است و در افراد دارای نقص سیستم ایمنی طیف وسیعی از بیماریها را ایجاد میکند. از مهم ترین فاکتورهای حدت در این مخمر میتوان به آنزیم های ترشحی پروتئاز اشاره کرد که نقش مهمی را در بیماریزایی و تهاجم ایفا می کند. شکست درمان مبتلایان به عفونتهای ناشی از کاندیدا آلبیکنس با داروهای ضد قارچی رایج̜ تحقیق بر روی عوامل ضد قارچی جدید را اجتناب ناپذیر میکند. در این راستا فعالیت پروتئازی جدایه های کاندیدا البیکنس در حضور عصاره الکی بره موم بررسی گردید. نمونه های مورد نظر از ضایعات دهان (15)˓ ناخن (8) و واژن (15) جدا شدند. در ابتدا فعالیت پروتئازی درتمام جدایه ها محاسبه گردید سپس از کمترین غلظت ممانعت کننده عصاره الکلی بره موم بدست آمده در مطالعه قبلی، برای ارزیابی فعالیت پروتئازی در گروه تیمار استفاده گردید. نتایج نشان داد، میانگین کمترین غلظت مهار کننده و کمترین غلظت کشنده بره موم برای تمامی جدایه های مورد مطالعه به ترتیب 6/360 و 1/1250 میکروگرم در هر میلی لیتر تعیین گردید. میانگین فعالیت پروتئازی در گروهای ناخن، واژن و دهان به ترتیب برابر است با %03/0± 2/0˓ %06/0± 34/0 و %06/0 ± 35/0 محاسبه گردید. فعالیت پروتئازی تمام گروه ها پس از تیمار با بره موم نسبت به گروه کنترل به طورمعناداری کاهش پیدا کرده است P<0.0001)). با توجه به خاصیت بره موم در کاهش فعالیت پروتئازی در جدایه ها شاید بتوان از آن در کاهش بیماریزایی و درمان عفونتهای کاندیدایی بهره جست.

چکیده انگلیسی:

کاندیدا آلبیکنس  (Candida albicans)  یکی از شایع ترین مخمرهای فرصت طلب انسانی و حیوانی است و در افراد دارای نقص سیستم ایمنی طیف وسیعی از بیماریها را ایجاد میکند. از مهم ترین فاکتورهای حدت در این مخمر میتوان به آنزیم های ترشحی پروتئاز اشاره کرد که نقش مهمی را در بیماریزایی و تهاجم ایفا می کند. شکست درمان مبتلایان به عفونتهای ناشی از کاندیدا آلبیکنس با داروهای ضد قارچی رایج̜ تحقیق بر روی عوامل ضد قارچی جدید  را اجتناب ناپذیر میکند. در این راستا فعالیت پروتئازی جدایه های کاندیدا البیکنس در حضور عصاره الکی بره موم بررسی گردید. نمونه های مورد نظر از ضایعات دهان (15)˓ ناخن (8) و واژن (15) جدا شدند. در ابتدا فعالیت پروتئازی درتمام جدایه ها محاسبه گردید سپس از کمترین غلظت ممانعت کننده عصاره الکلی بره موم بدست آمده در مطالعه قبلی، برای ارزیابی فعالیت پروتئازی در گروه تیمار استفاده گردید. نتایج نشان داد، میانگین کمترین غلظت مهار کننده و کمترین غلظت کشنده بره موم برای تمامی جدایه های مورد مطالعه به ترتیب 6/360 و 1/1250 میکروگرم در هر میلی لیتر تعیین گردید. میانگین فعالیت پروتئازی در گروهای ناخن، واژن و دهان به ترتیب برابر است با  %03/0± 2/0˓ %06/0± 34/0 و %06/0 ± 35/0 محاسبه گردید. فعالیت پروتئازی تمام گروه ها پس از تیمار با بره موم  نسبت به گروه کنترل به طورمعناداری کاهش پیدا کرده است P<0.0001)). با توجه به  خاصیت بره موم در کاهش فعالیت پروتئازی در جدایه ها شاید بتوان از آن در کاهش بیماریزایی و درمان عفونتهای کاندیدایی بهره جست.

منابع و مأخذ:

1. Matsumoto H, Nagao J-i, Cho T, Kodama J. Evaluation of pathogenicity of Candida albicans in germination-ready states using a silkworm infection model. Medical mycology journal. 2013;54(2):131-40.


2. Gokce G, Cerikcioglu N, Yagci A. Acid proteinase, phospholipase, and biofilm production of Candida species isolated from blood cultures. Mycopathologia. 2007;164(6):265.


3. Negri M, Silva S, Henriques M, Oliveira R. Insights into Candida tropicalis nosocomial infections and virulence factors. European journal of clinical microbiology & infectious diseases. 2012;31(7):1399-412.


4. Ombrella AM, Racca L, Ramos L. Actividades proteinasa y fosfolipasa de aislamientos de Candida albicans provenientes de secreciones vaginales con distintos valores de pH. Revista iberoamericana de micología. 2008;25(1):12-6.


5. Oliveira ACP, Shinobu CS, Longhini R, Franco SL, Svidzinski TIE. Antifungal activity of propolis extract against yeasts isolated from onychomycosis lesions. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. 2006;101(5):493-7.


6. Budtz-Jörgensen E. Proteolytic activity of Candida spp. as related to the pathogenesis of denture stomatitis. Sabouraudia: Journal of Medical and Veterinary Mycology. 1974;12(2):266-71.


7. Yuan X, Mitchell BM, Hua X, Davis DA, Wilhelmus KR. The RIM101 signal transduction pathway regulates Candida albicans virulence during experimental keratomycosis. Investigative ophthalmology & visual science. 2010;51(9):4668-76.


8. Mattei AS, Alves SH, Severo CB, Guazzelli LdS, Oliveira FdM, Severo LC. Determination of germ tube, phospholipase, and proteinase production by bloodstream isolates of Candida albicans. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical. 2013;46(3):340-2.


9. Herrera CL, Alvear M, Barrientos L, Montenegro G, Salazar LA. The antifungal effect of six commercial extracts of Chilean propolis on Candida spp. Ciencia e investigación agraria. 2010;37(1):75-84.


10. Marcucci MC, Ferreres F, Garcıa-Viguera C, Bankova V, De Castro S, Dantas A, et al. Phenolic compounds from Brazilian propolis with pharmacological activities. Journal of ethnopharmacology. 2001;74(2):105-12.


11. Dota KFD, Consolaro MEL, Svidzinski TIE, Bruschi ML. Antifungal activity of Brazilian propolis microparticles against yeasts isolated from vulvovaginal candidiasis. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. 2011;2011.


12. Katiraee F, Teifoori F, Soltani M. Emergence of azole-resistant Candida species in AIDS patients with oropharyngeal candidiasis in Iran. Current medical mycology. 2015;1(3):11.


13. Haghdoost N, Salehi T, Khosravi A, Sharifzadeh A. Antifungal activity and influence of propolis against germ tube formation as a critical virulence attribute by clinical isolates of Candida albicans. Journal

 

de mycologie medicale. 2016;26(4):298-305.

 

14. Abdulkhani A, Hosseinzadeh J, Ashori A, Esmaeeli H. Evaluation of the antibacterial activity of cellulose nanofibers/polylactic acid composites coated with ethanolic extract of propolis. Polymer Composites. 2017;38(1):13-9.


15. Marcucci M. Propolis: chemical composition, biological properties and therapeutic activity. Apidologie. 1995;26(2):83-99.


16. Mayer FL, Wilson D, Hube B. Candida albicans pathogenicity mechanisms. Virulence. 2013;4(2):119-28.


17. Cannon R, Chaffin W. Oral colonization by Candida albicans. Critical Reviews in Oral Biology & Medicine. 1999;10(3):359-83.


18. Budzyńska A, Sadowska B, Więckowska-Szakiel M, Różalska B. Enzymatic profile, adhesive and invasive properties of Candida albicans under the influence of selected plant essential oils. Acta Biochimica Polonica. 2014;61(1).


19. Nailis H, Kucharíková S, Řičicová M, Van Dijck P, Deforce D, Nelis H, et al. Real-time PCR expression profiling of genes encoding potential virulence factors in Candida albicans biofilms: identification of model-dependent and-independent gene expression. BMC microbiology. 2010;10(1):114.


20. D'auria F, Tecca M, Scazzocchio F, Renzini V, Strippoli V. Effect of propolis on virulence factors of Candida albicans. Journal of chemotherapy. 2003;15(5):454-60.


21. Kantarcioǧlu AS, Yücel A. Phospholipase and protease activities in clinical Candida isolates with reference to the sources of strains: Phospholipase‐and Protease‐Aktivitat bei klinischenCandida‐Isolaten mit Bezug zur Herkunft der Stämme. Mycoses. 2002;45(5‐6):160-5.