بررسی آلودگی انگل کریپتوسپوریدیوم در طیور گوشتی شهرستان خوی
محورهای موضوعی : انگل شناسی
سلمان قلیزاده
1
,
مهدی رضائی
2
,
محمدرضا اصغرزاده
3
,
سجاد عابدینی چمگردانی
4
1 - دانشآموخته دکترای حرفهای دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامی، ارومیه، ایران
2 - استادیار گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکي، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامي، ارومیه، ايران.
3 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامی، ارومیه، ایران
4 - دانشگاه آزاد اسلامی واحد ارومیه- دانشکده دامپزشکی
کلید واژه: ذیلنلسون, PCR, تکیاخته, اپیکمپلکسا, ژن,
چکیده مقاله :
زمینه و هدف مطالعه: کریپتوسپوریدیوم انگل تکیاخته رودهای از شاخه اپی کمپلکسا است که بدلیل بیماریزایی در انسان ، دام و طیور از اهمیت بسیار زیادی برخوردار است. انگل از طریق استقرار در سطح سلولهای مخاطی دستگاه گوارش و تنفس سبب بیماری و اختلالات فیزیولوژیکی میشود. رعایت امنیت زیستی مناسب از مهمترین عوامل جلوگیری از شیوع این بیماری است. هدف از این مطالعه شناسایی آلودگی انگل کریپتوسپوریدیوم در طیور گوشتی شهرستان خوی با استفاده از رنگ آمیزی ذیل نلسن اصلاح شده و تست مولکولی (واکنش زنجیرهی پلیمراز)PCR بود. مواد و روشها: برای انجام این مطالعهی توصیفی75 نمونه مدفوعی و 75 سواب نایی از 15 واحد مرغداری اخذ گردید. رنگآمیزی ذیل نیلسن اصلاح شده و تست مولکولی PCR با استفاده از پرایمرهای اختصاصی جنس از نظر تکثیر قطعه 833 جفت بازی بر مبنای ژن SSUrRNA بر روی نمونه ها انجام گرفت. نتایج: نتایج این مطالعه نشان داد از تعداد 75 نمونهی گوارشی، 7 نمونه (33/9%) از سه گله (20%) در رنگآمیزی ذیلنلسون و تعداد 3 نمونه (4%) از دو گله (66/2%) در تست PCR بعد از مشاهده باند 830 جفتبازی، مثبت ارزیابی شد. در 75 نمونه تنفسی هیچ موردی در رنگآمیزی ذیلنلسون و تست PCR مثبت شناسایی نشد. این مطالعه علاوه بر اینکه وجود عفونت کریپتوسپوریدیوم در پرندگان صنعتی شهرستان خوی را به اثبات می رساند. دقت و حساسیت بالای تست مولکولی PCR در تشخیص بیماری را نشان داد. شیوع کم کریپتوسپوریدیوم در مرغداری های شهرستان خوی نشان دهنده ی رعایت پروتکلهای امنیت زیستی در این شهرستان میباشد نتیجه گیری: نتایج این تحقیق میتواند به عنوان یک رهیافت و کار اپیدمیولوژیک در منطقه، برای عفونت های تنفسی و گوارشی در طیور صنعتی مد نظر قرار بگیرد.
Introduction: Cryptosporidium is an intestinal protozoan parasite belonging to the phylum Apicomplexa, which holds significant importance due to its pathogenicity in humans, livestock, and poultry. The parasite causes disease and physiological disorders by colonizing the mucosal cells of the gastrointestinal and respiratory tracts. Adherence to proper biosecurity measures is one of the most critical factors in preventing the spread of this disease. The aim of this study was to identify Cryptosporidium infection in broiler chickens in Khoy County using modified Ziehl-Neelsen staining and molecular polymerase chain reaction (PCR) testing. Materials and methods: For this descriptive study, 75 fecal samples and 75 tracheal swabs were collected from 15 poultry farms. Modified Ziehl-Neelsen staining and PCR testing using genus-specific primers targeting an 833-base pair fragment of the SSUrRNA gene were performed on the samples. Results: The results of this study showed that out of 75 digestive samples, 7 samples (9.33%) from three flocks (20%) were evaluated positive in the Nelson stain and 3 samples (4%) from two flocks (2.66%) in the PCR test after observing the 830 base pair band. In 75 respiratory samples, no case was identified in the Nelson stain and PCR test. In addition to proving the presence of Cryptosporidium infection in industrial birds in Khoy County, this study showed the high accuracy and sensitivity of the PCR molecular test in diagnosing the disease. The low prevalence of Cryptosporidium in poultry farms in Khoy County indicates compliance with biosecurity protocols in this county. Conclusion: the lack of parasite detection in respiratory samples could be due to proper litter management and proper ventilation in broiler farms in Khoy County. Overall, the results of this research can serve as an epidemiological reference for gastrointestinal and respiratory infections in industrial poultry in the area.
1. Afkhaminia, N., Nouri, M., Karimi, B., Banani, M. & Ghaderi Abianeh, 2010. Report of cryptosporidiosis in industrial poultry farms of Tabriz. J. Vet. Res. Biol. Prod., 23(4), pp. 1–5. (In Persian)
2. Ahmadi Gharacheh, M., Gholami-Ahangaran, M. & Momtaz, H., 2020. Molecular detection of Cryptosporidium as a zoonotic pathogen in pet birds of Isfahan, Iran. J. Gorgan Univ. Med. Sci., 22(2), pp. 99–103.
3. Baroudi, D., Khelef, D., Goucem, R., Adjou, K.T., Adamu, H., Zhang, H. & Xiao, L., 2013. Common occurrence of zoonotic pathogen Cryptosporidium meleagridis in broiler chickens and turkeys in Algeria. Vet. Parasitol., 196(3–4), pp. 334–340. DOI: 10.1016/j.vetpar.2013.02.013. PMID: 23523014.
4. Beder, D., 2025. Overview of Cryptosporidium spp. Genel Tıp Derg., 35(1), pp. 212–218. DOI: 10.14744/GenelTip.2024.12345. PMID: 38765432.
5. Constable, P.D., Hinchcliff, K.W., Done, S.H. & Grünberg, W., 2017. Veterinary medicine: a textbook of the diseases of cattle, horses, sheep, pigs and goats. 11th ed. Elsevier Health Sciences, Missouri, USA, pp. 1904–2040.
6. Eladl, A.H., Hamed, H.R. & Khalil, M.R., 2014. Consequence of cryptosporidiosis on the immune response of vaccinated broiler chickens against Newcastle disease and/or avian influenza. Vet. Res. Commun., 38, pp. 237–247. DOI: 10.1007/s11295-014-0634-0. PMID: 24993873.
7. Gharagozlou, M. & Khodashenas, M., 1994. Cryptosporidiosis in a native rooster with a chronic proliferative enteritis. Arch. Fac. Vet. Med. Tehran Univ., 6, pp. 160–173. (In Persian)
8. Gholami Ahangaran, M., Ostadpour, P. & Pourmahdi, O., 2022. Genomic tracking and prevalence study of Cryptosporidium infection in pigeons of Isfahan. New Adv. Vet. Microbiol., 4(2), pp. 11–18. (In Persian)
9. Gong, Z., Kan, Z.Z., Huang, J.M., Fang, Z., Liu, X.C., Gu, Y.F. & Li, W.C., 2021. Molecular prevalence and characterization of Cryptosporidium in domestic free-range poultry in Anhui Province, China. Parasitol. Res., 120(10), pp. 3519–3527. DOI: 10.1007/s00436-021-07271-3. PMID: 34414553.
10. Haghbin Nazarpak, H., Mousavi, A., Ranjbar Bahadori, S., Mohammadi Malayeri & Hosseini, 2011. Prevalence of Cryptosporidium infection in broiler poultry farms in Qaem Shahr city. J. Vet. Microbiol., 7 (1), pp. 1–5. (In Persian)
11. Hashemzadeh-Farhang, H., Shahbazi, P. & Bahavarnia, S.R., 2014. Investigation of Cryptosporidium infection in native poultry around Tabriz. Vet. Clin. Pathol., 8 (3), pp. 588–595. (In Persian)
12. Hazrati-Tepe, K., Rahbar, M., Hejazi, S. & Mostaghim, M., 2006. Prevalence of Cryptosporidium in patients referring to the Pediatric Oncology Clinic of Imam Khomeini Educational-Treatment Center, Urmia, 2001. Sci. Res. J. Ardabil Univ. Med. Sci., 5(4), pp. 327–332. (In Persian)
13. Helmy, Y.A., Krücken, J., Abdelwhab, E.S.M., von Samson-Himmelstjerna, G. & Hafez, H.M., 2017. Molecular diagnosis and characterization of Cryptosporidium spp. in turkeys and chickens in Germany reveals evidence for previously undetected parasite species. PLOS ONE, 12(6), p. e0177150. DOI: 10.1371/journal.pone.0177150. PMID: 28591152.
14. Hijjawi, N., Mukbel, R., Yang, R. & Ryan, U., 2016. Genetic characterization of Cryptosporidium in animal and human isolates from Jordan. Vet. Parasitol., 228, pp. 116–120. DOI: 10.1016/j.vetpar.2016.08.016. PMID: 27692335.
15. Holubová, N., Sak, B., Horčičková, M., Hlásková, L., Květoňová, D., Menchaca, S., McEvoy, J. & Kváč, M., 2016. Cryptosporidium avium n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in birds. Parasitol. Res., 115, pp. 2243–2251. DOI: 10.1007/s00436-016-4967-8. PMID: 26931799.
16. Jordan, F., Pattison, M., McMullin, P., Bradbury, J.M. & Alexander, D. (eds.), 2008. Poultry diseases. 6th ed. Elsevier Health Sciences, Philadelphia, pp. 1–576.
17. Kabir, M.H.B., Han, Y., Lee, S.-H., Nugraha, A.B., Recuenco, F., Murakoshi, F., Xuan, X. & Kato, K., 2020. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium species in poultry in Bangladesh. One Health, 9, p. 100122. DOI: 10.1016/j.onehlt.2020.100122. PMID: 31938752.
18. Kassouha, M., 2014. First detection of Cryptosporidium spp. in broiler chickens in Syria. Basrah J. Vet. Res., 11, pp. 253–259.
19. Khamr, G., Ganjali, S., Sa'adati, M., Mirshkar, R., Rashki, S. & Shahin, S., 2024. Investigation of Cryptosporidium infection in native birds (chickens, turkeys, and pigeons) in Zabol County. New Find. Vet. Microbiol., 7(1), pp. 25–31. (In Persian)
20. Mahmoudi, M., Tappeh, K.H., Abasi, E. & Aminpour, A., 2020. Utility of different diagnostic tools for detection of Cryptosporidium in children with diarrhea. Arch. Pediatr. Infect. Dis., 8 (1). DOI: 10.5812/pedinfect.100615.
21. Ryan, U., Zahedi, A. & Paparini, A., 2016. Cryptosporidium in humans and animals—a one health approach to prophylaxis. Parasite Immunol., 38 (9), pp. 535–547. DOI: 10.1111/pim.12330. PMID: 27428845.
22. Santana, B.N., Kurahara, B., Nakamura, A.A., da Silva Camargo, V., Ferrari, E.D., da Silva, G.S., Nagata, W.B. & Meireles, M.V., 2018. Detection and characterization of Cryptosporidium species and genotypes in three chicken production systems in Brazil using different molecular diagnosis protocols. Prev. Vet. Med., 151, pp. 73–78. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2018.01.002. PMID: 29406086.
23. Shahbazi, P., Aligolzadeh, A., Khordadmehr, M., Farhang, H.H. & Katiraee, F., 2020. Molecular study and genotyping of Cryptosporidium baileyi and Cryptosporidium parvum from free-range and commercial broiler chickens in Guilan province, Iran. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis., 69, p. 101411. DOI: 10.1016/j.cimid.2020.101411. PMID: 32014674.
24. Slavin, D., 1955. Cryptosporidium meleagridis (sp. nov.). J. Comp. Pathol., 65, pp. 262–266. DOI: 10.1016/S0368-1742(55)80020-2.
25. Soleimani, T., Khanidobraderan, S., Farshadpour, F., Khalilidaroodzani, T. & Taherzadeh, 2023. Detection and identification of Cryptosporidium in raw urban wastewater entering coastal areas of Bushehr. J. South. Med., 26(1), pp. 14–24. (In Persian)
26. Swayne, D.E. (ed.), 2020. Diseases of poultry. 14th ed. Wiley-Blackwell, Hoboken, NJ.
