شناسایی ترکیبات شیمیایی و اثر اسانس گیاهان نعنا، ریحان، شوید و جعفری بر قارچ آسپرژیلوس پارازیتیکوس
محورهای موضوعی : میکروب شناسی پزشکی
فاطمه نوربخش
1
(دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ورامین-پیشوا، گروه میکروبیولوژی)
ساسان رضایی
2
(دانشگاه علوم پزشکی تهران، دانشکده بهداشت، بخش انگل شناسی و قارچ شناسی)
مرجان عرب
3
(دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ورامین-پیشوا، گروه علوم گیاهی)
کلید واژه: نعنا, ریحان, شوید, جعفری, آسپرژیلوس پارازیتیکوس,
چکیده مقاله :
سابقه و هدف: در این مطالعه اثرات ضدقارچی اسانس گیاهان نعنا، شوید، جعفری و ریحان بر روی قارچ سم‌زای آسپرژیلوس پارازیتیکوس استاندارد مورد بررسی قرار گرفت. همچنین ترکیبات شیمیایی تشکیل دهنده اسانس گیاهان ذکر شده تعیین گردید. مواد و روش‌ها: در ابتدا اسانس گیاهان با روش تبخیر آبی از گیاه خشک به دست آمدند. سپس برای شناسایی ترکیبات شیمیایی آن‌ها از روش GC/MS استفاده شد. حداقل غلظت بازدارنده رشد با روش تعیین غلظت متوالی تعیین گردید. یافته‌ها: مهم‌ترین ترکیبات تشکیل دهنده نعنا: بنزن برومو فنوکسی متیل دی متوکسی، ریحان: اتیل دکبوران، شوید: دی متیل دکربا دکبوران و جعفری: متیل آنتراسن بود. غلظت بازدارنده برای نعنا، شوید، ریحان و جعفری به ترتیب 5/1، 5/1 ،3 و 4 میکرولیتر در میلی‌لیتر محاسبه گردید. اثر ضدقارچی با توجه به غلظت و ترکیب اسانس به کار رفته متفاوت بود. این اثر در دو گیاه نعنا و شوید مشابه و بیش از دو گیاه دیگر مشاهده شد. نتیجه گیری: نتایج این مطالعه نشان داد که اسانس‌های گیاهی به کار رفته در این پژوهش دارای اثر ضدقارچی بسیار قوی می‌باشند. بنابراین می‌توانند به عنوان عواملی محافظت کننده در جلوگیری از آلودگی برخی از مواد غذایی با قارچ‌های آلوده کننده سم‌زا به کار روند.
Background and objective: In this study, the antifungal effects of the extracted oil of Petroselinum crispum, Acimum basilicum, Anethum graveolens, Mentha viridis on Aspergilus parasiticus ATCC 15517 was evaluated. Also, the chemical compositions of the vegetables were determined. Materials and methods: The essential oils were obtained using hydrodestillation of dried plant material. Their compositions and Minimum inhibitory concenteration (MIC) were determined by GC-MS and serial dilution method, respectively. Results: The main component of the essential oils was detected as follow: Mentha viridis: Benzen bromophenoxy-methyl dimethyl, Acimum basilicum: Ethyldecaborane, Anethum graveolens:Decarbadecaborane- dimethyl and Petroselinum crispum: Methyl anthracene. Minimum Inhibitory concenteration of the essential oils determined by serial dilution method. MIC for Mentha viridis, Anethum graveolens, Acimum basilicum, Petroselinum crispum were 1.5,1.5,3 and 4 µl/ml, respectively. The antifungal power of assayed essential oils was different, depending on their concentration. This effect in Mentha viridis and Anethum graveolens was identical and stronger than two others. Conclusion: These results indicate that the mentioned essential oils had great antifungal activities and could be used as preservatives and fungicides in food in order to preventing of food pollution.
1. Zeini F, Mahbod ASA, Emami M. Comprehensive Medical Mycology. 2Ed, Tehran University Publication, Tehran. 2004; 147-177.
2. Horn BW, Dorner JW. Regional differences in production of aflatoxin B1 and cyclopiazonic acid by soil isolation of A. flavus along transect within the united states. Appl. Environ. Microbiol. 1999; 65: 1444-1449.
3. Stoloff L. Aflatoxins an overview. Mycotoxin in human and animal health. Park Forest, Illinois: Pathotos Publisher. 1977; 7-28.
4. 555555544444 Bondy GS, Pestka JJ. Immunomodulation by fungal toxins. J. Toxicol. Environ. Health. B-Crit. Rev. 2000; 3(2): 109-143.
5. Wang LY, Hatch M, Chen CJ, Levin B, You SL, Lu SN, Wu MH. Aflatoxin exposure and the risk of hepathocellular carcinoma in Taiwan. Int. J. Cancrer. 1996; 67(5): 620-625.
6. Rojhan M. Medicine and herbal treatment. 4th Ed. Tehran Alavi Press. 2000; 20-22.
7. Amin G. Popular medicinal plants of Iran. Iranian Research Institute of Medicinal Plants. Tehran. 1999.
8. Omidbaigi R. Production and processing of medicinal plants. Vol 2. Astan ghodse Razavi Publication, Tehran. 2000; P438.
9. Baratta TM, Dorman DJH, Deans GS, Figueiredo CA, Barroso GJ, Ruberto G. Antimicrobial and antioxidants properties of some commercial oils. Flavour Fragr J. 1998; 13:235-244.
10. Razzaghi Abyaneh M, Shams Ghahfarokhi M, Yoshinari T, Rezaee MB, Jaimand
K, Nagasawa H, Sakuda S. Inhibitory effects of Satureja hortensis L. essential oil on growth and afflatoxin pro duction by Aspergillus parasiticus. Int. J. Food Microbiol. 2008; 123:228-233.
12. Abrac ML, Bragulat MR, Castella G. Mycoflora and aflatoxin-producing strain in animal mixed feeds. J. Food Protec. 1994; 57(3):256-258.
13. Katta SK, Eskridge KM, Bullerman LB. Mold content of commercial popcorn. J. Food protec. 1995; 58:1014-1017.
14. Bernard CB, Arnason JT, Philogene BJR. Effect of lignans and other secondary metabolites of the Asterraceae on the mono oxygenase activity of the European corn borer. Phytochemistry. 1989; 28:1373-1377.
15. Rasooli I, Owlia P. Chemoperventation by Thyme oils of Aspregillus parasiticus growth and Aflatoxin production. Phytochemistry. 2005; 66(24):2851-2856.
16. Soleiman KM, Badeo RI. Effect of oil extracted from some medicinal plants on different mycotoxigenic fungi. Food Chem. Toxicol. 2002; 40(11):1669-1675.
17. Atanda OO, Akpan I, Oluwafemi F. The potential of some spices essential oils in the control of Aspergillus parasiticus CFR223 and aflatoxin production. Food control. 2007; 18(5):601-607.
18. Sidhu OP, Chandra H, Behl HM. Occurance of aflatoxins in mahua (madhuca indica Gmel) seeds: Synergistic effect of plant extracts on inhibition of Aspergillus flavus growth and aflatoxin production.Food Chem. Toxicol. 2009; 47(4):774-777.
19. Soković MD, Vukojević J, Marin PD, Brkić DD, Vajs V, van Griensven JLD. Chemical composition of essential oils of Thymus and Mentha species and their antifungl activities. Molecules. 2009; 14:238-249.
20. Jahanshiri Z, Shams-Ghahfarokhi M, Allameh A, Razzaghi Abyaneh M. Effect of curcumin on Aspergillus parasiticus growth and expression major gene involved in the early and late stages of Aflatoxin biosynthesis. Iranian J. Publ. Health. 2012; 41(6):72-79.
