اثر دانه اسپند روی فاکتورهای خونی، پاسخ ایمنی و جمعیت باکتریایی انتخابی روده جوجه های گوشتی
محورهای موضوعی : بیماریهای طیورمجید گودرزی 1 , شهرام ننه کرانی 2 , حسین وثوقی 3
1 - گروه علوم دامی، واحد بروجرد، دانشگاه آزاد اسلامی، بروجرد، ایران
2 - گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد بروجرد، دانشگاه آزاد اسلامی، بروجرد، ایرا ن
3 - گروه دامپزشکی، واحد بروجرد، دانشگاه آزاد اسلامی، بروجرد، ایرا ن
کلید واژه: جوجه های گوشتی, دانه اسپند, آنتی بیوتیک, پاسخ ایمنی, پارامترهای بیوشیمیایی خون,
چکیده مقاله :
این آزمایش برای بررسی اثر پودر دانه اسپند و آنتی بیوتیک بر پارامترهای بیوشیمیایی سرم خون ، پاسخ ایمنی و جمعیت میکرو فلور روده در جوجه های گوشتی سویه راس (308) طراحی شد. 240 جوجه گوشتی یک روزه به طور تصادفی برای چهار تیمارآزمایشی در نظر گرفته شدند. تیمار های آزمایشی شامل کنترل(C) ، بدون دانه اسپند و آنتی بیوتیک، جیره غذایی حاوی 300 میلی گرم در کیلوگرم لینکومایسین 88/0 درصد (A) و جیره های غذایی حاوی 2 گرم در کیلوگرم (H1) و4 گرم در کیلوگرم پودر دانه اسپند (H2) بود. برای تعیین تیتر آنتی بادی علیه بیماری نیوکاسل در 14 و 21 روزگی و برای پارامترهای بیوشیمیایی در سن 42 روزگی نمونه گیری خون انجام شد. جمعیت باکتری های انتخابی در قسمت ایلئوم روده با استفاده از روشهای میکروبیولوژیکی مرسوم با استفاده از محیط های انتخابی آگار شمارش شدند. وجود پودر دانه اسپند در جیره غذایی منجر به کاهش قابل توجه کلسترول کل و افزایش قابل توجه HDL نسبت به گروه کنترل و آنتی بیوتیک شد. تیتر آنتی بادی علیه ویروس بیماری نیوکاسل(NDV) تحت تاثیر تیمارهای آزمایش قرار نگرفت. جمعیت E. coli در جوجه های گوشتی تغذیه شده با آنتی بیوتیک و پودر دانه اسپند به طور قابل توجهی کمتر از گروه شاهد بود، اما جمعیت باکتری های لاکتوباسیل تنها توسط آنتی بیوتیک افزایش یافت. به طور کلی نتایج این مطالعه نشان داد که افزودن پودر دانه اسپند می تواند تأثیر مثبتی بر برخی از پارامترهای بیوشیمیایی و میکرو فلور دستگاه گوارش داشته است.
This experiment was designed to study the effects of feeding different levels of Peganum harmala seeds (PHS) and antibiotic on serum biochemical parameters, immune response and intestinal microflora composition in Ross (308) broiler chickens. A total of 240 one-d-old unsexed broiler chickens were randomly allocated to each of the 4 treatment groups, each with 4 replicate pens of 15 chicks. The dietary treatments included of control (C) - without PHS and antibiotic - the diet contains 300 mg/Kg Lincomycin 0.88% (A) and the diets contain 2g/Kg (H1) and 4g/Kg (H2) PHS. The chicks were raised on floor pens for 6 weeks. Blood samplings were performed for determine of antibody titer against Newcastle disease on 14 and 21 days and for biochemical parameters on 42 days of age. The populations of Lactobacilli spp. and Escherichia coli were enumerated in ileum by conventional microbiological techniques using selective agar media. Inclusion of PHS in diet resulted in a significant decrease in total cholesterol and significant increase in HDL relative to the control and antibiotic groups. Antibody titer against NDV was not affected by experimental treatments. The E. coli population in birds supplemented with antibiotic and PHS was significantly lower than control but the Lactobacilli spp. population increased only by antibiotic and not by PHS. In conclusion, the results of this study showed that addition of Peganum harmala seeds powder seem to have had a positive influence on some biochemical parameters and gastrointestinal microflora.
1- Abdel Aziz H.G., Abdel Kader S.M., El-Sayed M.M., EL-Malt E.A., Shaker E.S. (1999). Novel β–Carboline alkaloidfrom Peganum Harmala as antibacterial agant. in proc. Tenth Radiation Physics & Protection Conference, Nasr City - Cairo, Egypt, 27-30.
2- Abdel-Fattah A.F., Matsumoto K., Gammaz H.A., Watanabe H. (1995). Hypothermic effect of harmala alkaloid in rats: involvement of serotonergic mechanism. Pharmacol. Biochem. Behav., 52(2): 421–426.
3- Abaza I.M., Asar M.A., Elshaarrawi G.E., Hassan M.F. (2003). Effect of using Nigella seeds, Chamomile flowers, Thyme flowers and Harmala seeds as feed additives on performance of broiler. Egypt. J. of Agric. Res., 81(2): 735-750.
4- Arshad M., Akhtar A., Jan S., (2014). Association of peganum harmala Supplementation with immunity against ND, IB and IBD in broiler chicks. Pakistan Journal of Science. 66(1): 88-94.
5- Arshad N., Zitterl-Eglseer K., Hasnain S., Hess M. (2008). Effect of Peganum harmala or its beta-carboline alkaloids on certain antibiotic resistant strains of bacteria and protozoa from poultry. Phytother. Res., 22(11): 1533-1538.
6- Aslam N., Wani A.A., Nawchoo I.A., Bhat M.A. (2014). Distribution and Medicinal importance of Peganum harmala- A review. Int J Adv Res., 2(2): 751-755.
7- Ayasan T. (2013). Effects of dietary Yucca schidigera on hatchability of Japanese Quails. Indian J Anim Sci., 83(6): 641-644.
8- Berrougui H., Isabelle M., Cloutier M., Hmamouchi M., Khalil A. (2006). Protective effects of Peganum harmala L. extract, harmine and harmaline against human low–desity lipoprotein oxidation. J. Pharmacy & Pharamacol., 58(7): 967-974.
9- Burgat V. (1991). Residues of drugs of veterinary use in food, La Revue du Praticien 41(11): 985-990.
10- Ciftci M., Simsek U.G., Yuce A., Yilmaz O., Dalkilic B. (2010). Effects of dietary antibiotic and cinnamon oil supplementation on antioxidant enzyme activities, cholesterol levels and fatty acid compositions of serum and meat in broiler chickens. Acta Vet. Brno., 79(1): 33–40.
11- Cowan M.M. (1999). Plant products as antimicrobial agents. Clin. Microbiol Rev., 12(4): 564- 582.
12- Darabpour E., Motamedi H., Poshtkouhian Bavi A., Seyyed Nejad S.M. (2011). Antibacterial activity of different parts of Peganum harmala L. growing in Iran against multi-drug resistant bacteria. EXCLI J., 10: 252-263.
13- Eini A.M., Fazaely H., Moharrami Fard M., Meini M., Drab M., Ahmadi Far M. (2014). Effect of Peganum harmala L. on lipid parameters in hypercholesterolemia-induced male Wistar Rat. Academia Journal of Medicinal Plants. 2(5): 074-078.
14- Ghareghani Poor M., Akbary P., Akhlaghi M., Fereidouni M.S. (2008). Nonspecific immune response of rainbow trout (oncorhynchus mykiss, walbaum) fed with seed extract of peganum harmala L. Indian J of Fundamental and Applied Life Sciences. 4(3): 249-255.
15- Goodarzi M., Landy N. Nanekarani Sh. (2013). Effect of onion (Allium cepa L.) as an antibiotic growth promoter substitution on performance, immune responses and serum biochemical parameters in broiler chicks. Health. 5(8): 1210-1215.
16- Goodarzi M., Mohtashami Pour N., Modiri D. (2014).The effect of savory (Satureja khuzistanica) essential oils on performance and some blood biochemical parameters of Ross and Cobb broilers. Annu. res. rev. in biol., 4(24): 4336-4343.
17- Hasanzadeh Tahery M.M., Hassanpour Fard M., Rabiee N., Ghorishe A., Ravanbakhsh, N. (2013). Effects of aqueous and ethanolic extracts of Peganum harmala L. seeds on lipids profile in rats. Journal of Birjand University of Medical Sciences 20(2): 108-114.
18- Jinous A., Fereshteh R. (2012). Chemistry, pharmacology and medicinal properties of Peganum harmala L. Afr. J. Pharm. Pharmacol., 6(22): 1573-1580.
19- Moghadam M.S., Maleki S., Darabpour E., Motamedi H., Seyyednejad S.M. (2010). Antibacterial activity of eight local plant extracts in Khouzestan, Iran against methicillin and cefixime resistant Staphylococcous aureus strains. Asian pacific J Trop Med., 3(4): 262- 265.
20- Monsef H.R., Ghobadi A., Iranshahi M., Abdollah M. (2004). Antinociceptive effects of Peganum harmala L. alkaloid extract on mouse formalin test. J. Pharm. Sci. 7(1): 221-222.
21- Prashanth D., John S. (1999). Antibacterial activity of Peganum harmala. Fitoterapia. 70(4): 438-439.
22- Qazan W.S. (2009). The effect of low levels of dietary Peganum harmala L. and Ballota undulata or their mixture on chicks. J Anim Vet Adv., 8(8): 1535-1538.
23- Rahimi S., Teymouri Zadeh Z., Karimi Torshizi M.A., Omidbaigi R., Rokni H. (2011). Effect of the three herbal extracts on growth performance, immune system, blood factors and intestinal selected bacterial population in broiler chickens. J of Agricul Sci and Techn., 13(4): 527-539.
24- Saeed S.A., Farnaz S., Simjee R.V., Malik A. (1993). Triterpenes and β- sitosterol from piper betel: Isolation antiplatlet and anti-inflammatory effects. Biochem soc Trans., 21(4): 462s.
25- Salari E., Ahmadi K., Dehyaghobi R.Z., Purhematy A. Takalloozadeh H.M. (2012). Toxic and repellent effect of harmal (Peganum harmala L.) acetonic extract on several aphids and Tribolium castaneum. Chilean J of Agricul. Res., 72: 147-151.
26- SAS. (1998). User’s Guide, Statistics. SAS Institute, Cary, NC. Schmidt, E. and F.W.
27- Shahverdi A.R., Monsef-Esfahani H.R., Nickavar B., Bitarafan L., Khodaee S. Khoshakhlagh N. (2005). Antimicrobial activity and main chemical composition of two smoke condensates from Peganum harmala seeds. J of Biosci., 60(10): 707–710.
28- Shonouda M., Osman S., Salama O., Ayoub A., (2008).Toxical effect of Peganum harmala L. leaves on the cotton leaf worm, Spodoptera littoralis Boised and its parasitoids Microlitis refiventris Kok. Pak J Biol Sci., 11(4): 546-552.
29- Singh A.B., Chaturvedi J.P., Narender T. Srivastava A.K. (2008). Preliminary studies on the hypoglycemic effect of Peganum harmala L. Seeds ethanol extract on normal and streptozotocin induced diabetic rats. Indian J of Clini Bioch., 23: 391-393.
30- Tanweer A.J., Chand N., Khan S., Qureshi M.S., Akhtar A., Niamatullah M. (2012). Impact of methanolic extract of Peganum Harmala on the weight gain, feed conversion ratio, feed cost and gross return of broiler chicks. J Anim Plant Sci., 22(2), 264-267.
31- Tanweer A.J., Chand N., Khan S., Sultan S., Qureshi M.S., Akhtar A. Inam M. (2013). Association of Peganum harmala L. supplementation with lipid profile and its economic benefit in broiler production. Pak Vet J., 33(3): 313-316.
32- Tanweer A.J., Chand N., Khan S., Qureshi M.S., Sadique U., Rehman A.U., Sultan A., Arshad M., Akhtar A., Jan S. (2014a). Association of peganum harmala l. Supplementation with immunity against ND, IB and IBD in broiler chicks. Pak J of Sci., 66(1): 88-94.
33- Tanweer A.J., Chand N., Saddique U., Bailey C.A., Khan R.U. (2014b). Antiparasitic effect of wild rue (Peganum harmala L.) against experimentally induced coccidiosis in broiler chicks. Parasitol. Res., 113: 2951-2960.
34- Thayer S.G., Beard C.W. (1998). Serologic proce- dures. In: Swayne, D.E., Ed., A Laboratory Manual for the Isolation and Identification of Avian Pathogens. 4th Edition, American Association of Avian Pathologists, Phi- ladelphia, pp. 256-258.
