Evaluation of biosorption ability of Aspergillus niger’s modified cells to remove copper from industrial wastewater
Subject Areas : Environmental issues related to water systemsMahin Moradi 1 , Soroor Sadeghi 2 , Sara Sharifi 3
1 - Department of Chemical Engineering, Engineering Faculty, Kermanshah Branch, Islamic Azad University, Kermanshah, Iran.
2 - Department of Chemistry, Basic Sciences Faculty, Kermanshah Branch, Islamic Azad University, Kermanshah, Iran.
3 - Department of Biology, Basic Sciences Faculty, Kermanshah Branch, Islamic Azad University, Kermanshah, Iran.
Keywords: Biosorption, Chemical cell modification, Copper, Industrial wastewater treatment, Aspergillus niger, Metal plating industry ,
Abstract :
The removal of heavy metal pollution existing in industrial wastewater is one of the major challenges in preserving water resources. Copper is one of the metals that is present in the effluent of many industries, especially metal plating industries with high concentrations, and the absorption of this metal by renewable and available bio-sorbents has received much attention. The present study was conducted to investigate the biosorption ability of Aspergillus niger fungus cells in removing copper ions from industrial wastewater and determining the parameters affecting it. Aspergillus niger fungus cells were pre-treated with sodium hydroxide before the biosorption process to reach the maximum biological absorption capacity. A certain weight of dry biomass was placed in contact with 25 ml of copper solution at 25°C, and after a specific contact time, the biomass was filtered by centrifugation, and copper concentration was measured using the spectroscopy method at a wavelength of 324 nm. According to the results, the best efficiency of active biosorption in optimal conditions using 0.1 g of active fungus cells was 81.15% at a pH of 7 in a copper metal solution with a concentration of 200 mg.L-1, after 5 minutes of contact time at 25°C. Optimum conditions were applied to real wastewater samples from the electroplating industry and after 60 minutes of contact time, the removal efficiency was 99.94%. The biological absorption process follows the Langmuir isotherm model and kinetic studies showed that the biological absorption processes follow the pseudo-second-order kinetic equation, which shows the involvement of the chemical absorption process in determining the rate of copper biosorption by Aspergillus niger fungus cells. Also, bio-sorbent regeneration and copper recycling have been investigated. This study showed that Aspergillus niger can be used as a renewable, effective, low-cost, and environmentally friendly bio-sorbent for the removal and recovery of copper from metal plating industry wastewater.
Abdullahi, M., & Ibrahim, A.D. (2018). Bioaccumulation of lead (Pb), chromium (Cr) and cadmium (Cd) by Aspergillus flavus and Fusarium oxysporum isolated from tannery wastewater. J. Environ. Toxicol. Public Heal, 3, 18-24. https://doi.org/10.5281/ZENODO.1317538
Bertram, M., Graedel, T. E., Rechberger, H., & Spatari, S. (2002). The contemporary European copper cycle: waste management subsystem. Ecological Economics, 42(1-2), 43-57. https://doi.org/10.1016/S0921-8009(02)00100-3
Cárdenas González, J. F., Rodríguez Pérez, A. S., Vargas Morales, J. M., Martínez Juárez, V. M., Rodríguez, I. A., Cuello, C. M., ... & Muñoz Morales, A. (2019). Bioremoval of cobalt (II) from aqueous solution by three different and resistant fungal biomasses. Bioinorganic Chemistry and Applications, 2019(1), 8757149. https://doi.org/10.1155/2019/8757149
Fu, F., & Wang, Q. (2011). Removal of heavy metal ions from wastewaters: a review. Journal of Environmental Management, 92(3), 407-418. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2010.11.011
Harboul, K., Alouiz, I., Hammani, K., & El-Karkouri, A. (2022). Isotherm and kinetics modeling of biosorption and bioreduction of the Cr (VI) by Brachybacterium paraconglomeratum ER41. Extremophiles, 26(3), 30. https://doi.org/10.1007/s00792-022-01278-9
Ho, Y. S., & McKay, G. (1999). Pseudo-second order model for sorption processes. Process Biochemistry, 34(5), 451-465. https://doi.org/10.1016/S0032-9592(98)00112-5
Hu, J., Song, Z., Chen, L., Yang, H., Li, J., & Richards, R. (2010). Adsorption properties of MgO (111) nanoplates for the dye pollutants from wastewater. Journal of Chemical & Engineering Data, 55(9), 3742-3748. https://doi.org/10.1021/je100274e
Ismail, B. S., Farihah, K., & Khairiah, J. (2005). Bioaccumulation of heavy metals in vegetables from selected agricultural areas. Bulletin of Environmental Contamination & Toxicology, 74(2), 320-327. https://doi.org/10.1007/s00128-004-0587-6
Kapoor, A., & Viraraghavan, T. (1997). Heavy metal biosorption sites in Aspergillus niger. Bioresource Technology, 61(3), 221-227. https://doi.org/10.1016/S0960-8524(97)00055-2
Kapoor, A., & Viraraghavan, T. (1998). Biosorption of heavy metals on Aspergillus niger: effect of pretreatment. Bioresource Technology, 63(2), 109-113. https://doi.org/10.1016/S0960-8524(97)00118-1
Kapoor, A., Viraraghavan, T., & Cullimore, D. R. (1999). Removal of heavy metals using the fungus Aspergillus niger. Bioresource Technology, 70(1), 95-104. https://doi.org/10.1016/S0960-8524(98)00192-8
Lawrence, K., Wang, J.T., Stephen, T.T, & Yung-Tse, H. (2010). Handbook of environmental engineering, environmental bioengineering, Springer, New York Dordrecht Heidelberg London.
Malamis, S., Katsou, E., & Haralambous, K. J. (2011). Study of Ni (II), Cu (II), Pb (II), and Zn (II) removal using sludge and minerals followed by MF/UF. Water, Air, & Soil Pollution, 218, 81-92. https://doi.org/10.1007/s11270-010-0625-4
Mukhopadhyay, M., Noronha, S.B., & Suraishkumar, G.K. (2007). Kinetic modeling for the biosorption of copper by pretreated Aspergillus niger biomass. Bioresource Technology, 98(9), 1781-1787. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2006.06.025
Mukhopadhyay, M., Noronha, S. B., & Suraishkumar, G. K. (2008). Copper biosorption in a column of pretreated Aspergillus niger biomass. Chemical Engineering Journal, 144(3), 386-390. https://doi.org/10.1016/j.cej.2008.02.007
Noormohamadi, H. R., Fat’hi, M. R., Ghaedi, M., & Ghezelbash, G. R. (2019). Potentiality of white-rot fungi in biosorption of nickel and cadmium: modeling optimization and kinetics study. Chemosphere 216, 124–130. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2018.10.113
Papandreou, A., Stournaras, C. J., & Panias, D. (2007). Copper and cadmium adsorption on pellets made from fired coal fly ash. Journal of Hazardous Materials, 148(3), 538-547. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2007.03.020
Rafiq, Z., Nazir, R., Shah, M. R., & Ali, S. (2014). Utilization of magnesium and zinc oxide nano-adsorbents as potential materials for treatment of copper electroplating industry wastewater. Journal of Environmental Chemical Engineering, 2(1), 642-651. https://doi.org/10.1016/j.jece.2013.11.004
Rengaraj, S., Kim, Y., Joo, C. K., Choi, K., & Yi, J. (2004). Batch adsorptive removal of copper ions in aqueous solutions by ion exchange resins: 1200H and IRN97H. Korean Journal of Chemical Engineering, 21, 187-194. https://doi.org/10.1007/BF02705397
Roșca, M., Silva, B., Tavares, T., & Gavrilescu, M. (2023). Biosorption of hexavalent chromium by Bacillus megaterium and Rhodotorula sp. Inactivated Biomass. Processes, 11(1), 179. https://doi.org/10.3390/pr11010179
Shah, S. S., Palmieri, M. C., Sponchiado, S. R. P., & Bevilaqua, D. (2020). Enhanced bio-recovery of aluminum from low-grade bauxite using adapted fungal strains. Brazilian Journal of Microbiology, 51, 1909-1918. https://doi.org/10.1007/s42770-020-00342-w
Tsekova, K., Todorova, D., Dencheva, V., & Ganeva, S. (2010). Biosorption of copper (II) and cadmium (II) from aqueous solutions by free and immobilized biomass of Aspergillus niger. Bioresource Technology, 101(6), 1727-1731. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2009.10.012
Virolainen, S., Holopainen, O., Maliarik, M., & Sainio, T. (2019). Ion exchange purification of a silver nitrate electrolyte. Minerals Engineering, 132, 175-182. https://doi.org/10.1016/j.mineng.2018.12.020
Wang, J. Y., Cui, H., Cui, C. W., & Xing, D. F. (2016). Biosorption of copper (II) from aqueous solutions by Aspergillus niger-treated rice straw. Ecological Engineering, 95, 793-799. https://doi.org/10.1016/j.ecoleng.2016.07.019
Wang, J. Y., & Cui, C. W. (2017). Characterization of the biosorption properties of dormant spores of Aspergillus niger: a potential breakthrough agent for removing Cu 2+ from contaminated water. RSC advances, 7(23), 14069-14077. https://doi.org/10.1039/c6ra28694a
Zhen, Y., Wang, M., Gu, Y., Yu, X., Shahzad, K., Xu, J., ... & Loor, J. J. (2021). Biosorption of copper in swine manure using Aspergillus and yeast: characterization and its microbial diversity study. Frontiers in Microbiology, 12, 687533. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.687533
Technical Strategies in Water Systems https://sanad.iau.ir/journal/tsws ISSN (Online): 2981-1449 Spring 2024: Vol 2, Issue 1, 36-48 |
|
Research Article |
|
|
Evaluation of biosorption ability of Aspergillus niger’s modified cells to
remove copper from industrial wastewater
Mahin Moradi 1, Soroor Sadeghi 2*, Sara Sharifi 3
1 Department of Chemical Engineering, Engineering Faculty, Kermanshah Branch, Islamic Azad University, Kermanshah, Iran.
2 Department of Chemistry, Basic Sciences Faculty, Kermanshah Branch, Islamic Azad University, Kermanshah, Iran.
3 Department of Biology, Basic Sciences Faculty, Kermanshah Branch, Islamic Azad University, Kermanshah, Iran.
Corresponding Author: soroor.sadeghi@iau.ac.ir
© The Author)s( 2024
Received: 01 Feb 2024 | Accepted: 11 Jun 2024 | Published: 14 Jul 2024 |
Abstract
The removal of heavy metal pollution existing in industrial wastewater is one of the major challenges in preserving water resources. Copper is one of the metals that is present in the effluent of many industries, especially metal plating industries with high concentrations, and the absorption of this metal by renewable and available bio-sorbents has received much attention. The present study was conducted to investigate the biosorption ability of Aspergillus niger fungus cells in removing copper ions from industrial wastewater and determining the parameters affecting it. Aspergillus niger fungus cells were pre-treated with sodium hydroxide before the biosorption process to reach the maximum biological absorption capacity. A certain weight of dry biomass was placed in contact with 25 ml of copper solution at 25°C, and after a specific contact time, the biomass was filtered by centrifugation, and copper concentration was measured using the spectroscopy method at a wavelength of 324 nm. According to the results, the best efficiency of active biosorption in optimal conditions using 0.1 g of active fungus cells was 81.15% at a pH of 7 in a copper metal solution with a concentration of 200 mg.L-1, after 5 minutes of contact time at 25°C. Optimum conditions were applied to real wastewater samples from the electroplating industry and after 60 minutes of contact time, the removal efficiency was 99.94%. The biological absorption process follows the Langmuir isotherm model and kinetic studies showed that the biological absorption processes follow the pseudo-second-order kinetic equation, which shows the involvement of the chemical absorption process in determining the rate of copper biosorption by Aspergillus niger fungus cells. Also, bio-sorbent regeneration and copper recycling have been investigated. This study showed that Aspergillus niger can be used as a renewable, effective, low-cost, and environmentally friendly bio-sorbent for the removal and recovery of copper from metal plating industry wastewater.
Keywords: Biosorption, Chemical cell modification, Copper, Industrial wastewater treatment, Aspergillus niger, Metal plating industry
مقاله پژوهشی |
|
|
ارزیابی توانایی جذب زیستی سلولهای اصلاح شده قارچ آسپرژیلوس نایجرجهت حذف مس از پسابهای صنعتی
مهین مرادی 1، سرور صادقی2*، سارا شریفی3
1. گروه مهندسی شیمی، دانشکده فنی و مهندسی، واحد کرمانشاه، دانشگاه آزاد اسلامی، کرمانشاه، ایران.
2. گروه شیمی، دانشکده علوم پایه، واحد کرمانشاه، دانشگاه آزاد اسلامی، کرمانشاه، ایران.
3. گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، واحد کرمانشاه، دانشگاه آزاد اسلامی، کرمانشاه، ایران.
نویسنده مسئول: soroor.sadeghi@iau.ac.ir
© The Author)s( 2024
چاپ: 24/04/1403 | پذیرش: 22/03/1403 | دریافت: 12/11/1402 |
چکیده
حذف آلودگی فلزات سنگین موجود در پسابهای صنعتی از عمدهترین چالشهای حفظ منابع آبی است. مس از جمله فلزاتی است که در پساب بسیاری از صنایع بخصوص صنایع آبکاری فلزات با غلظت بالا وجود دارد و جذب این فلز توسط جاذبهای زیستی تجدیدپذیر و در دسترس بسیار مورد توجه قرار گرفته است. مطالعه حاضر با هدف بررسی توانایی جذب زیستی سلولهای قارچ آسپرژیلوس نایجرAspergillus niger در حذف یون مس از پسابهای صنعتی و تعیین پارامترهای موثر بر آن انجام شده است. سلولهای قارچ آسپرژیلوس نایجر قبل از فرایند جذب به کمک هیدروکسید سدیم پیش تصفیه شده تا به حداکثر ظرفیت جذب بیولوژیکی نزدیک شدند. وزن معینی از زیست توده خشک در مجاورت 25 میلیلیتر محلول مس در دمای 25 درجه سانتیگراد قرار گرفته و پس از طی زمان تماس مشخص، زیست توده با سانتریفیوژ فیلتر شده و اندازهگیری غلظت مس به کمک روش طیف سنجی در طول موج 324 نانومتر انجام شد. با توجه به نتایج، بهترین راندمان جذب زیستی فعال در شرایط بهینه با استفاده از 1/0 گرم سلولهای فعال قارچ 15/81 درصد بوده که در pH برابر با 7 در محلول فلز مس با غلظت 200 میلیگرم در لیتر، پس از 5 دقیقه زمان تماس در دمای 25 درجه سانتیگراد به دست آمد. شرایط بهینه برای نمونههای پساب حقیقی صنعت آبکاری اعمال شد و پس از 60 دقیقه زمان تماس، راندمان حذف 94/99 درصد نتیجه شد. فرآیند جذب زیستی مطابق با مدل ایزوترم لانگمویر بوده و مطالعات سینتیکی نشان داد که فرآیندهای جذب زیستی از معادله سینتیک شبه مرتبه دوم پیروی میکند که دخالت فرآیند جذب شیمیایی در تعیین سرعت جذب زیستی مس بوسیله سلولهای قارچ آسپرژیلوس نایجر را نشان میدهد. همچنین بازسازی جاذب زیستی و بازیافت مس مورد بررسی قرار گرفته است. این مطالعه نشان داد که آسپرژیلوس نایجر میتواند به عنوان یک جاذب زیستی تجدیدپذیر، موثر، کمهزینه و سازگار با محیط زیست برای حذف و بازیابی مس از پسابهای صنعت آبکاری فلزات استفاده شود.
واژههای کلیدی: جذب زیستی، اصلاح شیمیایی سلول، مس، تصفیه پساب صنعتی، آسپرژیلوس نایجر، صنایع آبکاری فلزات
1- مقدمه
پسابهای شیمیایی حاوی فلزات سنگین یکی از خطرناکترین منابع اصلی آلودگی محیط زیست بشمار میآیند، زیرا یونهای فلزی تجزیهناپذیر و پایدار هستند. جهت حذف آلایندههای فلزی از پساب صنایع مختلف روشهایی شامل رسوب دهی، انعقاد، استخراج با حلال، فیلتراسیون غشایی، اسمز معکوس و تبادل یونی استفاده میشود .(Rafiq et al., 2014) با این حال، این فناوریهای مرسوم به دلیل استفاده از مواد غیر قابل احیا، هزینه بالا، نیاز به معرف و انرژی بالا و تولید لجن سمی گران هستند یا در حذف کامل فلزات دارای معایب خاصی هستند. مس در آبکاری فلزات، صنایع معدنی، برق و الکترونیک، تولید آهن و فولاد، صنعت فلزات غیرآهنی، صنایع چاپ و صنایع عکاسی، فرآیندهای فلزکاری کاربرد دارد. با افزایش مصرف مس در فرایندهای صنعتی، میزان پسماند و پسابهای حاوی مس که موجب آلودگی آبهای طبیعی و خاکهای کشاورزی میشود افزایش یافته است.(Bertram et al., 2002; Wang et al., 2016; Wang & Cui, 2017) اثرات سمی و سرطان زایی مس به خوبی ثابت شده است و این اثرات در نتیجه ماهیت توان تجمعی مس و سایر فلزات در سلولهای گیاهی و جانوری موجب آلودگی زنجیره غذایی میشود .(Malamis et al., 2011) اثرات ورود مس به زنجیزه غذایی انسان منجر به مسمومیتهای عصبی، سرگیجه، اسهال و آسیب کبدی، آسیب تنفسی و غیره میشود (Ismail et al., 2005; Malamis et al., 2011; Papandreou et al., 2007).
روشهای شیمیایی و الکتروشیمیایی بسیاری مانند ترسیب شیمیایی، تبادل یونی، انعقاد الکتریکی، شناورسازی و جذب سطحی برای تصفیه مس از پسابهای مرتبط با صنایع شیمیایی مختلف استفاده شدهاند که برخی کارآمدتر و سادهتر از سایر روشها هستند(Abdullahi & Ibrahim, 2018; Fu & Wang, 2011; Rengaraj et al., 2004; Virolainen et al., 2019) . در بین تمامی این روشها، جذب زیستی یکی از اجزای اصلی فناوری زیست محیطی و منابع زیستی است. استفاده از میکروارگانیسمها به عنوان جاذب زیستی برای حذف فلزات سنگین به دلیل نسبت سطح به حجم بالا مورد توجه فزایندهای قرار گرفته است. در دسترس بودن زیاد، سینتیک سریع جذب، دفع و هزینه کم از مزایای این روشها است. جذب زیستی عبارت است از حذف مواد توسط زیست توده غیرفعال به دلیل فعل و انفعالات فیزیکوشیمیایی بین یونهای فلزی و ترکیبات سلولی گونههای بیولوژیکی و شامل مکانیسمهای مختلفی مانند جذب، جذب سطحی، تبادل یونی، کمپلکس شدن، تشکبل لیگاند، رسوبدهی و گیر افتادن در داخل سلول میباشند .(Lawrence et al., 2010; Roșca et al., 2023) مزایای بالقوه فرآیند جذب زیستی شامل استفاده از مواد زیستی تجدیدپذیر، تصفیه حجم زیادی از پساب، بازیافت فلزات خاص، نیاز کمتر به معرفهای گران قیمت، عملکرد در طیف وسیعی از شرایط فیزیکوشیمیایی از جمله دما،pH و هزینه عملیاتی کم است. استفاده از سلولهای میکروبی مرده در جذب بیولوژیکی برای تصفیه آب سودمندتر است، زیرا تحت تأثیر مواد زائد سمی قرار نمیگیرند و نیازی به تامین مداوم مواد مغذی ندارند و میتوانند برای بسیاری از چرخهها بازسازی و دوباره استفاده شوند(Roșca et al., 2023).
جذب زیستی مس با استفاده از زیست تودههای Pseudomonas sp.، Bacillus sp. و Staphylococcus sp. بررسی شده است .(Mukhopadhyay et al., 2007; Mukhopadhyay et al., 2008) زیست تودههای قارچی توسط بسیاری از محققین برای جذب بیولوژیکی یون مس انتخاب شدند. از آنجایی که سطح دیواره سلولی قارچ حاوی گروههای عاملی بسیاری از کربوکسیل، هیدروکسیل، سولفیدریل، گروههای آمینه و گروه فسفات لیپیدها، پروتئینها و پلی ساکاریدها است که توانایی اتصال یونهای فلزی را دارند. قارچهای رشتهای مانند آسپرژیلوس با قطر هیفهای قارچی بین 2 تا 10 میکرومتر یکی از مقرونبهصرفهترین جاذبهای زیستی هستند .(Shah et al., 2020) همچنین زیست تودههای قارچی را میتوان به راحتی با استفاده از محیطهای رشد ارزان تولید کرد. علاوه بر این، زیست تودههای قارچی با عملکرد قابل توجه زیست توده به راحتی در مقیاس عظیم رشد میکنند و در مقایسه با سایر میکروارگانیسمها مانند باکتریها دارای مزایای فراوانی هستن .(Cárdenas González et al., 2019; Shah et al., 2020)
جذب بیولوژیکی فلزات توسط Aspergillus Niger به دلیل پتانسیل بالای سلولهای آن برای حذف یونهای فلزی و همچنین به دلیل سهولت و در دسترس بودن این میکروارگانیزم از فرآیندهای تخمیر صنعتی مختلف بسیار مورد توجه قرار گرفته است (Kapoor & Viraraghavan, 1997; Kapoor & Viraraghavan, 1998; Kapoor et al., 1999; Tsekova et al., 2010; Zhen et al., 2021). گروههای عاملی مختلف در دیواره سلولی آسپرژیلوس مسئول جذب زیستی یونهای فلزی هستند و پیش تصفیه سلولی ظرفیت جذب زیستی زیست توده را برای همه فلزات افزایش میدهد، اما میزان افزایش به نوع و روش پیش تصفیه بستگی دارد .(Mukhopadhyay et al., 2007; Mukhopadhyay et al., 2008) مشخص شده است که پیش تیمار با مواد شیمیایی قلیایی مانند هیدروکسید سدیم، ظرفیت جذب زیستی را در مقایسه با زیست توده زنده بهبود میبخشد، اما از دست دادن زیست توده پس از پیش تصفیه باید هنگام ارزیابی عملکرد جذب زیستی در نظر گرفته شود. سلولهای آسپرژیلوس به صورت پلتهایی با محدوده سطح پایینتر رشد میکنند و به صورت توده معلق رشد نمیکنند، بنابراین کاهش ظرفیت جذب زیستی در این مورد با پیش تصفیه قلیایی قابل جبران است .(Harboul et al., 2022)
هدف اصلی این مطالعه بررسی امکان سنجی یک مدل سینتیکی برای جذب زیستی مس توسط زیست توده Aspergillus Niger پیش تصفیه شده با مواد قلیایی در شرایط عملیاتی مختلف مانند غلظت اولیه زیست توده، غلظت اولیه یون فلز و زمان تماس است. همچنین امکان احیای جاذب زیستی و بازیابی مس مورد بررسی قرار گرفته است.
2- مواد و روشها
2-1- مواد شیمیایی موردنیاز
سولفات مس (CuSO4)، کلرید هیدروژن، هیدروکسید سدیم و فسفات پتاسیم (Merck).
2-2- روش کار
2-2-1- آماده سازی سلولهای آسپرژیلوس نایجر و اصلاح سطح سلول
در این مطالعه آسپرژیلوس نایجر (5012) از PTCC (Persian type culture collection) تهیه شد که به صورت خشک انجمادی عرضه شد. محیط کشت دکستروز آگار سیب زمینی تهیه شده از 300 گرم سیب زمینی، 20 گرم گلوکز، 15 گرم آگار در 1000 میلی لیتر آب دیونیزه و در pHبرابر با 7 استفاده شد. محیط کشت با اتوکلاو در دمای 121 درجه سانتیگراد به مدت 15 دقیقه استریل شد. برای اهداف آزمایشی، سویه قارچ در فاز مایع با استفاده از دستگاه انکوباتور کشت شدند. برای کشت سویه، اسپورهای A. Niger به ارلنهای 250 میلیلیتری پر شده با 100 میلیلیتر محیط کشت منتقل شدند و در دمای 25 درجه سانتیگراد با تکان دادن 200 دور در دقیقه به مدت 96 ساعت (IKA KS130) انکوبه شدند. در طول دوره کشت، مقدار کمی از کشت برای اندازهگیری رشد سلولی با روش کدورتسنجی در طول موج 600 نانومتر جمعآوری شد، با برداشت سلولها در فاز لگاریتمی میانی (OD600nm=1) با سانتریفیوژ در 4000 گرم به مدت 30 دقیقه (Froilabo SW14) و دو بار شستشو با بافر فسفات پتاسیم 1/0مولار و pH برابر با 7 آماده شدند. پس از شستشو، زیست توده در دمای 60 درجه سانتیگراد به مدت 16 ساعت خشک و پودر شد تا در آزمایشات جذب بیولوژیکی استفاده شود. گروههای عملکردی سطحی در A.niger توسط FTIR بررسی شدهاند. برای تهیه زیست توده A.niger پیش تصفیه شده با موادقلیایی، سلولهای قارچ پس از 3 روز رشد با فیلتر کردن محیط رشد برداشت و با مقادیر زیادی آب دیونیزه شسته شدند. زیست توده زنده (50 گرم جرم مرطوب) سپس با هیدروکسید سدیم 5/0 مولار در 100 درجه سانتیگراد به مدت 15 دقیقه پیش تصفیه شدند. زیست توده پس از پیش تصفیه با مقادیر زیادی آب یونیزه شسته شد تا pH در محدوده خنثی 8/6 تا 2/7 قرار گیرد و سپس در دمای 60 درجه سانتیگراد به مدت 24 ساعت در آون خشک شد (Harboul et al., 2022). فرآیند جذب زیستی پیچیده و شامل جذب مس به گروههای فعال مانند هیدروکسیل (–OH)، کربوکسیل (–COOH)، آمینو (–NH2) و سولفیدریل (–SH) روی دیوارههای سلولی قارچ و غشاها است(Noormohamadi et al., 2019).
2-2-2- جذب مس توسط توده زیستی سلولهای آسپرژیلوس نایجر پیش تصفیه شده
برای بررسی قابلیت جذب بیولوژیکی مس توسط جاذب زیستی، آزمایشها با قرار دادن وزن معینی از زیست توده خشک در 25 میلیلیتر محلول مس تهیه شده از سولفات مس (CuSO4) با pH برابر با 7 در دمای 25 درجه سانتیگراد انجام شد. در یک زمان تماس مشخص، زیست توده با سانتریفیوژ جدا و فیلتر شد و محلول حاصل جهت تعیین غلظت مس آنالیز شد. اثرات غلظت اولیه فلز، زمان تماس و دوز جاذب زیستی بر فرآیند جذب زیستی بررسی شده است. غلظت مس فیلترشده با استفاده از طیفسنج جذب اتمی شعله Perkin Elmer (FAAS) مجهز به شعله استیلن-هوا آنالیز شد. برای اندازهگیری غلظت یون مس طول موج 324 نانومتر استفاده شد. مقدار جذب یون مس با رابطه (1) محاسبه شد:
(1)
که m جرم جاذب بر حسب گرم است، V حجم محلولهای یون فلز بر حسب L و C0 و Ce به ترتیب غلظت اولیه و تعادلی بر حسب میلیگرم در لیتر هستند. منحنی استاندارد با استفاده از محلولهای استاندارد مس ترسیم شد.
3- نتایج و بحث
3-1- شناسایی مورفولوژی و گروههای عاملی سطح جاذب زیستی
گروههای عاملی سطحی سلولهای A. niger با استفاده از طیفسنجی FTIR تایید شدند. شکل(1) طیف FTIR سلولهای قارچ را نشان میدهد، همانطور که انتظار میرود نوار cm-1 8/3393 را میتوان به حالت کشش OH و NH از آمید II و پروتئینها نسبت داد. نوار cm-1 8/2926 را میتوان به حالت کشش C-H نسبت داد. باندهای cm-1 47/1742 و cm-1 53/1647 را میتوان به حالت کشش C=O در گروههای کربوکسیلات غیریونیزه و کونژوگه با NH از آمید I نسبت داد. حالت خمشی برای NH در آمید II در cm-1 16/1551 ظاهر میشود. نوار cm-1 51/1420 را میتوان به حالت خمشی نامتقارن CH3 از گروههای استیل اختصاص داد و ظهور پیک cm-1 13/1370 به دلیل حالت خمشی C-OH از پروتئینها است. نوار در cm-1 68/1238 را میتوان به حالت کشش گروههای فسفات نسبت داد. نوارهای 1149 و cm-1 31/1039 را میتوان به حالت کشش گروههای CN در کیتینها (پلی ساکاریدها) و پروتئینها نسبت داد.
شکل 1- طیف FTIR سلولهای آسپرژیلوس نایجر فعال
Fig 1. FTIR spectrum of Aspergillus niger’s active cells
3-2- مطالعات جذب مس توسط جاذب زیستی
مطالعات جذب مس بوسیله بیوجاذب در شرایط مختلف بررسی شد. به منظور ارزیابی اثر غلظت اولیه مس، آزمایشهایی در غلظتهای اولیه متفاوت از 50 تا 200 میلیگرم در لیتر انجام شد. از جدول (1)، مشخص است که مقدار فلز جذب شده در هر گرم جاذب زیستی (qt) با افزایش غلظت فلز افزایش مییابد.
جدول 1- اثر غلظت اولیه مس بر جذب، درزمان تماس 5 دقیقه، مقدار جاذب زیستی 1/0 گرم، دما 25 درجه سانتیگراد، pH=7
Table 1. The effect of initial copper concentration on biosorption, at contact time=5 min, biosorbent dosage=0.1 g, T=25 ºC, pH=7
غلظت اولیه (mg.L-1) | دوز جاذب (g) | غلظت باقیمانده (mg.L-1) | ظرفیت جذب qe(mg.g-1) | راندمان (%) ± RSD |
50 | 1/0 | 16/35 | 71/3 | 68/29±32/0 |
100 | 1/0 | 55/48 | 86/12 | 45/51±51/0 |
150 | 1/0 | 13/51 | 71/24 | 91/65±1/0 |
200 | 1/0 | 00/36 | 00/41 | 00/82±69/0 |
دوز جاذب زیستی پارامتر مهمی است که بر جذب زیستی یونهای فلزی تأثیر میگذارد. مقادیر مختلفی از جاذبهای زیستی (1/0 تا 5/0 گرم) در حجم یکسانی از محلول یون فلزی در pH، زمان تماس و دمای ثابت در نظرگرفته شدند تا دوز بهینه بیوجاذب به دست آید (جدول 2).
جدول 2- اثر میزان جاذب زیستی بر جذب زیستی مس، غلظت اولیه فلز 200(mg.L-1)، زمان تماس 5 دقیقه، دما 25 درجه سانتیگراد و pH=7
Table 2. The effect of bio-sorbent dosage on biosorption, at initial copper concentration=200 (mg.L-1), contact time=5 min, T=25º C, pH=7
دوز جاذب (g) | غلظت اولیه (mg.L-1) | غلظت باقیمانده (mg.L-1) | ظرفیت جذب qt (mg.g-1) | راندمان (%)± RSD |
1/0 | 200 | 00/36 | 41 | 00/82±69/0 |
2/0 | 200 | 42/36 | 447/20 | 79/81±95/0 |
3/0 | 200 | 74/36 | 605/13 | 63/81±24/0 |
4/0 | 200 | 95/36 | 19/10 | 52/81±18/0 |
5/0 | 200 | 69/37 | 115/8 | 15/81±22/0 |
جذب بیولوژیکی Cu (II) با افزایش دوز جاذب زیستی به دلیل افزایش تعداد محل جذب افزایش مییابد، اما مقدار qe با افزایش دوز جاذب کاهش مییابد. هنگامی که دوز جاذب زیستی افزایش مییابد، جذب زیستی بسیار سریع بر روی سطح جاذب انجام میشود که منجر به غلظت کمتر جاذب زیستی در محلول میشود. هنگامی که غلظت جاذب زیستی در محلول کمتر باشد، مکانهای جذب غیراشباع باقی میمانند، بنابراین با افزایش دوز جاذب زیستی، مقدار مس جذب شده در واحد وزن کاهش مییابد .(Hu et al., 2010)
برای مطالعه ایزوترمهای جذب زیستی، مدلهای ایزوترم فروندلیچ و لانگمویر به طور گسترده مورد استفاده قرار میگیرند تا نتایج بهدست آمده برای شبیهسازی و درک مکانیسم جذب زیستی انجام شود. ایزوترم لانگمویر پوشش تک لایهای از یونهای فلزی روی جاذب زیستی با تعداد محدود مکانهای جذب انرژیهای یکنواخت بدون انتقال یونهای مس به صفحه سطح زیست جاذب را فرض میکند. شکل خطی ایزوترم لانگمویر (معادله2) به صورت زیر است:
(2) |
|
(3) |
|
دوز جاذب (g) | غلظت باقیمانده (mg.L-1) | ظرفیت جذب qe (mg.g-1) | log qe | log Ce | 1/qe (g.mg-1) | 1/Ce (L.mg-1) | ||||||
1/0 | 00/36 | 41 | 61/1 | 557/1 | 024/0 | 0277/0 | ||||||
2/0 | 42/36 | 447/20 | 31/1 | 561/1 | 049/0 | 0274/0 | ||||||
3/0 | 74/36 | 605/13 | 13/1 | 565/1 | 073/0 | 0272/0 | ||||||
4/0 | 95/36 | 19/10 | 00/1 | 567/1 | 098/0 | 0270/0 | ||||||
5/0 | 69/37 | 115/8 | 90/0 | 576/1 | 123/0 | 0265/0 |
شکل (2) ایزوترمهای جذب زیستی ساخته شده با توجه به مدلهای لانگمویر و فروندلیچ با مقادیر جذب اندازهگیری شده برای جذب زیستی یونهای مس و همچنین ضریب همبستگی R2 برای منحنیهای تنظیم شده را نشان میدهد. دادهها با توجه به ضریب همبستگی بهتر (967/0=R2) به خوبی در مدل ایزوترم لانگمویر قرار گرفتند.
شکل 2- (a) مدل ایزوترم لانگمویر و (b) مدل ایزوترم فروندلیچ برای جذب مس توسط جاذب زیستی
Fig 2. (a) Langmuir isotherm model, and (b) Freundlich isotherm model for biosorption of copper by bio-sorbent
تغییر در جذب زیستی یونهای مس به عنوان تابعی از زمان تماس در دمای اتاق مورد مطالعه قرار گرفت. برای این منظور 1/0 گرم از جاذب زیستی درتماس با 25 میلیلیتر محلول یون مس برای زمان های مختلف تماس (5 تا 60 دقیقه) به منظور دستیابی به تعادل و رسیدن به زمان تماس بهینه قرار گرفت. جدول (4) روند جذب بیولوژیک مس (II) روی جاذب زیستی را برای زمانهای تماس مختلف نشان میدهد و مشاهده شد که تعادل در 60 دقیقه به دست آمد اما جذب اولیه سریع بود. مقدار qe برابر mg.g-1 115/8 در 5 دقیقه اول مشاهده شد که به آرامی به 418/8 میلیگرم به ازاء گرم جاذب زیستی افزایش یافت.
جدول 4- اثر زمان تماس بر جذب زیستی مس توسط جاذب زیستی. 5/0 گرم جاذب زیستی درغلظت اولیه مس برابر با 200 (mg.L-1)، دما 25 درجه سانتیگراد و pH=7.
Table 4. Effect of initial concentration on copper biosorption by 0.5 g of bio-sorbent at an initial copper concentration of 200 (mg.L-1), T= 20 ºC, and pH=7.
زمان تماس (min) | غلظت اولیه (mg.L-1) | غلظت باقیمانده (mg.L-1) | ظرفیت جذب qt (mg.g-1) | راندمان (%) ± RSD |
5 | 200 | 69/37 | 115/8 | 15/81±22/0 |
15 | 200 | 96/36 | 152/8 | 52/81±38/0 |
30 | 200 | 79/34 | 260/8 | 61/82±16/0 |
45 | 200 | 95/31 | 402/8 | 03/84±12/0 |
60 | 200 | 63/31 | 418/8 | 19/84±13/0 |
این روند را میتوان به جذب سریع یونها در سطح وسیعی ازسلولهای A.niger نسبت داد که با افزایش زمان تماس اشغال میشود و با نزدیک شدن به تعادل، سرعت حذف فلز آهستهتر میشود. سرعت حذف فلز در ابتدا زیاد است زیرا سطح بزرگتر بیوجاذب برای جذب فلز در دسترس است، اما پس از رسیدن به تعادل، حذف فلز نیز کند میشود زیرا سطح بیوجاذب توسط فلز استفاده میشود. مدلهای جنبشی برای بررسی نتایج بهدستآمده از نظر مرتبه و ثابت سرعت برای جذب بیولوژیکی مس (II) بر روی سلولهای A.niger استفاده شد. دادههای جنبشی با معادله سرعت شبه مرتبه اول لاگرگرن 1(PFO) به صورت خطی درمعادله (4) بیان شدند:
(4) |
|
(5) |
|
زمان تماس (min) | غلظت باقیمانده (mg.L-1) | ظرفیت جذب (mg.g-1) | t/qt | log (qe-qt) |
5 | 69/37 | 115/8 | 616/0 | -51855/0 |
15 | 96/36 | 152/8 | 840/1 | -57500/0 |
30 | 79/34 | 260/8 | 630/3 | -80100/0 |
45 | 95/31 | 402/8 | 360/5 | -79588/1 |
60 | 63/31 | 418/8 | 130/7 | - |
بررسی دادههای جذب بیولوژیکی یونهای مس توسط A. niger در هر دو مدل نشان داد که با مدل شبه مرتبه دوم به خوبی مطابقت دارد.
در شکل (3)، مقدار qe محاسبه شده از معادله شبه مرتبه اول به طور قابل توجهی با معادله تجربی متفاوت است، این مقدار نشان میدهد که جذب زیستی مس بر سلولهای A.niger از واکنش سرعت PFO پیروی نمیکند و سینتیک شبه مرتبه دوم جذب زیستی مس را توصیف می کند، زیرا ضریب همبستگی بالاتر (9999/0=R2) نشان دهنده رابطه خطی واقعی بین پارامترهای مستقل و وابسته برای معادله است، همچنین مقدار qe که از معادله شبه مرتبه دوم محاسبه میشود، تقریباً به مقدار qe تجربی (467/8) نزدیک بوده است. بنابراین جذب زیستی مس (II) بر سلولهای A.niger از سینتیک شبه مرتبه دوم پیروی کرد و دخالت فرآیند جذب شیمیایی را در تعیین سرعت آن نشان داد، همچنین سینتیکهای شبه مرتبه دوم نشان میدهند که میزان اشغال مکانهای فعال زیست جاذب با مربع تعداد مکانهای فعال اشغال نشده روی سطح جاذب زیستی مرتبط است.
شکل 3- (a) مدل سینتیکی شبه مرتبه اول و (b) مدل سینتیکی شبه مرتبه دوم برای جذب مس توسط بیو جاذب
Fig 3. (a) pseudo-first-order and (b) pseudo-second-order kinetic model for copper biosorption by bio-sorbent
3-3- مطالعات جذب و واجذب در احیای جاذب زیستی و بازیابی مس
پس از بهینهسازی پارامترها، عملیات جذب زیستی و بازیابی مجدد جاذب زیستی مورد بررسی قرار گرفت . نتایج بهدست آمده در جدول (6) نشاندهنده کارایی بالای جاذب زیستی در حذف مس در سه چرخه جذب و واجذب متوالی با استفاده از 5/0 گرم جاذب زیستی، در pH برابر با 7 ، دمای 25 درجه سانتیگراد و مدت زمان تماس 60 دقیقه است. اثر بازیابی بیوجاذب توسط چرخههای جذب و واجذب متعدد بر جذب زیستی مس توسط A. niger نشاندهنده ظرفیت جذب باقیمانده زیستتوده و امکانپذیری بازیابی یونهای مس جذبشده است.
جدول6- بازیابی جاذب زیستی در سه چرخه جذب- واجذبی جذب زیستی مس توسط آسپرژیلوس نایجر
Table 6. Bio-sorbent recovery after three biosorption/desorption cycles of copper by Aspergillus niger
تعداد دفعات جذب واجذب | غلظت اولیه (mg.L-1) | غلظت باقیمانده (mg.L-1) | qe (mg.g-1) | راندمان (%)± RSD |
1 | 200 | 63/31 | 418/8 | 19/84±13/0 |
2 | 200 | 26/32 | 387/8 | 87/83±31/0 |
3 | 200 | 56/32 | 372/8 | 72/83±16/0 |
بررسی غلظت مس واجذب شده نشان میدهد که تا 25 درصد مس را میتوان پس از جذب زیستی بازیابی کرد. زیست توده پیش تصفیه شده در چرخههای سه گانه جذب-واجذب، کاهش راندمان از 84 به 85/78 درصد را نشان داد، اما در بازیافت مس، این سلولها نتایج بهتری در مقایسه با سلولهای فعال نشان دادند و تقریبا تا 48 درصد از یونهای مس با شستشو با اسید هیدروکلریک 1/0 مولار بازیابی شدند.
3-4- مطالعات جذب در نمونه حقیقی پساب صنعتی
پس از بهینهسازی پارامترها، جاذب زیستی برای حذف مس از نمونه پساب صنایع آبکاری فلزات مورد استفاده قرار گرفت، غلظت مس نمونه قبل و بعد از جذب زیستی بررسی شد. نتایج بهدستآمده به اندازه نمونههای شبیهسازی شده مؤثر بود. درصد راندمان حذف بهدست آمده پس از 60 دقیقه زمان تماس 94/99 درصد بود.
4- نتیجهگیری
مطالعه حاضر استفاده از سلولهای فعال و پیش تصفیه شده آسپرژیلوس نایجر به عنوان یک جاذب زیستی موثر برای حذف مس (II) از پسابهای صنایع فلزات را بررسی کرد. سرعت بالا و ظرفیت جذب بالای این جاذب زیستی شرایط لازم جهت امکانسنجی استفاده از این روش در مقیاس صنعتی را فراهم میکند. فرآیند جذب زیستی از سینتیک مرتبه دوم پیروی میکند، که نشان میدهد جذب زیستی یک فرآیند کنترل کننده شیمیایی است. جذب یونهای مس متناسب با ایزوترم جذب لانگمویر است. جاذب زیستی ظرفیت جذب زیستی بالایی را در نمونههای پساب صنعتی حقیقی نشان داد. امکان بازیابی فلز و احیای مجدد جاذب با راندمان مناسب شرایط ایدهآل استفاده از این روش را در صنایع فلزات ایجاد میکند. مقایسه شرایط حاضر با نتایج تحقیقات گذشته مشخص کننده این نکته است که در بیشتر روشهای معمول استفاده ازسلول بدون اصلاح ساختار سطحی آن و بهینهسازی گروههای عاملی موجود بر سطح فعال آن انجام شده که منجر به افزایش میزان جذب لازم و همچنین افزایش زمان مجاورت گردیده است. مزیت استفاده از روش حاضر در بکارگیری سلولهای قارچ اصلاح شده با مواد قلیایی رسیدن به راندمان بالا با سرعت زیاد است، چنانچه در 5 دقیقه اول مجاورت محلول فلزی و سلولهای اصلاح شده، راندمان بالایی در حدود 81 درصد بدست آمد که با شیب آهستهای رو به افزایش بود. در فرایند جذب فلزات از پسابهای صنعتی اولین فاکتور در دسترس بودن جاذب، ارزان قیمت و تجدید پذیربودن آن و دومین فاکتور جذب اولیه سریع در زمانهای مجاورت کوتاه مدت است که جاذب زیستی حاضر هر دو شرط اولیه را با بهترین راندمان مهیا ساخت. این روش با فرآیند جذب آسان و ظرفیت جذب زیستی بالا، یک روش جداسازی ساده و سازگار با محیط زیست برای حذف آلایندههای فلزی از سیستمهای آبی، پساب صنایع آبکاری و سایر صنایع فلزی مبتنی بر استفاده از فلزات سنگین را ارائه میکند.
5. تضاد منافع نویسندگان
نویسندگان این مقاله اعلام میدارند که هیچ تضاد منافعی در رابطه با نویسندگی و یا انتشار این مقاله ندارند.
6- منابع
Abdullahi, M., & Ibrahim, A.D. (2018). Bioaccumulation of lead (Pb), chromium (Cr) and cadmium (Cd) by Aspergillus flavus and Fusarium oxysporum isolated from tannery wastewater. J. Environ. Toxicol. Public Heal, 3, 18-24. https://doi.org/10.5281/ZENODO.1317538
Bertram, M., Graedel, T. E., Rechberger, H., & Spatari, S. (2002). The contemporary European copper cycle: waste management subsystem. Ecological Economics, 42(1-2), 43-57. https://doi.org/10.1016/S0921-8009(02)00100-3Cárdenas González, J. F., Rodríguez Pérez, A. S., Vargas Morales, J. M., Martínez Juárez, V. M., Rodríguez, I. A., Cuello, C. M., ... & Muñoz Morales, A. (2019). Bioremoval of cobalt (II) from aqueous solution by three different and resistant fungal biomasses. Bioinorganic Chemistry and Applications, 2019(1), 8757149. https://doi.org/10.1155/2019/8757149
Fu, F., & Wang, Q. (2011). Removal of heavy metal ions from wastewaters: a review. Journal of Environmental Management, 92(3), 407-418. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2010.11.011
Harboul, K., Alouiz, I., Hammani, K., & El-Karkouri, A. (2022). Isotherm and kinetics modeling of biosorption and bioreduction of the Cr (VI) by Brachybacterium paraconglomeratum ER41. Extremophiles, 26(3), 30. https://doi.org/10.1007/s00792-022-01278-9 Ho, Y. S., & McKay, G. (1999). Pseudo-second order model for sorption processes. Process Biochemistry, 34(5), 451-465. https://doi.org/10.1016/S0032-9592(98)00112-5 Hu, J., Song, Z., Chen, L., Yang, H., Li, J., & Richards, R. (2010). Adsorption properties of MgO (111) nanoplates for the dye pollutants from wastewater. Journal of Chemical & Engineering Data, 55(9), 3742-3748. https://doi.org/10.1021/je100274eIsmail, B. S., Farihah, K., & Khairiah, J. (2005). Bioaccumulation of heavy metals in vegetables from selected agricultural areas. Bulletin of Environmental Contamination & Toxicology, 74(2), 320-327. https://doi.org/10.1007/s00128-004-0587-6
Kapoor, A., & Viraraghavan, T. (1997). Heavy metal biosorption sites in Aspergillus niger. Bioresource Technology, 61(3), 221-227. https://doi.org/10.1016/S0960-8524(97)00055-2 Kapoor, A., & Viraraghavan, T. (1998). Biosorption of heavy metals on Aspergillus niger: effect of pretreatment. Bioresource Technology, 63(2), 109-113. https://doi.org/10.1016/S0960-8524(97)00118-1Kapoor, A., Viraraghavan, T., & Cullimore, D. R. (1999). Removal of heavy metals using the fungus Aspergillus niger. Bioresource Technology, 70(1), 95-104. https://doi.org/10.1016/S0960-8524(98)00192-8
Lawrence, K., Wang, J.T., Stephen, T.T, & Yung-Tse, H. (2010). Handbook of environmental engineering, environmental bioengineering, Springer, New York Dordrecht Heidelberg London.
Malamis, S., Katsou, E., & Haralambous, K. J. (2011). Study of Ni (II), Cu (II), Pb (II), and Zn (II) removal using sludge and minerals followed by MF/UF. Water, Air, & Soil Pollution, 218, 81-92. https://doi.org/10.1007/s11270-010-0625-4
Mukhopadhyay, M., Noronha, S.B., & Suraishkumar, G.K. (2007). Kinetic modeling for the biosorption of copper by pretreated Aspergillus niger biomass. Bioresource Technology, 98(9), 1781-1787. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2006.06.025 Mukhopadhyay, M., Noronha, S. B., & Suraishkumar, G. K. (2008). Copper biosorption in a column of pretreated Aspergillus niger biomass. Chemical Engineering Journal, 144(3), 386-390. https://doi.org/10.1016/j.cej.2008.02.007Noormohamadi, H. R., Fat’hi, M. R., Ghaedi, M., & Ghezelbash, G. R. (2019). Potentiality of white-rot fungi in biosorption of nickel and cadmium: modeling optimization and kinetics study. Chemosphere 216, 124–130. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2018.10.113
Papandreou, A., Stournaras, C. J., & Panias, D. (2007). Copper and cadmium adsorption on pellets made from fired coal fly ash. Journal of Hazardous Materials, 148(3), 538-547. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2007.03.020Rafiq, Z., Nazir, R., Shah, M. R., & Ali, S. (2014). Utilization of magnesium and zinc oxide nano-adsorbents as potential materials for treatment of copper electroplating industry wastewater. Journal of Environmental Chemical Engineering, 2(1), 642-651. https://doi.org/10.1016/j.jece.2013.11.004
Rengaraj, S., Kim, Y., Joo, C. K., Choi, K., & Yi, J. (2004). Batch adsorptive removal of copper ions in aqueous solutions by ion exchange resins: 1200H and IRN97H. Korean Journal of Chemical Engineering, 21, 187-194. https://doi.org/10.1007/BF02705397 Roșca, M., Silva, B., Tavares, T., & Gavrilescu, M. (2023). Biosorption of hexavalent chromium by Bacillus megaterium and Rhodotorula sp. Inactivated Biomass. Processes, 11(1), 179. https://doi.org/10.3390/pr11010179 Shah, S. S., Palmieri, M. C., Sponchiado, S. R. P., & Bevilaqua, D. (2020). Enhanced bio-recovery of aluminum from low-grade bauxite using adapted fungal strains. Brazilian Journal of Microbiology, 51, 1909-1918. https://doi.org/10.1007/s42770-020-00342-wTsekova, K., Todorova, D., Dencheva, V., & Ganeva, S. (2010). Biosorption of copper (II) and cadmium (II) from aqueous solutions by free and immobilized biomass of Aspergillus niger. Bioresource Technology, 101(6), 1727-1731. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2009.10.012
Virolainen, S., Holopainen, O., Maliarik, M., & Sainio, T. (2019). Ion exchange purification of a silver nitrate electrolyte. Minerals Engineering, 132, 175-182. https://doi.org/10.1016/j.mineng.2018.12.020
Wang, J. Y., Cui, H., Cui, C. W., & Xing, D. F. (2016). Biosorption of copper (II) from aqueous solutions by Aspergillus niger-treated rice straw. Ecological Engineering, 95, 793-799. https://doi.org/10.1016/j.ecoleng.2016.07.019
Wang, J. Y., & Cui, C. W. (2017). Characterization of the biosorption properties of dormant spores of Aspergillus niger: a potential breakthrough agent for removing Cu 2+ from contaminated water. RSC advances, 7(23), 14069-14077. https://doi.org/10.1039/c6ra28694a
Zhen, Y., Wang, M., Gu, Y., Yu, X., Shahzad, K., Xu, J., ... & Loor, J. J. (2021). Biosorption of copper in swine manure using Aspergillus and yeast: characterization and its microbial diversity study. Frontiers in Microbiology, 12, 687533. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.687533[1] Pseudo First Order
Related articles
-
Water cover change detection in Zayandeh-Rood watershed using remote sensing
Print Date : 2023-10-14
The rights to this website are owned by the Raimag Press Management System.
Copyright © 2021-2024