مقایسه‌ی‌ اثرات درمانی اسانس گیاه مرزنجوش با کرم کتوکونازول 2% در درمان درماتوفیتوزیس تجربی ناشی از میکروسپوروم کنیس در گربه‌ها

Subject Areas : Journal of Comparative Pathobiology

, H.  Khorram ¹ (.Department of Clinical Science, Faculty of Specialized Veterinary Sciences, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran)
سیامک  Mashhadi Rafie, ² (Department of Clinical Science, Faculty of Specialized Veterinary Sciences, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran.)
, M.  Bayat ³ (Department of Pathobiology, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran.)

Received: 2020-08-21 Accepted : 2020-08-21 Published : 2020-01-21

Keywords: اسانس, مرزنجوش, درماتوفیتوز, گربه, کتوکونازول,

Abstract :

قرن‌ها استفاده از گیاهان دارویی به منظور درمان بیماری‌های مختلف در بسیاری از جوامع بشری شناخته شده و کاربرد داشته است که همچنین خواص اسانس آن‌ها نیز به خوبی آشکار شده است. اسانس گیاه مرزنجوش دارای اثرات آنتی اکسیدانی، ضد باکتری، ضد قارچی، ضد نفخ، ضد اسپاسم و ضد درد مؤثری می‌باشد. در این مطالعه، از داروی ضد قارچی کرم کتوکونازول 2% و اسانس گیاه مرزنجوش به منظور درمان بیماری درماتوفیتوز تجربی ناشی از قارچ میکروسپوروم کنیس در گربه‌ها استفاده شد. تعداد 36 قلاده گربه نر با نژاد بومی مو کوتاه در سه گروه مورد مطالعه و ارزیابی بالینی قرار گرفتند. در ادامه ﺣﺪﺍﻗﻞ ﻏﻠﻈﺖ ﻣﻬﺎﺭﮐﻨﻨﺪﮔﯽ برای اسانس گیاه مرزنجوش µl/ml 19/0 تعیین شد. شروع درمان از 5 روز پس از آلوده‌سازی در نظر گرفته شد که به صورت هر 12 ساعت و به مدت 40 روز ادامه یافت. بیماران هر دو گروه در روز 40 به طور کامل درمان شدند. نتایج نشان می‌دهد که اسانس گیاه مرزنجوش همسان با کرم کتوکونازول 2% یک داروی مؤثر برای درمان بیماری درماتوفیتوز ناشی از قارچ میکروسپوروم کنیس است.

References:

 

1. De Falco E. Chemical Composition and Biological Activity of Essential Oils of Origanum vulgare L. subsp. vulgare L. under Different Growth Conditions. Molecules. 2013;18:14948-14960.


2. Fadel O, Ghazi Z, Mouini L, Charof R. Comparison of Microwave-Assisted Hydrodistillation and Traditional Hydrodistillation Methods for the Rosmarinus eriocalyx essential oils from Eastern Morocco. Journal of Materials and Environmental Science. 2011;2:112-117.


3. Fontenelle R, Morais SM, Brito HSE, Brilhante RSN, Cordeiro RA, Lima YC, Brasil NVGPS, Monteiro AJ, Sidrim JJC, Rocha MFG. Alkylphenol Activity against Candida spp. and Microsporum canis: A focus on the antifungal activity of thymol, eugenol and O-Methyl Derivatives. Molecules. 2011;16:6422-6431.


4. Ghannoum MA, Long L, Cirinol AJ, Miller AR, Najafi R, Wang L, Sharma K, Anderson M, Memarzadeh B. Efficacy of NVC-422 in the treatment of dermatophytosis caused by Trichophyton mentagrophytes using a guinea pig model, International Journal of dermatology. 2013;52:567–571.


5. Inouye S, Uchida K, Abe S. (2006). Vapor activity of 72 essential oils against a Trichophyton mentagrophytes; Journal of Infection and Chemotherapy, 12: 210-216.


6. Ivaskiene, M. Establishing the efficacy novel topical formulations in the treatment of experimental dermatophytosis in guinea pigs. Veterinarija IR Zootechnika. 2011;54:26-34.


7. Mashhady Rafie S, Baradaran Alizadeh S, Bayat M. Comparison of the Therapeutic effects of Nano-essence of Medical herb Artemisia sieberi with the ointment of Ketoconazole in guinea pig infected by Microsporum canis. International Research Journal of Biological Sciences. 2013;2:5-10.


8. Mashhady Rafie S, Chaharbaradari M, Bayat M. Comparison of Therapeutic effects of the Myrtus communis Nano-essence and Topical 1% terbinafine cream in Guinea pigs infected by Microsporum canis. International Research Journal of Biological Sciences. 2014;3:23-29.


9. Mozafarian V. Dictionary of Iran’s plants. 1st ed. Tehran: Farhang Moaser; 1996.


10. Mugnaini L, Nardoni S, Pistelli L, Mancianti F. A herbal antifungal formulation of Thymus serpillum, Origanum vulgare and Rosmarinus officinalis for treating ovine dermatophytosis due to Trichophyton mentagrophytes. Mycoses. 2013;56:333–337.


11. Nadábia Almeida S. Efficacy of Origanum essential oils for inhibition of potentially pathogenic fungi. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. 2010;46:499-508.


12. Neves I. J., Guerra J, Gamble W. Histopathologic and mycologic aspects of experimental infection of guinea pigs with Microsporum canis. Brazilian Journal of Veterinary Research and Animal Science. 2002;39:238-242.


13. Raafat D, Sahl HG. Chitosan and its antimicrobial potential- a critical literature survey. Microbial biotechnology. 2009;2:186-201.


14. Rochette F, Engelen M, Vanden Bosche H. Antifungal agents of use in animal health – practical applications. Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics. 2003;26:31-53.


15. Rodrigues C, Miranda KC, Fernandes OFL, Sosres AJ. In vitro susceptibility testing of dermatophytes isolated in Goiania Brazil against five antifungal agents by broth microdilution method. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. 2009;51:9-12.


16. Saunte DM, Hasselby JP, Brillowska-Dabrowska A., Arendrup MC. Experimental guinea pig model of dermatophytosis: a simple and useful tool for the evaluation of new diagnostics and antifungals. Medical Mycology. 2008;46:303–13.


17. Scott DW, Miller WH, Griffin CE. Miller and Kirk’s Small Animal Dermatology. 6th ed. Saunders, Philadelphia; Saunders; 2001.


18. Shimamura T, Kubota N, Shibuya K. Animal Model of Dermatophytosis, Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012;1155:1-11.


19. Sinha VR, Singla KA. Chitosan microspheres as a potential carrier for drugs. International Journal of Pharmacology. 2004;274:1-33.


20. Tampieri MP, Galuppi R, Macchioni F, Carelle MS, Vijaya M.Anti-fungal activities of Origanum oil against Candida albicans. Molecular and Cellular Biochemistry. 2001;228:111-117.