کتیرا، یک عامل جامدکننده نوین و ارزان برای محیط های کشت بافت میخک و رز مینیاتوری

Subject Areas : Journal of Ornamental Plants

سهیل کریمی ¹ , حسن صالحی ² , فاطمه اشیری ³

1 - گروه باغبانی، دانشکده ابوریحان، دانشگاه تهران، پاکدشت، تهران، ایران
2 - گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
3 - گروه باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران

Received: 2016-04-18 Accepted : 2016-09-06 Published : 2016-12-01

Keywords: Rosa, <i>Dianthus</i>, جایگزین آگار, صمغ طبیعی, قلمه تک گره,

Abstract :

در این پژوهش صمغ کتیرا، شیره گیاهAstragalus gummifer، به صورت موفقیت­آمیزی به عنوان عامل جامدکننده محیط­های کشت بافت برای رشد و پرآوری درون شیشه ای شاخساره رز مینیاتور و میخک مورد استفاده قرار گرفت. رشد شاخساره حاصل از قلمه های تک گره گیاهان پرورش یافته در گلخانه روی محیط MS جامد شده با غلظت های مختلف کتیرا شامل 5/2، 3، 5/3 و 4 درصد یا آگار 8/0 درصد به عنوان شاهد مورد ارزیابی قرار گرفت. محیط­های جامد شده با کتیرا نسبت به محیط کشت­های حاوی آگار شفافیت بیشتری داشتند. استحکام کمتر محیط کشت­های جامد شده با کتیرا نسبت به آگار سبب افتادن برخی از ریزنمونه ها در محیط کشت و شیشه ای شدن تعدادی از آن­ها را در پی داشت. برای افزایش استحکام محیط، ترکیبی از آگار (2/0 و 3/0 درصد) و کتیرا (2 و 3 درصد) استفاده گردید. استحکام محیط های ترکیبی به خوبی محیط حاوی آگار 8/0 درصد بود. افزون بر این، پرآوری و رشد ریزنمونه ها در این محیط ها بیشتر از محیط شاهد ارزیابی گردید. کتیرا به عنوان یک فرآورده گیاهی، قابل تجزیه توسط میکروارگانیسم­ها و سازگار با محیط زیست بوده و افزون بر این قیمتی در حد یک دهم آگار دارد، از این رو می تواند جهت کاهش هزینه­ها، به ویژه در صنعت کشت بافت گیاهی، مورد استفاده قرار گیرد. 

References:

Arnold, S.V. and Ericksson, T. 1984. Effect of agar concentration on growth and anatomy of adventitious shoots of Picea abies (L.) Karst. Plant Cell Tissue Organ Culture, 3: 257-264.

Babbar, S.B. and Jain, N. 1998. 'Isubgol' as an alternative gelling agent for plant tissue culture media. Plant Cell Reports, 17: 318-322.

Bakir, Y., Eldem, V., Zararsiz, G. and Unver, T. 2016. Global transcriptome analysis reveals differences in gene expression patterns between nonhyperhydric and hyperhydric peach leaves. The Plant Genome. 9(2): 1-9.

Debergh, P.C. 1983. Effects of agar brand and concentration on the tissue culture media. Physiologiae Plantarum, 59: 270-276.

Debergh, P.C., Aitken-Christie, J., Cohen, B., Von Arnold, S., Zimmerman, R. and Ziv, M. 1992. Reconsideration of the term “vitrification” as used in micro-propagation. Plant Cell Tissue Organ Culture. 30: 135-140.

Debergh, P.C. and Zimmerman, R.H. 1991. Micro-propagation. Technology and application. Kluwer Academic Publishers. Dordrecht, The Netherlands. 7: 1-93.

Gebre, E. and Sathyanarayana, B.N. 2001. Tapioca - A new and cheaper alternative to agar for direct in vitro shoot regeneration and microtuber production from nodal cultures of potato. African Journal of Crop Science, 9: 1-8.

Gentry, H.S., Mittleman, M. and McCrohan, P.R. 1990. Introduction of chia and gum tragacanth in the U.S. pp. 252-256. In: J. Janick, J.E. Simon (eds.), Advances in New Crops. Timber Press, Portland, USA.

George, E.F. 1993. Plant propagation by tissue culture. Part 1- The technology. Edington, pp. 337-356.

Gonçalves, S. and Romano, A. 2005. Locust bean gum (lbg) as a gelling agent for plant tissue culture media. Scientia Horticulturae, 106: 129-134.

Henderson, W.E. and Kinnersley, A.M. 1988. Corn starch as an alternative gelling agent for plant tissue culture. Plant Cell Tissue Organ Culture, 15: 17-22.

Jain, N. and Babbar, S.B. 2002. Gum katira - a cheap gelling agent for plant tissue culture media. Plant Cell Tissue Organ Culture, 71: 223-229.

Jain, N. and Babbar, S.B. 2005. Guar gum and isubgol as cost-effective alternative gelling agents for in vitro multiplication of an orchid, Dendrobium chrysotoxum. Current Science, 88: 292-294.

Kao, K.N. 1981. Plant formation from barley anther cultures with ficoll media. Zeitschrift für Pflanzenphysiologie, 103: 443-448.

Kevers, C., Franck, T., Strasser, R.J., Dommes, J. and Gaspar, T. 2004. Hyperhydricity of micropropagated shoots: A typically stress-induced change of physiological state. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 77(2): 181-191.

Kuria, P., Demo, P., Nyende, A.B. and Kahangi. E.M. 2008. Cassava starch as an alternative cheap gelling agent for the in vitro micro-propagation of potato (Solanum tuberosum L.). African Journal of Biotechnology, 7(3): 301-307.

Lines, A.D. 1977. Value of K⁺ salt of carrageenan as an agar substitute in routine bacteriological media. Applied and Environmental Microbiology, 34: 637-639.

Mbanaso, E.N.A., Crouch, J., Onoferghara, F.A. and Pillay, M. 2001. Cassava starch as alternative to agar for gelling tissue culture media. Proceedings of the 5^th International Scientific Meeting of the Cassava Biotechnology Network, Donald Danforth Plant Science Center, St. Louis, Missouri, USA. pp. 4-9.

Mohamadnia, Z., Zohuriaan-Mehr, M.J., Kabiri, K. and Razavi-Nouri, M. 2008. Tragacanth gum-graft-polyacrylonitrile: Synthesis, characterization and hydrolysis. Polymer Research, 15(3): 173-180.

Nene, Y.L., Shiela, V.K. and Moss, J.P. 1996. Tapioca - A potential substitute for agar in tissue culture media. Current Science, 70: 493-494.

Pasqualetto, P. L., Zimmerman, R. H. and Fordham, I. M. 1988. The influence of cation and gelling agent concentrations on vitrification of apple cultivars in vitro. Plant Cell Tissue Organ Culture, 14: 31-40.

Pierik, R.L.M. 1997. In vitro culture of higher plants. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, Netherlands, pp. 21-146.

Salehi, H. 2006. Can a general shoot proliferation and rooting medium be used for a number of carnation cultivars? African Journal of Biotechnology, 5: 25-30.

Salehi, H. and Khosh-Khui, M. 1997. A simple procedure for disinfection of ‘Baby Masquarade’ miniature rose explants. Scientia Horticulturae, 68:145-148.

Scheurich, P., Schabl, H., Zimmerman, U. and Kleen, J. 1980. Immobilization and mechanical support of individual protoplasts. Acta Biochimica et Biophysica Sinica, 598: 645-651.

Singha, S. 1984. Influence of two commercial agars in vitro shoot proliferation of 'Almey' crabapple and 'Seckel' pear. HortScience, 19: 227-228.

van den Dries, N., Giannì, S., Czerednik, A., Krens, F.A. and de Klerk, G.J.M. 2013. Flooding of the apoplast is a key factor in the development of hyperhydricity. Journal of Experimental Botany, 64(16): 5221-5230.