اثر فصل، جنسیت و سویههای مختلف اگروباکتریوم رایزوژنز در توانایی القاء ریشههای نابجا در دو پایه نر و ماده سرو کوهی (Juniperus communis L.)
Subject Areas : Journal of Ornamental Plantsمصطفی خوشحال سرمست 1 , رودابه کردکتولی 2 , زهرا رضایی 3 , عظیم قاسم نژاد 4
1 - گروه علوم باغبانی، دانشکده تولیدات گیاهی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
2 - گروه علوم باغبانی، دانشکده تولیدات گیاهی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
3 - گروه علوم باغبانی، دانشکده تولیدات گیاهی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
4 - گروه علوم باغبانی، دانشکده تولیدات گیاهی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
Keywords: فصل, اگروباکتریوم رایزوژنز, سرو کوهی, ریشه های نابجا, دو پایگی,
Abstract :
موشکافی جنبههای مختلف افزایش رویشی سرو کوهی ایرانی یکی از مهمترین اولویتها در رابطه با جلوگیری از انقراض این گونهها به حساب میآید. در این پژوهش اثر سویههای مختلف اگروباکتریوم رایزوژنز، ترکیبات هومونی مختلف (ایندول بوتریک اسید، پاکلوبوترازول، پوتریسین و سدیم نیتروپروساید)، فصول مختلف و جنسیتهای متفاوت در توانایی ریشهزایی دو پایه نر و ماده سرو کوهی مورد بررسی قرار گرفت. ریشهزایی قلمههای نیمه خشبی سرو کوهی در هر دو پایه در پاییز موفقیتآمیزتر بود. قلمههای گرفته شده در سپتامبر بالاترین درصد ریشهزایی را در پایه ماده داشتند در حالی که تفاوت معنیداری در توانایی ریشهزایی در پایههای نر که در دسامبر و سپتامبر گرفته شده بود دیده نشد.گرایش به ریشهزایی در پایه ماده بیشتر از نر بود. تیمار پایههای ماده با IBA ریشهزایی را به نصف کاهش داد و حتی این تنظیم کننده رشد ریشهزایی را در پایه نر نسبت به کنترل به صفر رساند. تفاوت در درصد ریشهزایی بین پایهها تا حدی بهوسیله تفاوت ژنتیکی مشاهده شده در دو پایه با استفاده از تکثیر تصادفی مکانهای ژنی آنها قابل توجیه خواهد بود. سویه A4 اگرو باکتریوم رایزوژنز در مقایسه با دیگر سویهها ریشهزایی را در پایه ماده به 5/53 درصد رساند. تشکیل ریشههای نابجا مرتبط با جنسیت در سرو کوهی که به کمک دادههای ژنتیکی حمایت میشود راه را برای مطالعات پایهای برای آشکار نمودن حلقه گم شده در سازوکار ریشهزایی گیاهان آشکار خواهد نمود.
Carpenter, C.D., O'Neill, T., Picot, N., Johnson, J.A., Robichaud, G.A., Webster, D. and Gray, C.A. 2012. Anti-mycobacterial natural products from the Canadian medicinal plant Juniperus communis. Journal of Ethnopharmacology,143: 695-700.
Carroll, J.F., Tabanca, T., Kramer, M., Elajalde, N.M., Wedge, D.E., Bernier, U.R., Coy, M., Becnel, J.J., Demirci, B., Baser, K.H., Zhang, L. and Zhang, S. 2011. Essential oils of Cupressus funebris, Juniperus communis, and J. chinensis (Cupressaceae) as repellents against ticks (Acari: Ixodidae) and mosquitoes (Diptera: Culicidae) and as toxicants against mosquitoes. Journal of Vector Ecology, 36: 258–268.
Davis, T.D. and Haissig, B.E. 1990. Chemical control of adventitious root formation in cuttings. Plant Growth Regulation Society, 18: 1–18.
Gergoff Grozeff, G.E., De Los, Á., Romero, M. and Videla, A. 2018. Nitric oxide in combination with indole-3-butyric acid improves root growth in ‘Ferdor Julior’ hardwood cuttings (Prunus insistitia (L.) × Prunus domestica (L.)). Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 93: 175-184.
Hartmann, H.T., Kester, D.E., Davis, F.T. and Geneve, R.L. 2011. Plant propagation: principles and practices, 8th ed. Prentice-Hall Inc., Englewood Cliffs. 878. P.
Henrique, A., Campinhos, E.N., Ono, E.O. and Pinho, S.Z. 2006. Effect of plant growth regulators in the rooting of Pinus cuttings. Brazilian Archives of Biology and Technology, 49: 189–196.
Kusari, S., Lamshöft, M. and Spiteller, M. 2009. Aspergillus fumigatus Fresenius, an endophytic fungus from Juniperus communis L. Horstmann as a novel source of the anticancer pro‐drug deoxypodophyllotoxin. Journal of Applied Microbiology, 107: 1019-1030.
McAfee, B., White, E., Pelcher, L. and Lapp, M. 1993. Root induction in pine (Pinus) and larch (Larix) spp. using Agrobacterium rhizogenes. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 34: 53-62.
Pagnussat, G.C., Lanteri, M.L. and Lamattina, L. 2003. Nitric oxide and cyclic GMP are messengers in the indole acetic acid-induced adventitious rooting process. Plant Physiology, 132: 1241-1248.
Ragonezi, C., Klimaszewska, K., Castro, M.R., Lima, M., de Oliveira, P. and Zavattieri, M.A. 2010. Adventitious rooting of conifers: Influence of physical and chemical factors. Trees, 24: 975–992.
Rifaki, N., Economou, A. and Hatzilazarou, S. 2002. Factors affecting vegetative propagation of Juniperus exelsa Bieb. by stem cuttings. Propagation of Ornamental Plants, 2: 9-13.
Sarmast, M.K. 2016. Genetic transformation and somaclonal variation in conifers- a review. Plant Biotechnology Report, 10: 309-325.
Sarmast, M.K. 2018. In vitro establishment of conifers by mature shoots. Journal of Forestry Research, 29: 565-574.
Sarmast, M.K., Salehi, H. and Khosh-Khui, M. 2012. In vitro rooting of Araucaria excelsa R. Br. using Agrobacterium rhizogenes. Journal of Central European Agriculture, 13: 123-130.
Sarmast, M.K., Salehi, H. and Niazi, A. 2015. Biochemical differences underlie varying drought tolerance in four Festuca arundinacea Schreb. genotypes subjected to short water scarcity. Acta Physiologiae Plantarum, 37(192): 1-13.
Tang, W. and Newton, R.J. 2005. Polyamines promote root elongation and growth by increasing root cell division in regenerated Virginia pine (Pinus virginiana Mill.) plantlets. Plant Cell Reports, 24: 581–589.
Villalobos-Amador, E., Rodríguez-Hernández, G. and Pérez-Molphe-Balch, E. 2002. Organogenesis and Agrobacterium rhizogenes-induced rooting in Pinus maximartinezii Rzedowsky and P. pinceana Gordon. Plant Cell Reports, 20: 779–785.
Wiesman, Z. and Lavee, S. 1995. Enhancement of IBA stimulatory effect on rooting of olive cultivar stem cutting. Scientia Horticulturae, 65: 189–198.
