القای کالوس و ظرفیت اندام زایی از ریزنمونه ی پهنک اطلسی القا شده توسط بنزیل آدنین و نفتالین استیک اسید

Subject Areas : Journal of Ornamental Plants

بهزاد  کاویانی ¹ (گروه علوم باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران)
دانش  کاظمی ² (گروه علوم باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران)

Received: 2016-11-19 Accepted : 2017-05-10 Published : 2017-09-01

Keywords: گیاهان زینتی, ریزازدیادی, تنظیم کننده های رشد گیاهی, کشت درون شیشه ای, تیره ی سیب زمینی,

Abstract :

تنظیم­کننده­های رشد گیاهی نقش مهمی در القای کالوس و اندام­زایی ریزنمونه­های گیاهی کشت­شده در شرایط درون­شیشه­ای دارند. کالوس پتانسیل مناسبی برای باززایی گیاه طی اندام­زایی و جنین­زایی غیرمستقیم همچنین کشت سوسپانسیون، تغییر ژنتیکی و تولید متابولیت­های ثانویه دارد. در آزمایش حاضر، ریزنمونه­های برگی اطلسی روی محیط موراشیگ و اسکوگ غنی­شده با غلظت­های مختلف بنزیل آدنین (25/0، 5/0 و 1 میلی­گرم در لیتر) و نفتالین استیک اسید (1/0، 2/0 و 3/0 میلی­گرم در لیتر) کشت شدند. بیشینه­ی وزن تر (16/5 گرم)، وزن خشک (31/0 گرم) و حجم کالوس (50/24 سانتی­متر مکعب) در محیط حاوی 1 میلی­گرم در لیتر بنزیل آدنین در ترکیب با 3/0میلی­گرم در لیتر نفتالین استیک اسید به­دست آمد. ریزنمونه­های برگی در محیط بدون تنظیم­کننده­های رشد گیاهی کالوس تولید نکردند. گیاهچه­ها روی همه­ی کالوس­های رشدیافته در محیط­های حاوی تنظیم­کننده­های رشد گیاهی تولید شدند. بیشترین تعداد گیاهچه در کالوس القاشده روی محیط حاوی 1 میلی­گرم در لیتر بنزیل آدنین در ترکیب با 3/0 میلی­گرم در لیتر نفتالین استیک اسید تولید شد. گیاهچه­های باززایی­شده در شرایط درون­شیشه­ای با شاخه­ها و ریشه­های به­خوبی توسعه­یافته به­طور موفقیت­آمیزی در گلدان­های حاوی پیت و پرلایت (1:1) استقرار یافتند و در یک گلخانه طی 4 هفته با 100 درصد بقا رشد کردند. گیاهچه­های باززایی­شده از نظر مورفولوژیکی با گیاهان مادری مشابه بودند و هیچ تغییر فنوتیپی قابل­تعیینی نشان ندادند.  

References:

Abu-Qaoud, H. 2012. Improving adventitious shoot regeneration from cultured leaf explants of Petunia hybrida using thidiazuron. African Journal of Biotechnology, 11 (51): 11230-11235.

Abu-Qaoud, H., Abu-Rayya, H. and Yaish, S. 2010. In vitro regeneration and somaclonal variation of Petunia hybrida. Journal of Fruit and Ornamental Plant Research, 18 (1): 71-81.

Al-Mallah, Sh. and Salih, S.M. 2006. A protocol for shoot regeneration from leaves petioles tissue culture of neem trees (Melia azedarach). Mesopotamia Journal of Agriculture, 34 (1): 1-8.

Clapa, D. and Cantor, M. 2006. Plant regeneration from stem cuttings of Petunia hybrida. Bulletin of University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine, Cluj-Napoca. Horticulture, 63 (1-2): 45-49.

George, E.F., Hall, M.A. and Klerk, J.D. 2008. Plant Propagation by Tissue Culture. The Background, Springer, 1: 65-75.

Guang-rong, C., Ji-tian, L. and Hai, C. 2004. Study on tissue culture of petunia hybrid. Special Wild Economy and Animal Plant Research, 2004-2003.

Jain, S.M. and Häggman, H. 2007. Protocols for Micropropagation of Woody Trees and Fruits. Springer Publication.

Jain, S.M. and Ochatt, S.J. 2010. Protocols for In Vitro Propagation of Ornamental Plants. Springer Protocols, Humana Press.

Maberly, D.J. 1990. The Plant Book. A portable dictionary of the higher plants. Cambridge University Press, Cambridge, U.K.

Mihaljevi, S., Bjedov, I. and Kova, M. 2002. Effect of explant source and growth regulators on in vitro callus growth of Taxus baccata L. Washingtonii Food Technology and Biotechnology, 4: 299-303.

Murashige, T. and Skoog, T. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiologia Plant, 154: 473-497.

Qu, Y.H., Lin, C., Zhou, W., Li, Y., Chen, B. and Chen, G.Q. 2009. Effect of CO₂ concentration and moisture content of sugar-free media on the tissue–cultured plantlets in a large growth chamber. Communications in Nonlinear Science and Numerical Simulation, 14 (1): 322-330.

Praveen, N., Naik, P.M., Manohar, S.H., Nayeem, A. and Murthy, H.N. 2010. In vitro regeneration of brahmi shoots using semisolid and liquid cultures and quantitative analysis of bacoside A. Acta Physiology Plant, 31: 723–728.

Reuveni, M. and Evenor, D. 2007. On the effect of light on shoot regeneration in Petunia. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 89: 49-54.

Rui-yue, Z. 2007. Tissue culture and rapid propagation of Petunia hybrida. Journal of Anhui Agricultural Science, 2007-2010.

Sriskandaraja, S., Prinson, E., Motyka, V., Dobrev, P.I. and Serek, M. 2006. Regenerative capacity of Cacti Schlumbergera and Rhipaslidopsis in relation to endogenous phytohormones, cytokinin oxidase/dehydrogenase, and peroxidase activities. Journal of Plant Growth Regulation, 25 (1): 79- 88.

Subotic, A., Jevremovic, S., Cingel, A. and Milosevic, S. 2008. Effect of urea-type cytokinins on axillary shoot regeneration of Impatiens walleriana L. Biotechnology and Biotechnological Equipment, 22 (3): 817-819.

Thirukkumaran, G., Ntui, V.O., Sherkhan, R. and Mii, M. 2009. Thidiazuron: an efficient plant growth regulator for enhancing Agrobacterium mediated transformation in Petunia hybrid. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 99 (1): 109-115.

Xian-Chun, Z. 2010. Effect of the plant hormones ratio on tissue culture of Petunia hybrida. Journal of Anhui Agricultural Science, 17-20.