شناسایی سرولوژیک و مولکولی ویروس آکابان در ایران

Subject Areas : Camel

غ.ع. کجوری ¹ (Department of Clinical Science, School of Veterinary Medicine, Shahrekord University, Shahrekord,)
ز. داوودی ² (Department of Veterinary Medicine, Shahrekord University, Shahrekord, Iran)
ح. ممتاز ³ (Department of Animal Science, Shahrekord Branch, Islamic Azad University, Shahrekord, Iran)

Received: 2014-09-24 Accepted : 2015-01-15 Published : 2015-09-01

Keywords: RT-PCR, نشخوارکنندگان, ویروس, بیماری آکابان, رحم‌,

Abstract :

تحقیق حاضر بر 60 رأس نشخوارکننده ماده با تاریخچه سقط جنین و یا مرده‌زایی به منظور شناسایی موارد مثبت ابتلا به ویروس آکابان و سپس تعیین نقش بافت رحم در انتقال بیماری و بقای ویروس به انجام رسید. به همین منظور از آزمایش سرولوژیک الیزا و مولکولی RT-PCR بهره گرفته شد تا به ترتیب پس از شناسایی موارد مثبت اقدام به ردگیری ژنوم ویروس در بافت رحم شود. پس از انجام مطالعه میدانی، جمعیتی بالغ بر 2400 رأس شامل60 رأس دام مشکوک (20 رأس گاو، 20 رأس گوسفند و 20 رأس بز) با تاریخچه سقط جنین یا مرده زایی (گروه مطالعه) و 60 رأس دام سالم (گروه شاهد) شناسایی و جهت بررسی بیشتر به کشتارگاه ارجاع شدند. ابتدا در سالن انتظار اقدام به خونگیری از ورید وداج و پس از کشتار ضمن بررسی دقیق لاشه و طی شرایط آسپتیک اقدام به نمونه برداری از رحم شد. نمونه‌ها در اسرع وقت و در کنار یخ به آزمایشگاه منتقل و تا زمان انجام آزمون الایزا و RT-PCR به ترتیب در برودت 20- و 70- درجه سانتیگراد نگهداری شدند. قبل از انجام هر گونه آزمایش ابتدا نمونه‌های سرمی از نظر حضور پادتن بر علیه بروسلا مورد بررسی قرار گرفتند که از گروه مطالعه و شاهد، به ترتیب سه رأس و یک رأس واجد پادتن بر علیه بروسلا بودند و در نهایت آزمون‌های سرولوژیک و مولکولی تنها بر نمونه‌های عاری از بروسلوز صورت پذیرفت. نتایج آزمون الایزا حکایت از مثبت بودن یک مورد از 17 رأس گوسفند و مشکوک بودن 3 بز از 20 رأس داشت. بر این اساس میزان آلودگی به ویروس آکابان در جمعیت 57 رأسی معادل 75/1 درصد برآورد شد. اما در بررسی مولکولی بافت رحم تمامی نمونه‌ها عاری از آلودگی به ویروس آکابان تشخیص داده شدند. بر اساس نتایج به دست آمده حضور آنتی‌بادی بر علیه ویروس آکابان در جمعیت گوسفند و بز مورد مطالعه برای اولین بار در ایران به اثبات رسید.

References:

Ahourai P., Gholami M.R., Ezzi A., Kargar R., Khedmati K., Aslani A., Rahmani F. and Zarrin-Naal E. (1992). Bovine congenital arthrogryposis and hydranencephaly outbreaks attributed to akabane virus infection in Iran. Arch. Inst. Razi. 1, 51-56.

Brenner J., Tsuda T., Yadin H. and Kato T. (2004). Serological evidence of Akabane virus infection in northern Israel in 2001. J. Vet. Med. Sc. 66, 441-443.

Inaba Y. and Matsumato M. (1990). Akabane Virus. Pp. 467-480 in Virus Infections of Ruminants, Z. Dinter and B. Morein, Eds. Elsevier Science Publishers, Amsterdam, Netherlands.

Jennings M. and Mellor P.S. (1989). Culicoides: biological vectors of akabane virus. Vet. Microbiol. 21, 125-131.

Jun Q., Qingling M., Zaichao Z., Kuojun C., Jingsheng Z., Minxing M. and Chuangfu C. (2012). A serological survey of akabane virus infection in cattle and sheep in northwest China. Trop. Anim. Health Prod. 44, 1817-1820.

Lee J.K., Park J.S., Choi J.H., Paik B.K., Lee B.C., Hwang W.S., Kim J.H., Jean Y.H., Haritani M., Yoo H.S. and Kim D.Y. (2002). Encephalomyelitis associated with akabane virus infection in adult cows. Vet. Pathol. 39, 269-273.

Liao Y.K., Lu Y.S., Goto Y. and Inaba Y. (1996). The isolation of akabane virus (Iriki strain) from calves in Taiwan. J. Basic Microbiol. 36, 33-39.

Pugh D.G. and Baird A.N. (2012). Sheep and Goat Medicine. Saunders Elsevier, St. Louis, Missouri, USA.

Radostits O.M., Gay C.C., Hinchcliff K.W. and Constable P.D. (2007). Veterinary Medicine. A Text Book of the Diseases of Cattle, Sheep, Pig, Goat and Horse. Saunders Elsevier, St. Louis, Missouri, USA.

Tarlinton R., Daly J., Dunham S. and Kydd J. (2012). The challenge of schmallenberg virus emergence in Europe. Vet. J. 194, 10-18.

Taylor W.P. and Mellor P.S. (1994). The distribution of akabane virus in the Middle East. Epidemiol. Infect. 113, 175-185.

Tsuda T., Yoshida K., Yanase T., Ohashi S. and Yamakawa M.

     (2004). Competitive enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of the antibodies specific to akabane virus. J. Vet. Diagn. Invest. 16, 571-576.

Yoshida K. and Tsuda T. (1998). Rapid detection of antigenic diversity of akabane virus isolates by dot immunobinding assay using neutralizing monoclonal antibodies. Clin. Vacc. Immunol. 5, 192-198.