اثر عمل‌آوری جیره‌های مبتنی بر پایه علوفه سورگوم بر عملکرد، مقادیر پارامترهای هماتولوژیکی و بیوشیمیایی و پاسخ‌های ایمنی بره‌های در حال رشد نلور

Subject Areas : Camel

د. ناگالاکشمی ¹ , ک. دهانالاکشمی ²

1 - College of Veterinary Science, Sri Venkateswara Veterinary University, Hyderabad, 500030, India
2 - College of Veterinary Science, Sri Venkateswara Veterinary University, Hyderabad, 500030, India

Received: 2012-05-01 Accepted : 2012-09-27 Published : 2013-12-01

Keywords: عملکرد, پلت‌, پاسخ ‌ایمنی, بره‌, علوفه سورگوم,

Abstract :

در این آزمایش یک جیره کامل (جیره کاملأ مخلوط شده) حاوی علوفه سورگوم (40 درصد) به عنوان منبع انحصاری علوفه ‌خشک در اختیار بره‌ها در دو شکل آردی و پلت قرار گرفت. این دو جیره با یک جیره معمول (علوفه سورگوم خرد ‌شده که به صورت آزاد و به‌طور جداگانه با کنسانتره به‌منظور برآورد 80 درصد از نیازمندی‌ها تغذیه می‌شدند) مقایسه شدند. جیره‌ها به‌طور تصادفی به 30 بره نر در یک دوره 150 روزه اختصاص یافتند. میانگین افزایش وزن روزانه بره‌ها روی جیره‌های معمول، آردی و پلیت به‌ترتیب 15/62، 5/68 و 3/101 گرم بود. با وجود ماده‌ خشک مصرفی کمتر، بره‌های تغذیه شده با جیره‌های کامل از ماده‌ خشک مصرفی با راندمان بالاتری استفاده کردند. به استثناء غلظت هموگلوبین که به‌طور معنی‌داری در بره‌های تغذیه شده با جیره پلت بالاتر بود، سایر پارامترهای هماتولوژیکی (شمار اریتروست و لکوسیت ها، درصد نوتروفیل و لنفوسیت) و بیوشیمیایی سرم (کل پروتئین، آلبومین، گلوبولین، غلظت ازت ادرار) در روزهای 0، 75 و 150 از جیره‌های آزمایشی تاثیر نپذیرفت. فعالیت پروکسیداز لیپیدی و فعالیت کاتالاز گلبول‌های قرمز خون در گروه‌های تغذیه شده با جیره‌های کامل به‌ترتیب پایین‌تر و بالاتر بود. پاسخ ‌ایمنی هومورال علیه بروسلاآبورتوس در بره‌های تغذیه شده با جیره پلت در مقایسه با بره‌های تغذیه شده با جیره‌های آردی یا معمول بالاتر بود. عیارهای Ig تام، IgM یا IgG علیه سلول‌های قرمز خونی 20 درصد جوجه در بره‌های تغذیه شده با جیره‌های کامل بیشتر بود و از فرآیند پلیت‌کردن تأثیر نپذیرفت. پاسخ ‌ایمنی به‌واسطه سلولی بره‌ها در روز 150 تغذیه بالاترین مقدار را در جیره پلیت داشت و در رتبه‌های بعدی به‌ترتیب جیره کامل آردی و جیره معمولی قرار داشت

References:

AOAC. (2000). Official Methods of Analysis. 17^th Ed. Association of Official Analytical Chemists, Arlington, VA.
Alton G.G., Jones L.M. and Pietz D.E. (1975). Pp. 55-59 in Laboratory Techniques in Brucellosis, World Health Org., Univ. Michigan.
Benjamin M.M. (1985). Outline of Veterinary Clinical Pathology. Lowastat Univ. Press.
Bergmeyer H.U. (1983). Catalase. Pp. 165-166 in Methods of Enzymatic Analysis, Vol 2, Weinheim, Verlag Chemie.
Bounous D.I., Raymond P., Campagnoli S. and Brown J. (1992). Comparison of MTT colorimetric assay and tritiated thymidine uptake for lymphocyte proliferation assays using chicken splenocytes. Avian Dis. 36, 1022-1027.
Duncan D.B. (1955). Multiple range and multiple F-test. Biometrics. 11, 1-42.
Gustafsson E.J. (1976). Improved specificity of serum albumin determination and estimation of acute phase reactants by use of the bromocresol green reduction. Clin. Chem. 22, 616-622.
Harvey J.W. (1997). The erythrocyte: physiology, metabolism and biochemical disorders. Pp. 157-203 in Clinical Biochemistry of Domestic Animals. J.J. Kaneko, J.W. Harvey and M.L. Bruss Eds.Academic Press, USA.
HillerM.H., McIntosh B. and Van Slyke S. (1927). Colorimetric determination of proteins. J. Clin. Invest. 4, 235-242.
ICAR. (1998). Nutrient Requirements of Livestock and Poultry. Indian Council of Agricultural Research, New Delhi, India.
JainM.C. (1986). Schalm’s Veterinary Haematology. 4^th Ed. Lea and Febiger, Philadelphia.
Lailer P.C., Dahiya S.S., Lal D. and Chauhan T.R. (2005). Complete feed for livestock. Concept, present status and future trend: a review. Indian J. Anim. Sci. 75, 84-91.
Kirubanath K., Reddy D.N. and Nagalakshmi D. (2003). Effect of processing cotton straw based complete diet with expander-extruder on performance of crossbred calves. Asian-australas J. Anim. Sci. 16, 1572-1576.
Moron M.S., Depierre J.W. and Mannervik B. (1979). Levels of glutathione, glutathione reductase and glutathione S transferase in rat lung and liver. Biochem. Biophy. Acta. 582, 67-68.
Nagalakshmi D. and Reddy D.N. (2003). On farm performance of lambs fed maize cobs based complete diet processed with expander extruder. Indian J. Small Rumin. 9, 147-149.
Nagalakshmi D., Nalini Kumari N. and Srinivasa Rao D. (2010). Feed Processing: Effect on nutrient availability. Pp. 76-83 in Proc. Animal Nutrition Strategies for Environ. Protection and Poverty Alleviation,Volume I. College of Veterinary Science and Animal Husbandry, Bhubaneswar, India.
Paglia D.E. and Valentine W. N. (1967). Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. J. Lab. Clin. Med. 70, 158-169.
Perlman P. and Engvall E. (1971). Enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) quantitative assay for immunoglobulin. Immunochemistry. 8, 871-878.
Placer Z.A., Cushman L.L. and Johnson B. (1966). Estimation of product of lipid peroxidation (malonyl dialdehyde). Analytical. Biochem. 16, 359-364.
Rahmatullah M. and Boyde T.R. (1980). Improvements in the determination of urea using diacetyl monoxime: methods with and without deproteinization. Clin. Chem. Acta. 107, 3-9.
Reddy D.N. and Nagalakshmi D. (2004). Expander extruder- a novel technology to enhance the nutritive value of crop residues based diets for ruminants. Pp. 85-95 in Proc.Workshop on ‘Design Dev. Indigen. Equip. manufac, preserv. Package. Anim. feed. IGFRI, Jhansi.
Reddy G.V.N. and Reddy M.R. (1999). Utilization of expander extruder processed complete diet containing sorghum straw in Ongole bull calves. Indian J. Anim. Sci. 69, 49-50.
Reddy G.V.N., Reddy J.K. and Nagalakshmi D. (2002). Effect of expander extruder processed complete diet containing sugar cane bagasse on growth and nutrient utilization in Ongole bull calves. Indian J. Anim. Sci. 72, 406-409.
Saygili E.I., Konukoglu D., Papila S. and Aksay T. (2003). Levels of plasma vitamin E, vitamin C, TBARS and cholesterol in male patients with colorectal tumors. Moscow. Biochem. 68, 317-325.
Scott A.F., Wagner T.C. and Chiu D.T.Y. (1993). Decreased catalase activity in the underlying mechanisms of oxidant susceptibility in glucose-6-phosphate dehydrogenase deficient erythrocytes. Biochem. Biophy. Acta Mol. Basis Dis. 1181, 163-168.
Snedecor G.W. and Cochran W.G. (1980). Statistical Methods, 8^th edn, Iowa State Univ. Press, Ames, Iowa.
Ullery D.E., Miller E.R., Long C.H. and Vincent B.H. (1965). Sheep hematology from birth to maturity I. Erythrocyte population, size and hemoglobin concentration. J. Anim. Sci. 24, 135-140.
Van Soest P.J., Robertson J.B. and Lewis B.A. (1991). Methods for dietary fibre, neutral detergent fibre and non-starch polysaccharide in relation to animal nutrition. J. Dairy Sci. 74, 3583-3597.
Wegmann N.T.G. and Smithies O. (1966). A simple haemagglutination system requiring small amounts of red cells and antibodies transfusion. Philadelphia. 6, 67-71.