اثر اخته قبل از بلوغ جنسی بر روی قطر پشم و هورمون تستوسترون در بره‌‌‌های نر نژاد قزل
Subject Areas : Camelف. نظری-زنوز 1 , ق. مقدم 2 , س.ع. رافت 3 , ز. عبدی 4 , ک. اعتماد گرگان 5 , ر. نبوی 6
1 - Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
2 - Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
3 - Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
4 - Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
5 - Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
6 - Department of Animal Science, University of Nebraska-Lincoln, Nebraska, USA
Keywords: گوسفند, تستوسترون, پشم, اخته کردن,
Abstract :
رشد پشم به فعالیت هورمون ها بستگی دارد. در تغییرات وضعیت هورمونی متأثر از حذف غدد درونریز توسط جراحی، بیماریها یا ناهنجاریهای مادرزادی شدید، رشد پشم به طور قابل ملاحظه ای تغییر میکند. هدف از این مطالعه بررسی اثر اخته کردن در سنین مختلف در دوره قبل از بلوغ بر روی صفات پشم و تغییرات غلظت تستوسترون می باشد. بدین منظور 20 رأس بره یک ماهه نژاد قزل انتخاب شد و در 5 گروه (4 بره در هر گروه) قرار گرفت. گروه اخته شده ها، 4 گروه (1، 2، 3، 4 ماهه) در سنین مختلف اخته شدند، در حالی که گروه پنجم به عنوان گروه کنترل در نظر گرفته شد. تمام حیوانات به مدت 240 روز با جیره غذایی یکسان تغذیه شدند. در 9 ماهگی، نمونه های پشم از قسمت میانی و کتف بدن برداشته شده و توسط روش آنالیز تصویر مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. از تمامی حیوانات نمونه خون از سن 1 ماهگی تا 9 ماهگی به صورت ماهانه و به منظور اندازه گیری سطح تستوسترون پلاسما گرفته شد. میانگین قطر الیاف پشم در بره های اخته شده در مقایسه با نرهای سالم کمتر بود (35.21 میکرومتر در مقابل 36.40 میکرومتر؛ P<0.05). همچنین میانگین قطر فیبر پشم در بره های اخته شده 4 ماهه تفاوت معنی داری با سایر گروه های اخته شده داشت (P<0.05). سطح تستوسترون پلاسما در 9 ماهگی در بره های اخته شده در مقدار پایه خود (0.5 نانوگرم در میلی لیتر) در مقایسه با بره های نر سالم (2.33 نانوگرم در میلی لیتر) باقی ماند (P<0.05). قطر الیاف با غلظت تستوسترون پلاسما در اخته شده ها (r=0.94) و بره های سالم (r=0.86) همبستگی زیادی داشت (P<0.05). بنابراین، می توان نتیجه گیری کرد که غلظت تستوسترون موجب افزایش قطر پشم می شود.
Abecia J., Valares J. and Forcada F. (2005). The effect of melatonin treatment on wool growth and thyroxine secretion in sheep. Small Rumin. Res. 56, 265-270.
Ansari-Renani H. (2013). Fiber quality of Iranian carpet-wool sheep breeds. Media Peternakan. 35(3), 179-184.
Corbett J. (1979). Variation in wool growth with physiological state. Pp. 79-98 in Physiological and Environmental Limitations to Wool Growth. J.L. Black and P.J. Reis, Eds. University of New England Publishing Unit, Armidale, Australia.
Cottle D. and Baxter B. (2015). Wool metrology research and development to date. Text. Prog. 47, 163-315.
Davari F., Khazali H., Rokni H. and Fatehi Z. (2012). Effects of testosterone and growth hormone on plasma concentrations of orexin in diet restricted rams. Iranian J. Endocrinol. Metabol. 14, 81-87.
Davis S.J. (2000). The effect of castration and age on the development of the Shetland sheep skeleton and a metric comparison between bones of males, females and castrates. J. Archaeol. Sci. 27, 373-390.
Ferrando A.A., Sheffield-Moore M., Yeckel C.W., Gilkison C., Jiang J., Achacosa A., Lieberman S.A., Tipton K., Wolfe R.R. and Urban R.J. (2002). Testosterone administration to older men improves muscle function: molecular and physiological mechanisms. American J. Physiol. Endocrinol. Metabol. 282, 601-607.
Galbraith H. (2010). Fundamental hair follicle biology and fine fibre production in animals. Animal. 4, 1490-1509.
Kendall P.E. (1999). Prolactin and wool growth in the Romney ewe: a thesis presented in partial fulfilment of the requirements. Ph D. Thesis. Massey Univ., Palmerston North, New Zealand.
Khan M.J., Abbas A., Ayaz M., Naeem M., Akhter M.S. and Soomro M.H. (2012). Factors affecting wool quality and quantity in sheep. African J. Biotechnol. 11, 13761-13766.
McDowall M., Edwards N. and Hynd P. (2011). The effects of short-term manipulation of thyroid hormone status coinciding with primary wool follicle development on fleece characteristics in Merino sheep. Animal. 5, 1406-1413.
McDowall M., Watson-Haigh N., Edwards N., Kadarmideen H., Nattrass G., McGrice H. and Hynd P. (2013). Transient treatment of pregnant Merino ewes with modulators of cortisol biosynthesis coinciding with primary wool follicle initiation alters lifetime wool growth. Anim. Prod. Sci. 53, 1101-1111.
McGregor B. and Butler K. (2016). Coarser wool is not a necessary consequence of sheep aging: Allometric relationship between fibre diameter and fleece-free liveweight of Saxon Merino sheep. Animal. 10(12), 2051-2060.
McGregor B. and Tucker D. (2010). Effects of nutrition and origin on the amino acid, grease, and suint composition and color of cashmere and guard hairs. J. Appl. Polymer Sci. 117, 409-420.
Montenegro R. (2003). The effects of prolactin on prolactin receptor gene expression and wool growth in Romney ewes. Ph D. Thesis. Massey Univ., Palmerston North, New Zealand.
Nabavi R., Alijani S., Taghizadeh A., Rafat S.A. and Bohlouli M. (2014). Genetic study of reproductive traits in Iranian native Ghezel sheep using Bayesian approach. Small Rumin. Res. 120, 189-195.
Nazari-Zenouz F., Moghaddam G., Hamidiam G., Ashrafi J., Rafat S. and Qasemi-Panahi B. (2016). Postnatal testicular development and testosterone changes in Ghezel ram lambs. Small Rumin. Res. 141, 70-76.
Nazari Zenouz F., Moghaddam G. and Abdi Z. (2014). Weight changes and sexual behavior in ghezel intact and castrated male lambs. Int. J. Adv. Biol. Biomed. Res. 2, 1761-1767.
Nixon A., Ford C., Wildermoth J., Craven A., Ashby M. and Pearson A. (2002). Regulation of prolactin receptor expression in ovine skin in relation to circulating prolactin and wool follicle growth status. J. Endocrinol. 172, 605-614.
Rogers G.E. (2006). Biology of the wool follicle: An excursion into a unique tissue interaction system waiting to be re-discovered. Exp. Dermatol. 15, 931-949.
Sanni A., Arowolo R. and Olayemi F. (2012). Preliminary study on the effect of castration and testosterone replacement on testosterone level in the New Zealand male rabbit. African J. Biotechnol. 11, 10146-10148.
SAS Institute. (2004). SAS®/STAT Software, Release 9.1. SAS Institute, Inc., Cary, NC. USA.
Sherlock R., Harris P., Lee J., Wickham G., Woods J. and McCutcheon S. (2001). Intake and long-term cysteine supplementation change wool characteristics of Romney sheep. Australian J. Agric. Res. 52, 29-36.
Sinha N. and Singh S. (1997). Genetic and phenotypic parameters of body weights, average daily gains and first shearing wool yield in Muzaffarnagri sheep. Small Rumin. Res. 26, 21-29.
Slen S. and Connell R. (1960). Effect of estradiol and testosterone injections and thyroidectomy on wool growth in Shearling Sheep. Canadian J. Anim. Sci. 40, 15-22.
Southcott W. and Royal W. (1971). Effect of implanted testosterone propionate on the growth and wool production of merino wethers. Australian J. Agric. Res. 22, 271-282.
Vingren J.L., Kraemer W.J., Ratamess N.A., Anderson J.M., Volek J.S. and Maresh C.M. (2010). Testosterone physiology in resistance exercise and training. Sports Med. 40, 1037-1053.
Yeates N., Edey T.N. and Hill M.K. (2013). Animal Science: Reproduction, Climate, Meat, Wool. Elsevier, Elsevier, Amsterdam, the Netherlands.
Yu M., Kissling S., Freyschmidt-Paul P., Hoffmann R., Shapiro J. and McElwee K.J. (2008). Interleukin 6 cytokine family member oncostatin M is a hair follicle expressed factor with hair growth inhibitory properties. Exp. Dermatol. 17, 12-19.
