ارزیابی سطوح آنتی‌اکسیدانی کُل، کلسیم کُل، سلنیوم، انسولین، تری یدو تیرونین آزاد و تیروکسین آزاد در گاوهای مبتلا به کتوز

Subject Areas : Camel

اس. کوزت ¹ ( Department of Internal Medicine, Faculty of Veterinary, Yuzuncu Yıl University, Zeve Campus, Van, Turkey )
ن. یوکسک ² ( Department of Internal Medicine, Faculty of Veterinary, Yuzuncu Yıl University, Zeve Campus, Van, Turkey )

Received: 2017-01-29 Accepted : 2017-03-31 Published : 2017-09-01

Keywords: سلنیوم, انسولین, کلسیم, تیروئید, گاوهای شیرده, کتوز,

Abstract :

کتوز یک بیماری متابولیکی مهم در گاوهای پرتولید است. تغیرات معنی­داری در غلظت اکثر متابولیت­ها و هورمن­ها در بیماری­های متابولیکی اتفاق می­افتد. این مطالعه با هدف سنجش غلظت­های کلسیم (Ca)، سلنیوم (Se)، آنتی­اکسیدان کُل (TAOC)، انسولین، تری یدو تیرونین آزاد (fT3) و تیروکسین آزاد (fT4) در گاوهای مبتلا به کتوز تحت حاد و حاد صورت گرفته است. در این مطالعه 20 گاو شیرده در دو ماه نخست دوره شیردهی و با سن بین 4 تا 8 سال مورد مطالعه قرار گرفته است. گاوهایی که غلظت بتاهیدروکسی بوتیرات اسید (BHBA) در آنها 20/1 میلی­مولار در هر لیتر بوده، سالم تلقی شده، آنهایی که دارای غلظت بین 20/1 تا 50/1 میلی­مولار در هر لیتر بودند، تحت حاد محسوب شده و آنهایی که دارای غلظت 60/1 تا 20/2 میلی­مولار در هر لیتر بودند، در دسته مبتلایان به کتوز حاد دسته­بندی گردیدند. آسپارتات آمینو ترانسفراز سرمی (AST)، آلانین آمینو ترانسفراز (ALT)، لیپوپروتئین با چگالی پایین (LDH)، گلوکز، کلسیم، ظرفیت TAOC پلاسمایی و غلظت BHBA با استفاده از اسپکتروفتومتری اندازه­گیری گردید. غلظت انسولین سرم، تری یدو تیرونین آزاد و تیروکسین آزاد نیز با استفاده از روش کمی­لومینسنس اندازه­گیری شد. غلظت Se سرمی با استفاده از اسپکتروفتومتری القایی پلاسما توده جفت شده (ICP-MS) مورد سنجش قرار گرفت. نتایج نشان داد که غلظت TAOC، Ca، Se، fT3، fT4 و انسولین در گاوهای مبتلا به کتوز تحت حاد و حاد کاهش می­یابد. این مطالعه، نشان داد که پارامترهای مهم و تغییرات در سطوح این پارامترها تعیین‌کننده درمان و پیشگیری از بیماری کتوز هستند. این موضوع می­تواند به کاهش ضررهای اقتصادی ناشی از بیماری کتوز در مزارع پرورش گاو شیری کمک کند.

References:

Arslan C. and Tufan T. (2010). Feeding the transition dairy cow I. Physiologic, hormonal, metabolic and immunogical changes and nutrient requirement of dairy cow during this period. Kafkas Univ. Vet. Fak. Derg. 16, 151-158.

Avcıl C. and Kızıl O. (2013). The effects of injectable trace elements on metabolic parameters in transition cow. Kafkas Univ. Vet. Fak. Derg. 19, 73-78.

Blum J.W., Kunz P., Leuenberger H., Gautschi K. and Keller M. (1983). Thyroid hormones, blood plasma metabolites and haematological parameters in relationship to milk yield in dairy cows. Anim. Sci. 36, 93-104.

Brockman R.P. (1979). Roles for insulin and glucagon in the development of ruminant ketosis: a review. Canadian Vet. J. 20, 121-126.

Cassar-Malek I., Picard B., Kahl S. and Hocquette J.F. (2007). Relationships between thyroid status, tissue oxidative metabolism, and muscle differentiation in bovine foetuses. Domest. Anim. Endocrinol. 33, 91-106.

Çelik S. and Karagul H. (2005). The red blood cell membrane proteins in rabbits with experimental ketosis. Turkian J. Vet. Anim. Sci. 29, 151-155.

Contreras P.A., Matamoros R., Monroy R., Kruze J., Leyan V., Andaur M. and Wittwer F. (2002). Effect of a selenium-deficient diet on blood values of T₃ and T₄ in cows. Comp. Clin. Pathol. 11(2), 65-70.

Djoković R., Šamanc H., Ilić Z. and Kurćubić V. (2009). Blood glucose, insulin and inorganic phosphorus in healthy and ketotic dairy cows after intravenous infusion of glucose solution. Acta. Vet. Brno. 78, 449-453.

Elitok B., Kabu M. and Elitok Ö.M. (2006). Evaluation of liver function test in cows during periparturient period. Fırat Univ. Vet. J. Health. Sci. 20, 205-209.

Forrer R., Gautschi K., Stroh A. and Lutz H. (1998). Direct determination of selenium and other trace elements in serum samples by ICP-MS. J. Trace Elem. Med. Biol. 12, 240-247.

Forslund K.B., Ljungvall Ö.A. and Jones B.B. (2010). Low cortisol levels in blood from dairy cows with ketosis: a field study. Acta. Vet. Scandinavica. 52, 1-6.

Gartner V., Potočnik K. and Jovanovac S. (2009). Test-day records as a tool for subclinical ketosis detection. Acta. Vet. 59, 185-191.

Gerloff B.J. (1992). Effects of selenium supplementation on dairy cattle. J. Anim. Sci. 70, 3934-3940.

Goldhawk C., Chapinal N., Veira D.M., Weary D.M. and Von Keyserlingk M.A.G. (2009). Prepartum feedding behavior is an early indicator of subclinical ketosis. J. Dairy Sci. 92, 4971-4977.

Haces M.L., Hernández-Fonseca K., Medina-Campos O.N., Montiel T., Pedraza-Chaverri J. and Massieu L. (2008). Antioxidant capacity contributes to protection of ketone bodies against oxidative damage induced during hypoglycemic conditions. Exp. Neurol. 211(1), 85-96.

Henze P., Bickhard K., Fuhrmann H. and Sallmann H.P. (1998). Spontaneous pregnancy toxaemia (ketosis) in sheep and the role of insulin. J. Vet. Med. A. 45, 255-266.

Katoh N. (2002). Relevance apolipoproteins in the development of fatty liver and fatty liver-related peripartum disease in dairy cows. J. Vet. Med. Sci. 64, 293-307.

Kennerman E. (2004). Serum insulin, triidothyronine (T₃), and thyroxine (T₄) levels in cows with ketosis. J. Vet. Surg. 10, 34-37.

Kozat S. (2007). Serum T₃ and T₄ concentrations in lambs with nutritional myodegeneration. J. Vet. Int. Med. 21, 1135-1137.

Moghaddam J.G. and Hassanpour A. (2008). Comparison of blood serum glucose, beta hydroxybutyric acid, blood urea nitrogen and calcium concentrations in pregnant and lambed ewes. J. Anim. Vet. Adv. 7, 308-311.

Mullur R., Liu Y.Y. and Brent G.A. (2014). Thyroid hormone regulation of metabolism. Physiol. Rev. 94(2), 355-382.

Pavlata L., Illek J., Pechova A. and Matějíček M. (2002). Selenium status of cattle in the Czech Republic. Acta. Vet. Brno. 71(1), 3-8.

Rosenbaum M., Hirsch J., Murphy E. and Leibel R.L. (2000). Effects of changes in body weight on carbonhydrate metabolism, catecholamine excretion, and thyroid function. Am. J. Clin. Nutr. 71, 1421-1432.

Rowntree J.E., Hill G.M., Hawkins D.R., Link J.E., Rincker M.J., Bednar G.W. and Kreft R.A. (2004). Effect of Se on selenoprotein activity and thyroid hormone metabolism in beef and dairy cows and calves. J. Anim. Sci. 82(10), 2995-3005.

Sahinduran S., Sezer K., Buyukoğlu T., Albay M.K. and Karakurum M.C. (2010). Evaluation some haematological and biochemical parameters before and after treatment in cows with ketosis and comparison of different treatment methods. J. Anim. Vet. Adv. 9, 266-271.

Sahoo S.S., Patra R.C., Behera P.C. and Swarup D. (2009). Oxidative stress indices in the erythrocytes from lactating cows after treatment for subclinical ketosis with antioxidant incorporated in the therapeutic regime. Vet. Res. Commun. 33, 281-290.

Sakha M., Ameri M., Sharifi H. and Taheri I. (2007). Bovine subclinical ketosis in dairy herds in Iran. Vet. Res. Commun. 31(6), 673-679.

Saldago Hernández E.G., Bouda J., Avila García J. and Navarro Hernández J.A. (2009). Effect of postpartum administration of calcium salts and glucose precursors on serum calcium and ketone bodies in dairy cows. Vet. Méx. 40, 17-26.

Spears J.W. and Weiss W.P. (2008). Role of antioxidants and trace elements in health and immunity of transition dairy cows. Vet. J. 176, 70-76.

SPSS Inc. (2011). Statistical Package for Social Sciences Study. SPSS for Windows, Version 20. Chicago SPSS Inc.

Stranges S., Navas-Acien A., Rayman M.P. and Guallar E. (2010). Selenium status and cardiometabolic health: state of the evidence. Nutr. Metab. Cardiovasc. 20, 754-760.

Voyvoda H. and Erdogan H. (2010). Use of a hand-held meter for detecting subclinical ketosis in dairy cows. Res. Vet. Sci. 9(3), 344-351.

Wang Y.M., Wang J.H., Wang C., Wang J.K., Chen B., Liu J.X. and Guo F.C. (2010). Effect of dietary antioxidant and energy density on performance and anti-oxidative status of transition cows. Asian-Australasian J. Anim. Sci. 23(10), 1299-1307.

Xu C. and Wang Z. (2008). Comparative proteomic analysis of livers from ketotic cows. Vet. Res. Commun. 32, 263-273.

Zhang Z.G., Li X.B., Gao L., Li Y.F., Liu G.W., Wang H.B. and Wang Z. (2011). Serum antioxidant capacity of dairy cows with subclinical ketosis. Vet. Record. 168(1), 22-27.

Zhang Z.G., Xue J.D., Gao R.F., Liu J.Y., Wang J.G., Yao C.Y. and Wang Z. (2013). Evaluation of the difference of L-selectin, tumor necrosis factor-α and sialic acid concentration in dairy cows with subclinical ketosis and without subclinical ketosis. Pakistan Vet. J. 33(2), 225-228.