ارتباط بین وزن بدن، صفات بیضه و اندازه گیری خطی بدن بزهای نر سوکوتوی قرمز تغذیه شده با سطوح متفاوت پودر برگ سابار (Guiera senegalensis)
Subject Areas : Camelآ.آ ابراهیم 1 , ج. الییو 2 , ب. باباندی 3 , یو. ابراهیم 4 , آ. ب. امین 5
1 - Department of Animal Science, Federal University, Dutse P.M.B. 7156, Jigawa State, Nigeria
2 - Department of Animal Science, University of Maiduguri, P.M.B. 1056, Borno State, Maiduguri, Nigeria
3 - Department of Animal Science, Kano University of Science and Technology, Wudil, P.M.B. 3244, Kano State, Nigeria
4 - Department of Animal Science, Kano University of Science and Technology, Wudil, P.M.B. 3244, Kano State, Nigeria
5 - Department of Animal Science, Federal University, Dutse P.M.B. 7156, Jigawa State, Nigeria
Keywords: سابارا, اندازه گیری های بدنی, بزهای سوکوتوی قرمز, محیط کیسه بیضه,
Abstract :
این مطالعه برای بررسی اثر پودر برگ ساباراروی وزن بدن، صفات بیضه و اندازه گیری های خطی بدن انجام شد. وزن بدن، ارتفاع جدوگاه، طول بدن، محیط قفسه سینه، محیط پیرامونی بیضه و طول بیضه در بزهای نر سوکوتوی قرمز اندازه گیری شد. بزها در یک طرح کاملاً تصادفی در چهار تیمار و تکرار توزی شدند. پودر برگ سابارا در غلظت های 0، 10، 20 و 30 درصد به ترتیب در تیمارهای 1، 2، 3 و 4 به بزهای نر تغذیه شدند. بزهای نر تغذیه شده با پودر برگ سابارا افزایش وزن بهتری را از خود در مقایسه با گروه کنترل نشان دادند (05/0>P). طول بدن، ارتفاع جدوگاه و محیط پیرامونی بیضه تماماً با سطوح پودر برگ سابارا افزایش یافت. اگرچه بزهای نر تغذیه شده با 20 درصد پودر برگ سابارا سنگین وزن تر بودند، ولی محیط قفسه سینه و طول بیضه توسط تیمارهای جیره ای تاثیر نپذیرفت. تمامی همبستگیهای بین اندازه گیریهای بدن و بیضه مثبت و معنی دار بودند (01/0>P). بالاترین ضریب همبستگی بین محیط پیرامونی بیضه و وزن بدن یافت شد. می توان نتیجهگیری کرد که استفاده از پودر برگ سابارا در سطوح 30-20 درصدی عملکرد رشدی بالاتری را برمبنای اندازه گیری های بدنی و بیضه بدون هیچ اثر منفی روی عملکرد تولید می کند. تحقیق بیشتری برای آزمون باروری قوچ های تغذیه شده با پودر برگ سابارا نیاز است.
Baldassarre H. and Karatzas C.N. (2004). Advanced assisted reproduction technologies (ART) in goats. Anim. Reprod. Sci. 82, 255-266.
Ball G.D., Leibried M.L., Ax R.L. and First N.L. (1984). Maturation and fertilization of bovine oocytes in vitro. J. Dairy Sci. 67, 2775-2785.
Brackett B.G., Bousquet D., Boice M.L., Donawick W.J., Evans J.F. and Dressel M.A. (1982). Normal development following in vitro fertilization in the cow. Biol. Reprod. 27, 147-158.
Carolon C., Monaghan P., Mehmood A., Lonergan P., Gallagher M. and Gordon I. (1992). Slicing of bovine ovaries as a means of oocyte recovery. J. Reprod. Fertil. 9, 51-52.
Danilda H. (2000). Technical aspect of in vitro embryo production. Duran Embryo Biotechnology Laboratory, Philippine Carabao Center, National Headquarters abd Gene Pool Munoz, Nueva Ecija 3120 Phillipine.
De S.V., Ahmed A.M., Martino A. and Cognie Y. (1992). In vitro maturation and fertilization of goat oocytes. Theriogenology. 37, 1049-60.
FAO. (2003). Food and Agriculture Organization of United Nations, Rome, Italy.
Ferdous J. (2006). Collection, grading and evaluation of goat cumulus-oocyte-complexes (COCs) in view of in vitro maturation, fertilization and culture. MS Thesis. Dep. Anim. Breed. Genetic.Bangladesh Agricultural Univ., Mymensingh.
Fuki Y. and Ono H. (1989). Effect of sera, hormones and granulosa cells added to culture media for in vitro maturation, fertilization, cleavage and development of bovine oocytes. J. Reprod. Fertil. 86, 501-506.
Ge-Li JunL.Q., Gao-Jun Feng C.A.Q. and Zheng Xiao Feng R.R. (2009). Effect of semen quality on in vitro production of porcine embryos. Act. Agric. Shangha. 25(3), 6-9.
Hafez E.S.E. (1993). Reproduction in Farm Animals. Lea and Febriger. Philadelphia.
Holtz W. (2005). Recent developments in assisted reproduction in goats. Small Rum. Res. 60, 95-110.
Hoque S.A.M. (2009). Effect of collection techniques and goat follicular fluid onin vitro maturation and fertilization of oocytes. MS Thesis. Dep. Anim. Breed. Genetic. Bangladesh Agricultural Univ., Mymensingh.
Islam M.R., Khandoker M.A.M.Y., Afroz S., Rahman M.G.M. and Khan R.I. (2007). Qualitative and quantitative analysis of goat ovaries, follicles and oocytes in view of in vitro production of embryos. J. Zhe. Univ. 8, 465-469.
KhandokerM.A.M.Y., Imai K., Takahashi T. and Hashizume K. (2001). Role of gelatinase on follicular atresia in the bovine ovary. Biol. Reprod. 65, 720-732.
Mondal A., Khandoker M.A.M.Y., Rahman A.H.M.S., Apu A.S. and Pervage S. (2008). In vitro production of goat embryos. Bang. J. Anim. Sci. 37, 1-9.
Pawshe C.H., Totey S.M. and Jain S.K. (1994). A comparison of three methods of recovery of goat oocytes for in vitro maturation and fertilization. Theriogenology. 42, 117-125.
Rho G.J., Hahnel A.C. and Betteridge K.J. (2001). Comparisons of oocyte maturation and of three methods of sperm preparation for their effects on the production of goat embryos in vitro. Theriogenology. 56, 503-516.
SAS. (1998). User’s guide. SAS Institute Inc. Version 6.12. Cary. NC. USA.
Silva M.A.C., Carnevale E.M., MacLellan L.J., Preis K.A., Leao K.M. and Squires E.L. (2002). Use of fresh, cooled and frozen semen during gamete intrafallopian transfer in mares. Theriogenology. 58, 763-766.
Wang Z.G., Xu Z.R. and Yu S.D. (2007). Effects of oocyte collection techniques and maturation media on in vitro maturation and subsequent embryo development in Boer goat. Czech J. Anim. Sci. 52, 21-25.
Wani N.A., Wani G.M., Khan M.Z. and Salahudin S. (2000). Effect of oocyte harvesting techniques on in vitro maturation and in vitro fertilization in sheep. Small Rumi. Res. 36, 63-67.
Webb R., Campbell B.K., Garveric H.A. and Gong J.G. (1999). Molecular mechanisms regulating follicular recruitment and selection. J. Reprod. Fert. 45, 123-126.