تأثیر روش شیردوشی با اکسی ‌توسین بر عملکرد شیردهی و طول دوره شیردهی گوسفند

Subject Areas : Camel

M.  Nezamidoust ¹ (Arazdam Company, West Azarbaijan, Poldasht, Iran)
S.  Razzaghzadeh ² (Agriculture and Natural Resources Research Center, West Azerbaidjan, Urmia, Iran)
E.  Ezati ³ (Agriculture Jihad Organization of West Azerbaidjan, Urmia, Iran)
R.  Ghorbani ⁴ (Agriculture Jihad Organization of West Azerbaidjan, Urmia, Iran)

Received: 2014-05-25 Accepted : 2014-06-30 Published : 2015-03-01

Keywords: تولید شیر, ترکیبات شیر, طول دوره شیردهی, تداوم شیردهی, گوسفند ماکوئی, روش اکسی- توسین,

Abstract :

برآورد میزان بازده شیر با استفاده از یک روش دقیق جهت سنجش نیازهای تغذیه‌ای، ارزیابی پتانسیل ژنتیکی، رشد و زنده مانی بره، تصمیم‌گیری‌های مدیریتی و بهبود صفات عملکردی گله گوسفند ضروری است. تزریق اکسی توسین جهت تخمین میزان ترشح شیر در گوسفند استفاده می‌شود. اکسی توسن یک هورمون عصبی که در سیستم هیپوتالاموس-هیپوفیز پسین تولید شده و در پاسخ به تحریک نوک پستان به داخل خون آزاد می‌شود. اکسی توسین دارای اثر گالاکتوپوئتیک و با تأثیر بر فرایند خروج شیر از طریق فعالیت ترشحی و انقباض سلول‌های مایواپتلیال نقش مهمی در شیردهی بازی می‌کند. جهت بررسی اثر تزریق اکسی‌ توسین بر بازده شیرده، ترکیبات شیر و طول دوره شیردهی میش‌ها در کل طول دوره شیردهی، یکصد رأس گوسفند نژاد ماکوئی با زایش و پرورش یک بره به دو تیمار، گروه 1 (شیردوشی و تخلیه کامل پستان با دست بعد از تزریق عضلانی 5/2 واحد بین المللی اکسی توسین) گروه 2 (شیردوشی و تخلیه کامل پستان با دست) اختصاص یافتند. داده‌ها از روز چهاردم بعد از زایش با فاصله دو هفته‌ای در میان رکورد برداری شدند. گرو دریافت کننده اکسی توسین به طور معنی‌داری میانگین شیر تولیدی روزانه (3/562 درمقابل 4/301 گرم) و مقدار کل شیر (6/93 درمقابل 5/38 کیلوگرم) بیشتری در مقایسه با گروه شاهد تولید کردند (05/0>P). طول دوره شیردهی به ترتیب 7/145 روز برای گروه اکسی توسین و 2/115 روز برای گروه شاهد بود (038/0=P). تزریق اکسی توسین بازده پیک شیر و تداوم شیردهی میش‌ها را افزایش داد (05/0>P). در حالیکه زمان پیک کوتاه‌تر (1/34 درمقابل 2/39) برای گروه اکسی توسین مشاهده شد (043/0=P). استفاده از اکسی توسین درصد چربی شیر (73/6 درمقابل 86/5) را در مقایسه با میش‌های گروه شاهد افزایش داد (029/0=P). اما با تزریق اکسی توسین هیچ تفاوتی در درصد پروتئین و لاکتوز شیر مشاهده نشد (05/0>P). روند صعودی ممانعت ازخروج شیر سرتاسر دوره شیردهی به دنبال دوره منحصراً شیرخواری و سپس شیر‌دوشی با دست، نیاز به اکسی توسین را جهت نگهداری سلول‌های پستان و تداوم شیردهی در میش‌ها مستلزم می‌نماید و تأیید می‌کند که اکسی توسین با غلبه بر مکانیسم‌های پس خور منفی حاصل از شیر در اطراف آلوئل و با افزایش انتقال وزیکول‌های ترشحی داخل سلولی و انقباض سلول‌های مایواپتلیال، مقدار تولید شیر و طول دوره شیردهی میش‌ها را افزایش می‌دهد که یک تکنیک مفید جهت تضمین خروج شیر آلوئلی و تخلیه نرمال شیر از محفظه سیسترن می‌باشد.

References:

Aboul-Naga A.M., El-Shobkshy A.S. and Moustafa M.A. (1981). Milk production from subtropical non-dairy sheep. 2. Method of measuring. J. Agric. Sci. 79, 303-308.
Antonic J., Tancin V., UhrincatM., Macuhová L., Macuhová J. and Jackuliaková L. (2013). The effect of exogenous oxytocin on milkability and milk composition in ewes differed in milk flow pattern. Small Rumin. Res. 113, 254-257.
Awoniyi K.A. (2003). Effect of oxytocin on milk yield of west African Dwarf (WAD) sheep. MS Thesis. Federal Univ. Agric., Nigeria.
Banda J.W., Steinbach J. and Zerfas H.P. (1992). Composition and yield of milk from non-dairy goats and sheep in Malawi. Pp. 461-483 in Proc. 1^st Biennial Conf. African Small Rumin. Res. Nairobi, ILCA, Addis Ababa Ethiopia.
Belgin O.C., Esenbuga N. and Davis E.M. (2010). Comparison of models for describing the lactation curve of Awassi, Morkaraman and Tushin sheep. Arch. Tierz. 53, 447-456.
Bencini R. (1995). Use of intramuscular oxytocin injections to measure milk output in nondairy sheep and its effect on milk composition. Australian J. Exp. Agric. 35, 563-565.
Bencini R., knight T.W. and Hartmann P.E. (2003). Secretion of milk and milk components in sheep. Australian J. Exp. Agric. 43, 529-534.
Boutinaud M., Guinard-Flament J. and Jammes H. (2004). The number of activity of mammary epithelial cells, determining factors for milk production. Reprod. Nutr. Dev. 44, 499-508.
Braidwood L.S., Braidwood R.J., Howe B., Reed C.S. and Watson P.J. (1983). Prehistoric archaeology along zagros flank. University of Chicago press, USA.
Bruckmaier R.M., Paul G., Mayer H. and Schams D. (1997). Machine milking of Ostfriesian and Lacaune dairy sheep: udder anatomy, milk ejection and milk characteristics. J. Dairy Res. 64, 163-172.
Burgoyne R.D. and Wilde C.J. (1994). Control of secretory function in mammary epithelial cells. Cell. Signal. 6, 607-616.
Capuco A., Ellis S., Hale S., Long E., Erdman R., Zhao X. and Paape M.J. (2003). Lactation persistency: insights from mammary cell proliferation studies.J. Anim. Sci. 81(3), 18-28.
Capuco A.V., Wood D.L., Baldwin R., Mcleod K. and Paape M.J. (2001). Mammary cell number, proliferation and apoptosis during a bovine lactation: relation to milk production and effect of bST. J. Dairy Sci. 84, 2177-2187.
Carretero A., Ruberte J., Caja G., Perez-Aparicio F.J., Such X., Peris S., Mansse M. and Navarro M. (1999). Study on the structure and the development of the canalicular system of the mammary gland during lactation in Manchega and Lacaune dairy sheep. Pp. 35-40 in Milking and Milk Production of Dairy Sheep and Goats. D.F. Barillet and N.P. Zervas Eds. Wageningen, Netherland.
Da Costa T.H.M., Taylor K., Ilic V. and Willaimson D.H. (1995). Regulation of milk lipid secretion: effects of oxytocin, prolactin and ionomycin on triacylglycerol release from rat mammary gland slices. Biochem. J. 308, 975-981.
Doney J.M., Peart J.N., Smith W.F. and Louda F. (1979). A consideration of the techniques for estimation of milk yield by suckled sheep and a comparison of estimates obtained by two methods in relation to the effect of breed, level of production and stage of lactation. J. Agric. Sci. 92, 123-132.
Dove H. (1988). Estimation of the intake of milk by lambs, from the turnover of deuterium or tritium labelled water. Br. J. Nutr. 60, 375-387.
FAO. (2012). Food and Agriculture Organization of the United Nations the State of Food Insecurity in the World.
Fernandez G., Alvarez P., San Primitivo F. and De la Fuente L.F. (1995). Factors affecting variation of udder traits of dairy ewes. J. Dairy Sci. 78, 842-849.
Fernandez N., Balasch S., Pérez I., Rodríguez M. and Peris C. (2013). Milk yield estimation during suckling using the double oxytocin injection-milking and the double weighing-suckling methods in dairy goats. Small Rumin. Res. 112, 181-185.
Geenty K.G. (2010). Lactation and lamb growth. Pp. 259-276 in International Sheep and Wool Handbook. D. Cottle, Ed. Nottingham University press, United Kingdom.
Gorewit R.C., Svennersten K., Butler W.R. and Uvnas-Moberg K. (1992). Endocrine responses in cows milked by hand and machine. J. Dairy Sci. 75, 443-448.
Haenlein G.F.W. (2001). Past, present and future perspectives of small ruminant dairy research. J. Dairy Sci. 84, 2097-2115.
Heesom K.J., Souza P.F., Ilic V. and Williamson D.H. (1992). Chain-length dependency of interactions of medium-chain fatty acids with glucose metabolism in acini isolated from lactating rat mammary glands. A putative feed-back to control milk lipid synthesis from glucose. Biochem. J.  281, 273-278.
Hernandez L.L., Stiening C.M., Wheelock J.B., Baumgard L.H., Parkhurst A.M. and Collier R.J. (2008). Evaluation of serotonin as a feedback inhibitor of lactation in the bovine. J. Dairy Sci. 91, 1834-1844.
Hesse B. (1978). Evidence for husbandry from the early neolithic site of Ganj Dareh in western Iran. Ph D. Thesis. Columbia Univ., USA.
ICAR. (2010). International Committee for Animal Recording. Guidelines Approved by the General Assembly held in Cork, Ireand.
Iniguez L., Hilali M., Thomas D.L. and Jesry G. (2009). Udder measurements and milk production in two Awassi sheep genotypes and their crosses. J. Dairy Sci. 92, 4613-4620.
Keskin I. and Dag B. (2006). Comparison of different mathematical models for describing the complete lactation of Akkaraman ewes in Turkey. Asian-australas J. Anim. Sci. 19, 1551-1555.
Kuchtík J., Šustová K., Urban T. and Zapletal D. (2008). Effect of the stage of lactation on milk composition, its properties and the quality of rennet curdling in east Friesian ewes. Czech J. Anim. Sci. 53, 55-63.
Lefcourt A.M. and Akers R.M. (1983). Is oxytocin really necessary for efficient milk removal in dairy cows? J. Dairy Sci. 66, 2251-2259.
Lollivier V., Guinard-Flament J., Ollivier-Bousquet M. and Marnet P.G. (2002). Oxytocin and milk removal: two important sources of variation in milk production and milk quality during and between milkings. Reprod. Nutr. Dev. 42, 173-186.
Lollivier V., Marnet P.G., Delpal S., Rainteau D., Achard C., Rabot A. and Ollivier-Bousquet M. (2006). Oxytocin stimulates secretory processes in lactating rabbit mammary epithelial cells. J. Physiol. 570, 125-140.
María G. and Gabiña D. (1993). Non-genetic effects on milk production of Latxa ewes. Small Rumin. Res. 12, 61-67.
Marnet P.G. and McKusik B.C. (2001). Regulation of milk ejection and milkability in small ruminants. Livest. Prod. Sci. 70, 125-133.
Marnet P.G., Negrao J.A. and Labussiere J. (1998). Oxytocin release and milk ejection parameters during milking of dairy ewes in and out natural season of lactation. Small Rumin. Res. 28, 183-191.
Morgan J., Fogarty N.M. and Nicol H. (2000). Oxytocin administration and its effect on ewe milk composition. Asian-australas J. Anim. Sci. 13, 206-208.
Novotná L., Kuchtík J., Šustová K., Zapletal D. and Filipík R. (2009). Effects of lactation stage and parity on milk yield, composition and properties of organic sheep milk. J. Appl. Anim. Res. 36, 71-76.
NRC. (2007). Nutrient Requirements of Small Ruminants: Sheep, Goats, Cervids and New World Camelids. National Academy Press, Washington, DC, USA.
Ollivier-Bousquet M. (2002). Milk lipid and protein traffic in mammary epithelial cells: joint and independent pathways. Reprod. Nutr. Dev. 42, 149-162.
Peaker M. and Taylor E. (1994). Inhibitory effect of milk fat on milk secretion in the mouse: a reexamination. Exp. Physiol. 79, 561-64.
Ploumi K., Belibasaki S. and Triantaphyllidis G. (1998). Some factors affecting daily milk yield and composition in a flock of Chios ewes. Small Rumin. Res. 28, 89-92.
Ribeiro L.C., Pérez J.R.O., Carvalho P.H.A., Fonseca e Silva F., Muniz J.A., de Oliveira Júnior J.M. and Vilela de Souza N. (2007). Effects of oxytocin on milk yield and composition of Santa Inês ewes. Rev. Brasileira Zootec. 36, 438-444.
Sapino A., Macri L., Tonda L. and Bussolati G. (1993). Oxytocin enhances myoepithelial cell differentiation and proliferation in the mouse mammary gland. Endocrinology. 133, 838-842.
SAS Institute. (2009). SAS^®/STAT Software, Release 9.1.3. SAS Institute, Inc., Cary, NC. USA.
Sharp J.A., Lefevre C. and Nicholas K.R. (2008). Lack of functional α-lactalbumin prevents involution in Cape fur seals and identifies the protein as an apoptotic milk factor in mammary gland involution. BMC Biol. 6, 48-52.
Silanikove N., Leitner G., Merin U. and Prosser C.G. (2010). Recent advances in exploiting goat’s: quality, safety and production aspects. Small Rumin. Res. 89, 110-124.
Unal N., Atasoy F., Akcapinar H., Kocak S., Yakan A., Erol H. and Ugurlu M. (2007). Milk yield measured by oxytocin plus hand milking and weigh-suckle-weigh methods in ewes originating from local crossbred in Turkey. Rev. Med. Vet. 158, 320-325.
Wagner K.U., Young W.S., Liu X., Ginns E.I., Li M., Furth P.A. and Hennighausen L. (1997). Oxytocin and milk removal are required for post-partum mammary-gland development. Genes. Funct. 1, 233-244.
Wallin L.A, Fawcett C.P. and Rosenfeld C.R. (1989). Oxytocin stimulates glucagon and insulin secretion in fetal and neonatal sheep. Endocrinology. 125, 2289-2296.
Zamiri M.J., Qotbi A. and Izadifard J. (2001) Effect of daily oxytocin injection on milk yield and lactation length in sheep. Small Rumin. Res. 40,179-185.
Zeder M.A., Bradley D.G., Emshwiller E. and Smith B. (2006). Documenting domestication: new genetic and archaeological paradigsm. University of California press, Ltd.