مقایسه اثرات ضد باکتریایی عصاره های اوکالیپتوس (Eucalyptus globules Labill) و پنیرک (Malva neglecta Wallr)
Subject Areas : Journal of Medicinal Herbs, "J. Med Herb" (Formerly known as Journal of Herbal Drugs or J. Herb Drug)مجید دوست محمدی 1 , پیمان عبداله زاده 2 , حامد علیزاده 3
1 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد زنجان، گروه میکروبیولوژی، زنجان، ایران
2 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد زنجان، باشگاه پژوهشگران جوان، زنجان، ایران
3 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد زنجان، باشگاه پژوهشگران جوان، زنجان، ایران
Keywords: پنیرک, مقاومت آنتی بیوتیکی, اوکالیپتوس, داروهای گیاهی,
Abstract :
مقدمه و هدف: نتایج مطالعات زیادی نشان می دهد که بسیاری از گیاهان می توانند بدون بروز اثرات مضر و ایجاد مقاومت های آنتی بیوتیکی در درمان بیماری های باکتریایی به کار برده شوند. اوکالیپتوس و پنیرک از گیاهان دارویی بومی ایران بوده که به علت وجود ترکیبات شیمیایی مختلف، دارای فعالیت ضد میکروبی علیه برخی از باکتری ها می باشند. هدف از این مطالعه، مقایسه اثرات ضد میکروبی گیاهان دارویی اوکالیپتوس و پنیرک بر روی باکتری های استافیلوکوکوس اورئوس، انتروکوکوس فکالیس، سالمونلا تیفی موریوم و سودوموناس آئروژینوزا می باشد..روش تحقیق: در این مطالعه ابتدا عصاره های آبی، اتانولی، استونی و کلروفرمی از برگ های خشک شده اوکالیپتوس و پنیرک تهیه شدند. سپس میزان MIC و MBC عصاره ها با روش رقت سازی و اثر وابسته به دوز عصاره ها نیز با روش انتشار چاهکی در آگار انجام گردید.نتایج و بحث: نتایج نشان دادند که عصاره های هر دو گیاه دارای فعالیت ضد میکروبی علیه باکتری های مورد آزمایش می باشند، اما اثرات ضد میکروبی انواع عصاره های اوکالیپتوس نسبت به پنیرک بیشتر است و این عصاره ها می توانند در ساخت داروهای جدید با منشا گیاهی به کار گرفته شوند.توصیه کاربردی/صنعتی: با توجه به مشاهده اثر ضد میکروبی در عصاره های اکالیپتوس و پنیرک در این مطالعه توصیه می شود پس از مطالعات انسانی، داروهای گیاهی از این گیاهان تهیه عرضه شود.
Aslangul, E., Massias, L., Meulemans, A., Chau, F., Andremont, A., Courvalin, P., Fantin, B. and Ruimy, R. 2006. Acuired gentamicin resistance by permeability impairment in Enterococcus faecalis. Antimicrob Agents Chemother., 50: 3615-21.
Bodey, G.P. and Fainstein, V. 1986. Infections of the gastrointestinal tract in the immunocompromised patient. Annu Rev Med., 37: 271-81.
Calvert, N., Stewart. W. C. and Reilly, W. J. 1998. Salmonella typhimurium DT 104 infection in people and animals in Scotland: a collaborative epidemiological study 1993-96. Vet Rec., 143 (13): 351-4.
Chambers, H. F. 1997. Methicillin resistance in staphylococci: molecular and biochemical basis and clinical implications. Clin. Microbiol. Rev., 10: 781–791.
Cowan, M. M. 1999. Plant products as antimicrobial agents. Clin. Microbiol. Rev., 12: 564-582.
Driscoll, J.A., Brody, S.L. and Kollef, M.H. 2007. The epidemiology, pathogenesis and treatment of Pseudomonas aeruginosa infections. Drugs., 67: 351-368.
Dulgar, B. and Gonuz, A. 2004. Antimicrobial activity of certain plants used in Turkish traditional medicine. Asian Journal of Plant Sciences., 3 (1): 104-107.
Igbal, A. and Beg, A.Z. 2001. Antimicrobial and phytochemical studies on 45 Indian medicinal plants against multi-drug resistant human pathogens. J Ethnopharmacol., 74 (2): 113-123.
Kluytmans, J., Van Belkum, A. and Verbrugh, H. 1997. Nasal carriage of Staphylococcus aureus: epidemiology, underlying mechanisms, and associated risks. Clin Microbial Rev., 10 (3): 505-520.
Lamb, V. A., Mayhall, C. G., Spadora, A. C., Markowitz, S. M., Farmer, J. J. and Dalton, H. P. 1984. Outbreak of Salmonella typhimurium gastroenteritis due to an imported strain resistant to ampicillin, chloramphenicol, and trimethoprim-sulfamethoxazole in a nursery. J Clin Microbiol., 20 (26): 1076-79.
Lepage, P., Bogarest, J., Nsengumuremyi, F., Van Goethem, C., Hitimana, D. G., Vandepitte, J., Butzler, J.P. and Levy, J. 1986. Metastatic focal infections due to multi-resistant Salmonella typhimurium in children: a 34 month experience in Rwanda. Eur. J. Epidemiol., 2 (2): 99-103.
Mitscher, L. A., Drake, S., Golloapudi, S. R. and Okwute, S.K. 1987. A modern look at folkloric use of anti infective agents. J Nat Prod., 50(6): 1025-1040.
Mohsen Nezhad, F., Zeighami, H., Mota, A., Sattari, M. and Yadegar, A. 2009. Antibacterial activity of Eukalyptus extracts on methicillin resistance Staphylococcus aureus. Res J Biol Sci., 4 (8): 905-908.
Moniri, R., Mosayebi, Z., Movahedian, A.H. and Mossavi, A. 2006. Increasing trend of antimicrobial drug-resistance in Pseudomonas aeruginosa causing septicemia. Iranian Journal of Public Health., 35: 58-62.
Mulyaningsih, S., Sporer, F., Zimmermann, S., Reichling, J. and Wink, M. 2010. Synergistic properties of the terpenoids aromadendrene and 1,8-cineole from the essential oil of Eucalyptus globulus against antibiotic-susceptible and antibiotic-resistant pathogens. Phytomedicine., 17(13): 1061–1066.
Rosario, R., and Beatriz, B. 2003, Antimicrobial activity of selected Peruvian medicinal plants. Journal of Ethnopharmacology., 88: 199–204.
Satish, S., Mohana, D.C., Raghavendra, M.P., And Raveesha, K.A. 2007, Antifungal activity of some plant extracts against important seed borne pathogens of Aspergillus sp. J Agr Technol., 3(1): 109-119.
Seyyednejad, M., koochak, H., Darabpour, E., and Motamedi, H. 2010. A Survey on Hibiscus rosa-sinensis, Alcea rosea L. and Malva naglecta Wallr as antimicrobial agents. Asian pacific Journal of Tropical Medicine., 351-355.
Shahidi Bonjar. 2004. Evaluation of antibacterial properties of some medicinal plants used in Iran. Journal of Ethnopharmacology., 94: 301–305.
Shale, TL., Stirk, W.A., and Staden, J.V. 2005. Variation in antibacterial and anti-inflammatory activity of different growth forms of Malva parviflora and evidence for synergism of the anti-inflammatory compounds, Journal of Ethnopharmacology., 96: 325–330.
Shopsin, B., and Kreiswirth, B. 2001. Molecular epidemiology of methicillinresistant Staphylococcus aureus. Emerg Infect Dis., 7 (2): 323-326.
Srinivasan, D., Nathan, S., Suresh, T., and Lakshmana Perumalsamy, P. 2001. Antimicrobial activity of certain Indian medicinal plants used in folkloric medicine. J Ethnopharmacol., 74: 217–220.
Tankovic, J., Mahjoubi, F., Courvalin, P., Duval, J., and Leclerco, R. 1996. Development of fluoroquinolone resistance in Enterococcus faecalis and role of mutations in the DNA gyrase gyrA gene. Antimicrob.Agents Chemother., 40(11): 2558-61.
Trujillano-Martín, I., García-Sánchez, E., Martínez, I.M., Fresnadillo, M.J., García-Sánchez, J.E., and García-Rodríguez, J.A. 1999. In vitro activities of five new antimicrobial agents againts Brucella melitensis. Int J Antimicrob Agxents., 12(2): 185-186.
Wachino, J., Doi, Y., Yamane, K., Shibata, N. ,Yagi, T., Kubota, T., et al. 2004. Nosocomial spread of ceftazidime resistant strains producing a novel class A -lactamase, GES-3, in a neonatal intensine care unite in Japan. Ant Agents and Chemother., 48:1960-1967.
Yan, J., Kasi, S., and Chuang, C. 2004. Epidemiological investigation of bloodstream infections by extended spectrum cephalospoyin resistant in a Taiwanese teaching hospital. J Clin Microbiol., 42: 3329-3332