تولید متابولیت های ثانویه با استفاده از کشت ریشه های موئین در Atropa komarovii از طریق Agrobacerium rhizogenes ATCC15835.

Subject Areas : Journal of Medicinal Herbs, "J. Med Herb" (Formerly known as Journal of Herbal Drugs or J. Herb Drug)

افیلا بنی هاشمی ¹ ( گروه بیولوزی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه ازاد اسلامی، تهران، ایران )
رمضانعلی خاوری نژاد ² ( گروه بیولوزی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه ازاد اسلامی، تهران، ایران )
نرگس یاسا ³ ( گروه فارماکوگنوزی، دانشکده داروسازی، دانشگاه تهران علوم پزشکی تهران، تهران، ایران )
فرزانه نجفی ⁴ ( گروه علوم گیاهی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه خوارزمی، تهران، ایران )

Received: 2016-07-24 Accepted : 2016-12-16 Published : 2017-03-21

Keywords: Atropa komarovii, گیاه دارویی - rolB - تراریختی - تروپان آلکالوئید,

Abstract :

هدف و پیش زمینه: کشت ریشه های موئین روش جدید و سیستمی پایدار بافتی می باشد که برای دخیره نمودن انواع سلول های تخصص یافته که در سنتز و نگهداری مولکول های فعال ثانویه و همچنین نقش مهمی در تحقیق آلکالوئیدها در کشت بافت ایفا می کند.روش کار:برگ های Atropa komarovii خراش داده شدو توسط باکتری گرم منفی Agrobacterium rhizogenes ATCC15834 آلوده گردید. بعد از سه هفته ریشه های تراریخت و ریشه های شاهد بدون آلودگی ظاهر شدند و برای تصدیق تراریختی و انتفال ناحیه T-DNA از پلاسمید Ri به ژنوم گیاه تکثیر ناحیه ژن rol B توسطPCR صورت گرفت سپس سنتز دو تروپان آلکالوئید اسکوپولامین (هیوسین) و اتروپین (هیوسیامین) در ریشه های موئین و ریشه شاهد و برگ و ریشه حاصل از رشد گیاهچه توسط HPLC ارزیابی گردید. بحث و نتایج:طلاعات بیان می دارد که تمام ریشه های تراریخت شده حضور ژن rol B 500kbp را نشان دادند. محتوای اسکوپولامین در ریشه های موئین نسبت به ریشه های شاهد به طور قابل ملاحظه ای بالاتر یود و بیشترین میزان آتروپین (هیوسیامین) در ریشه های شاهد دیده شد.بررسی FW,DW و طول ریشه در دو تیمار ریشه موئین و شاهد نشان داد که میزان وزن تر و وزن خشک همچنین طول ریشه در ریشه های موئین بیشتر یود.توصیه کاربردی: تحقیق حاضر نشان می دهد که امروزه در دنیا تولید متابولیت های ثانویه از گیاهان دارویی بسیار قابل توجه بوده و کشت ریشه های موئین روش مفید برای تولید تروپان آلکالوئیدها در تیره سیب زمینی می باشد.

References:

Akramian, M., Fakhrtabatabaei, S. and Mirmasoumi, M. 2008. Virulence of different of Agrobacteriumrhizogenes on genetic transformation of four Hyoscyamusspecies. Agriculture and Enviroment Science, 3(5): 759-763.

Ashtiania, F. and Sefidkon, F. 2011. Tropane alkaloids of Atropa belladonna L. and Atropa acuminate Royle ex Miers plants. Journal of Medicine Plant Research, 5(29): 6515-6522.

Bensaddek, L., and Villarreal, M.L. 2008. Induction and growth of hairy roots for the production of medicinal compounds. Electronic Journal of Integrative Biosciences, 3(1): 2-9.

Bulgakov, V.P, Tchernoded, G.K., Ischenko, M., Khodakovskaya, N.P., Glazunov, M.V., Radchenko, V.P., Zvereva, S.V., Fedoreyev, E.V. and Zhuravlev, Y. N. 2002. Effect of salicylic acid, methyl jasmonate, ethephon and cantharidin on antheraquinone production by Rubiacordifolia callus caltures transformed with the rolB and rolC genes. Journal of Biotechnology, 97(3): 213-221.

Dechuaux, C., and Conti, M.B. 2005. A strategy for over accumulation of scopolamine in Daturainnoxia hairy root culture. Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica, 47(1): 101-107. 

Doyle, J.J. and Doyle J. L. 1987. A rapid DNA isolation procedure for small amount of fresh leaf tissue. Phytochemistry, 5: 574-555.

Giri, M. and Narasu, L. 2000. Transgenic hairy roots: recent trends and applications. Biotechnology Advances, 18(1): 1-22.

Hank, H., I. Laszlo, and I. Balvanyos. 2003. Effect of magnesium on the growth and alkaloid production of hairy root cultures. Acta Horticultureae, 597: 271-274.

 Hashimoto, T., Yan, D. and Yamada, Y. 1993. Production of tropane alkaloids in genetically engineered root cultures. Phytochemistry, 32(3):713-718.

Hu, Z.B. and Du, M. 2006. Hairy root and application in plant genetic engineering. Journal of integrative plant Biology, 48: 121-127.

Khatodia, S., Biswas K., and Bhatotia, K. 2013. Induction and establishment of hairy root culture of Solanum xanthocarpum using Agrobacterium rhizogenes. Journal of Bioscience, 1: 59-63.

Kim, Y.K., Xu, H., Park, W., Park, N., Lee, N., Lee, S. and Park, S. 2010. Genetic transformation of buck wheat (Fagopyrum esculentum M.) with Agrobacterium rhizogenes and production of rutin in transformed root culture. Australian Journal of Crop Science, 4: 485- 490.

Lanoue, A., Conti, M., Dechaux, C., Laberche, J., Christen, P. and Norreel, S. 2004. Comparison of growth properties, alkaloid production and water uptake of two selected Datura hairy root line. Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica, 46: 185-192.

Liu, X., Yang, C., Chen, M., Li, M., Liao, Z. and Tang, K. 2010. Promoting scopolamine accumulation in transgenic plants of Atropa belladonna generated from hairy roots with over expression of pmt and h6h gene. Journal of Medicinal Plants Research, 4(17): 1708-1713.

Marchey, A., Georgiev, V., Ivanov, I. and Pavlov, A. 2012. Cultivation of diploid and tetraploid hairy roots of Daturastramonium L. in stirred tank bioreactor for tropane alkaloids production. Journal of Bioscience and Biotechnology, 1(3): 211-216. 

Murashige, T. and Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue cultures. Plant Physiology, 15(3): 473- 479.

Nikravesh, F., Khavari-Nejad, R.A.,  Rahimian, H. and Fahimi, H. 2012. Study of antioxidant enzymes activity and isozymes pattern in hairy roots and reganarated plants in Nicotianatabacum. Acta Physiologiae Plantarum, 34: 419-427.

Samet, E., Piri, K., Keyhanfar, H. M. and Hasanloo, T. 2012. Influence of jasmonic acids, yeast extract and salicylic acid on growth and accumulation of hyosciamine and scopolamine in hairy root cultures of Atropa belladonna L. International Journal of agriculture Research and Review, 2(4): 403-409.

Sevón, N. and Oksman-Caldentey, I. 2002. Agrobacterium rhizogenes mediated transformation: root cultures as a source of alkaloids. Planta Medicine, 68(10): 859-868.

Song, G., and Walworth, A. 2013. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of Atropa belladonna. Plant Cell Tissue Organ Culture, 115(1): 2-9.

Suzuki, K., Yan, D.J., Chen, X., Yamada, Y. and Hashimoto, T. 1999. An Atropa belladonnahyoscyamine 6β-hydroxylase gene is differentially expressed in the root pericycle and anthers. Plant Molecular Biology, 40(1): 141-152.

Vasdekis, N., Barres, M., Ravelo, A. and Zarate, R. 2008. Effect of elicitors on tropane alkaloids and gene expression in Atropabaetica transgenic hairy roots. Journal of Natural Products, 12: 2026-2031.

Widorento, W., Pervitazari, R., Aramingtayas, E., Utomo, E., and Wardiati, T. 2012. Genetic transformation of tomato (LycopersicumesculentumMill.) with Agrobacterium rhizogenesand production of 1ycopene in transformed root culture. International Research Journal of Biotechnology, 3: 158-167.

Yong, K., Hui, X., Woo, T.P., Nam, P., Sook, Y.L. and Sang, U.P. 2010. Genetic transformation of buckwheat (FagopyrumesculentumM.) with Agrobacterium rhizogenesand production of rutin in transformed root cultures. Australian Journal of Crop Science, 4(7):485-490.

Yelin, M., Tovkach, A. and Tzfira, T. 2008. Integration of Agrobacterium T-DNA in plant cells. Plant Cell Monograph, 14: 157-186.

Zarate, R., Vazdekis, N.J., Medina B., and Ravelo, A. 2006. Tailoring tropane alkaloid accumulation in transgenic hairy roots of Atropabetica by over-expressing the gene encoding hyoscyamine 6β-hydroxylase. Biotechnology Letters, 28: 1271-1277.

Zhao, B., Foster, A., Ritesh, K.C., Agblevor, A., Ritesh, K. C., John, G., and Jelekso, G. 2012. Enhanced production of the alkaloid nicotine in hairy root cultures of Nicotianatabacum L. Plant Cell Tissue Organ Culture, 113(1): 234-241.