ارزیابی الگوی مقاومت آنتیبیوتیکی و حضور ژن حدت spvR در سالمونلاهای جداشده از کبد و تخمدان گلههای مرغ تخمگذار صنعتی استان آذربایجانشرقی
الموضوعات :
امیر اللهیاری
1
(دانشآموخته دکترایحرفهای دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران.)
حسین نیک پیران
2
(استادیار گروه علومدرمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران.)
یونس انزابی
3
(استادیار گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران.
مرکزتحقیقات بیوتکنولوژی، واحدتبریز، دانشگاه آزاداسلامی، تبریز، ایران.)
الکلمات المفتاحية: مقاومت آنتیبیوتیکی, سالمونلا, مرغ تخمگذار, آذربایجانشرقی, ژنspvR,
ملخص المقالة :
عفونت با باکتری های جنس سالمونلا موجب بیماری های مزمن و حاد در طیور می گردد که می توانند باعث ایجاد خسارت اقتصادی قابل توجهی به صنعت طیور شوند. هدف از مطالعه حاضر بررسی میزان مقاومت آنتی بیوتیکی در سالمونلاهای آلودهکننده گله های مرغ تخم گذار در سطح استان آذربایجان شرقی و نیز بررسی حضور ژن حدت spvR در جدایه های مذکور بود. بدین منظور از تعداد 45 گله مشکوک به سالمونلا در مجموع تعداد 200 نمونه کبد و تخمدان اخذشده و در محیط های انتخابی و افتراقی سالمونلا کشت داده شد. پس از جداسازی باکتری سالمونلا از نمونه های مذکور، آزمایش آنتی بیوگرام بر اساس روش انتشار دیسک در آگار جهت تعیین میزان حساسیت آنتی بیوتیکی جدایه ها انجام شد. جهت بررسی حضور ژن حدت spvR در سالمونلاهای جدا شده نیز از آزمایش مولکولی واکنش زنجیره ای پلی مراز و پرایمر های اختصاصی مربوطه استفاده شد. نتایج مطالعه حاضر نشان داد که تمامی جدایه های مورد آزمایش نسبت به آنتی بیوتیک های اریترومایسین، سولتریم و تتراسایکلین مقاوم بودند. بیشترین میزان مقاومت آنتی بیوتیکی هم به ترتیب در برابر داکسی سایکلین (3/94 درصد)، دانوفلوکساسین (6/92 درصد) و فلورفنیکل (7/91 درصد) مشاهده شد. همچنین بیشترین میزان حساسیت نیز مربوط به آنتی بیوتیک های فوزباک (7/94 درصد) و انروفلوکساسین (2/74 درصد) بود. نتایج آزمایش مولکولی نیز نشان داد که ژن spvR در غالب گله های طیورتخم گذار استان آذربایجان شرقی وجود دارد (در 46/88 درصد جدایه های سالمونلا). با توجه به نتایج حاصله، لزوم پیشگیری از اشاعه سالمونلاهای آلوده کننده طیور تخم گذار در راستای بهبود صنعت پرورش طیور و نیز سلامت جوامع انسانی ضروری به نظر میرسد.
Amini, K., Salehi, T.Z., Nikbakht, G., Ranjbar, R., Amini, J. and Ashrafganjooei, S.B. (2010).
Molecular detection of invA and spv virulence genes in Salmonella enteritidis isolated from human and animals in Iran. African Journal of Microbiology Research, 4(21): 2202-2210.
• Amirmozaffari, N., Rahmani, Z. and Iesazadeh, K. (2013). Evaluation of the level of contamination with Salmonella spp. in Red Meat, Chicken, and Domestic and Industrial Eggs produced in Talesh city and assessment of their antibiotic resistance pattern, Iran. Journal of Qom University Medical Sciences, 7(5): 60-65.
• Barrow, P. and Lovell, M. (1988). The association between a large molecular mass plasmid and virulence in a strain of Salmonella pullorum. Microbiology, 134(8): 2307-2316.
• Barrow, P.A., Simpson, J.M., Lovell, M.A. and Binns, M.M. (1987). Contribution of Salmonella gallinarum large plasmid toward virulence in Fowl Typhoid. Infection and Immunity, 55(2): 388-392.
• Bygrave, A. and Gallagher, J. (1989). Transmission of Salmonella enteritidis in Poultry. Veterinary Record, 124(21): 571-571.
• Carraminana, J.J., Rota, C., Agustin, I. and Herrera, A. (2004). High prevalence of multiple resistance to antibiotics in Salmonella serovars isolated from a Poultry Slaughterhouse in Spain. Veterinary Microbiology, 104(1): 133-139.
• Ching-Lee, M.R., Katz, A.R., Sasaki, D.M. and Minette, H.P. (1991). Salmonella egg survey in Hawaii: Evidence for routine bacterial surveillance. American Journal of Public Health, 81(6): 764-766.
_||_
Amini, K., Salehi, T.Z., Nikbakht, G., Ranjbar, R., Amini, J. and Ashrafganjooei, S.B. (2010).
Molecular detection of invA and spv virulence genes in Salmonella enteritidis isolated from human and animals in Iran. African Journal of Microbiology Research, 4(21): 2202-2210.
• Amirmozaffari, N., Rahmani, Z. and Iesazadeh, K. (2013). Evaluation of the level of contamination with Salmonella spp. in Red Meat, Chicken, and Domestic and Industrial Eggs produced in Talesh city and assessment of their antibiotic resistance pattern, Iran. Journal of Qom University Medical Sciences, 7(5): 60-65.
• Barrow, P. and Lovell, M. (1988). The association between a large molecular mass plasmid and virulence in a strain of Salmonella pullorum. Microbiology, 134(8): 2307-2316.
• Barrow, P.A., Simpson, J.M., Lovell, M.A. and Binns, M.M. (1987). Contribution of Salmonella gallinarum large plasmid toward virulence in Fowl Typhoid. Infection and Immunity, 55(2): 388-392.
• Bygrave, A. and Gallagher, J. (1989). Transmission of Salmonella enteritidis in Poultry. Veterinary Record, 124(21): 571-571.
• Carraminana, J.J., Rota, C., Agustin, I. and Herrera, A. (2004). High prevalence of multiple resistance to antibiotics in Salmonella serovars isolated from a Poultry Slaughterhouse in Spain. Veterinary Microbiology, 104(1): 133-139.
• Ching-Lee, M.R., Katz, A.R., Sasaki, D.M. and Minette, H.P. (1991). Salmonella egg survey in Hawaii: Evidence for routine bacterial surveillance. American Journal of Public Health, 81(6): 764-766.