کاربرد توام پروتئازگیاهی بروملین و میدان الکترومغناطیس با فرکانس پایین((50 HZ بر آنژیوژنز در مدل حلقه آئورت موش صحرایی
الموضوعات : مجله پلاسما و نشانگرهای زیستیصفا مشتاق 1 , کاظم پریور 2 , جواد بهار ارا 3 , نسیم حیاتی 4 , محمد امین کراچیان 5
1 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه علوم و تحقیقات تهران، ایران.
2 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه علوم و تحقیقات تهران، ایران.
3 - گروه زیست شناسی. مرکز بیولوژی کاربردی تکوین جانوری، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد مشهد، مشهد، ایران.
4 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه علوم و تحقیقات تهران، ایران.
5 - گروه ژنتیک پزشکی، دانشکده علوم پزشکی، مشهد، ایران.
الکلمات المفتاحية: میدان الکترومغناطیس, بروملین, رگزایی, حلقه آئورت,
ملخص المقالة :
زمینه و هدف: رگزایی در بسیاری از فرآیندهای حیاتی نقش دارد و بسیاری از فرآیندهای رشد و نمو تحت تاثیر میدان الکترومغناطیس قرار می گیرند. پروتئاز گیاهی بروملین قادر به مهار تکثیر سلولی می باشد، در این پژوهش تجربی کاربرد توام بروملین و میدان الکترومغناطیس با فرکانس پایین بر آنژیوژنز حلقه آئورت موش صحرایی نژاد ویستار بررسی گردید. روش کار: ابتدا آئورت موش صحرایی به قطعات یک میلی لیتری برش و در ماتریکس کلاژن کشت داده شد. پس از ظاهر شدن نخستین جوانه های رگی نمونه ها به 8 گروه طبقه بندی گردیدند. گروه شاهد، شاهد آزمایشگاهی ا(تیمار با PBS)، شاهد آزمایشگاهی2 (تیمار با سیستم مولد میدان به حالت خاموش)، شاهد آزمایشگاهی 3 (تیمار باPBSو میدان الکترومغناطیس در شرایط سیستم خاموش)، گروه های تجربی 1 و 2 (تیمار با غلظت های 100 و 200 میکروگرم بر میلی لیتر بروملین)، گروه تجربی 3 (تیماربا میدان الکترومغناطیس به تنهایی با شدت 100 گؤس به مدت 2 ساعت)، گروه تجربی4 (تیمار تؤام با میدان الکترومغناطیس با شدت 100 گؤس و بروملین با غلظت 100 میکروگرم بر میلی لیتر) تقسیم بندی شدند. تعداد و طول انشعابات عروقی 24 ساعت بعداز تیمار توسط نرم افزار Image J تعیین و داده های کمی توسط نرم افزار آماری SPSS و آزمون های آماری ANOVA و TUKEY در سطح P<0.05تحلیل گردید. یافته ها: میانگین تعداد و طول انشعابات عروقی در نمونه های تیمار شده با بروملین و میدان الکترومغناطیس کاهش یافت.کاربرد توام از میدان الکترومغناطیس و بروملین باعث کاهش معنی دار میانگین تعداد و طول عروق نسبت به کاربرد هریک به تنهایی گردید. نتیجه گیری: نتایج نشان داد که بروملین دارای اثر مهاری وابسته به دوز بر رگزایی است و این تاثیر توسط هم افزایی با میدان الکترومغناطیس به طور معنی داری افزایش می یابد.
1.Baharara, J., Zahedifar, Z. (2012). The effect of low frequency electromagnetic fields on some biological activities of animals. Arak Medical University Journal (AMUJ), 15(66); 80 - 93.
2.Baharara, J., Ramezani, T. (2014). A review on angiogenesis in tumor. Journal of Cell & Tissue (JCT), 5 (1); 89-100.
3.Baharara, J., Ashraf, A., Balanejad, S., SamarehMosavi, S. (2010). The inhibitory effect of low frequency field(50HZ) on angiogenesis inchorioallantoic memberane of chick. J ZahedanUniv Med Sci, 12(2); 8-11. [Persian].
4.Balanejad, S., Parivar, K., Baharara, J., MohseniKochesfahani, H. (2010). Effect of combinned rapamycine and of low frequency electromagnetic field on angiogenesis. J. Shahrekord Univ. Med. Sci, 11(3); 70 - 6.
5.Baharara, J., Ashraf, A., Balanejad, S., Mosavi, S. (2010). The inhibitory effect of low frequency electromagnetic field (50Hz) on angiogenesis in chorioalantoic membrane of chick. Zahedan Journal Research in Medical Science, 12(2); 8-12.
6.Bin, Sh., Li-Fang, W., Wen, Sh., Liang, C. (2017). Carnosic acid and fisetin combination therapy enhances inhibition of lung cancer through apoptosis induction. International Journal Oncology. Pages; 2123-2135. https://doi.org/10.3892/ijo.2017.3970.
7.Calvente, I., Fernandez, M., Villalba, J., Olea, N., Nuñez, M. (2010). Exposure to electromagnetic fields (nonionizing radiation) and its relationship with childhood leukemia: a systematic review. Science of the Total Environment, 408(38); 3062 - 9.
8.Chobotova, K., Vernallis, A.B., Majid, F.A. (2010). Bromelain's activity and potential as an anti-cancer agent: current evidence and perspectives.Cancer Letters, 290(2); 148–156.
9.Dharma, P.T.R., Malueghaa, M., Widodob, A., Pardjianto, B. (2015). The effects of bromelain on angiogenesis, nitricoxide, andmatrix metalloproteinase-3and-9 in rats exposed to electrical burninjury. Wound Medici, 9; 5-9.
10.Ernesta, F., Ruben, B., Laura, P., Ivanek, R., Curzio, R., Gerhard, C. (2013). An immature B cell population from peripheral blood serves as surrogate marker for monitoring tumor angiogenesis and anti-angiogenic therapy in mouse models., Medici, 18(3); 327-345.
11.Kouhestanian, K., Baharara, J., Ramezani, T., Mousavi, M. (2015). Antiangiogenic effects of eugenol in chorioallantoic membrane of chick embryo. Shahid Sadoughi University of Medical Sciences, 23(4); 2109-2117.
12.Kouhestanian, K1., Baharara, J., Zafarbalanezhad, S. (2015). Feyz. Journal of Kashan University of Medical Sciences, 19(3); 197-203.
13.Mansouri, K., Mostafaie, A., MohammadiMotlagh, H. (2010). Angiogenesis and tumor biology. J Improve, KermanshahUniv Med Sci, 14(4); 315-05.
14.Motie, M., Baharara, J., Iranbakhsh, A., Ramezani, T. (2016). Synergic application effects of silver nanoparticles and low-frequency electromagnetic field on the chick embryo chorioallantoic membrane on angiogenesis. Journal of Shahid Sadoughi University of Medical Sciences, 24(4); 317-328
15.Mohammadi Motlagh, HR., Mansouri, K., Shakiba, Y., Keshevarz, M., Khodarahmi, R., Siami, A., Mostafaie, A. (2009).The effects of aqueous extract on Antiangiogenic. J Bio electromagnetics, 35(5); 390-9.
16.Mansouri, K., Mostafaie, A., MohammadiMotlagh, H. (2010). Angiogenesis and Tumor Biology. J Improve Kermanshah Univ Med, 14(4); 315-05.[in Persian]
17.Mortazaei, S., Rafieian, M., AnsarySamani, R., Shahinfard, N. (2013). Comparison of phenolic compounds concentrations and antioxidant activity of eight medicinal plants. J Rafsanjan Univ Med Sci, 12(7); 519-30 [Persian].
18.Mohr, T., Desser, L.(2011). Plant proteolytic enzyme papain abrogates angiogenic activation of human umbilical vein endothelialcells (HUVEC) in vitro. Journal of Cell & Tissue (JCT), 18(5);396-400.
19.Moshtagh, S., Baharara, J., Zafar-Balanejad, S., Ramezani, T. (2014). .Effects of saffron aqueous extract and low frequency electromagnetic field on angiogenesis on in a Wistar rat aortic ring model. Koomesh Journal, 15(4); 522–529.
20.Nicosia, R. (2009). The aortic ring model of angiogenesis: a quarter century of search and discovery. Angiogenesis Review Series. Cell Mol Med, 13(10); 4113-36.
21.Paulo, M., Karime, K. (2012). Role of angiogenesis in the pathogenesis of cancer. Cancer Treatment, 8(7); 825 - 33.
22.Ruggiero, M., Bottaro, Dp., Liguri, G., Gulisano, M., Peruzzi, B., Pacini, S. (2004). Magnetic field inhibits angiogenesis in chick embryo chorioallanto icmembrane. J Bio electromagnetics, 25(5); 390-9
23.Ramezani, R., Baharara, J. (2014). A review on angiogenesis in tumor. Journal of Cell & Tissue (JCT), 5 (1);89-100.
24.ShahrokhAbady, Kh. (2003). Evalution of cytotoxicity effect oftotal Saffrons extract on HepG2 cell line.Genet 3rd millennium, Kermanshah Univ Med, 14(1); 65-33. (Persian).
25.Xinsheng, Xu., Huixia, Lu., Huili, Lin., Xiaolu, Li., Meh, utNi., Chingjiang, Li. (2009). Aortic adventitial angiogenesisand lymphogiogenesis promote intimalinflammation and hyperplasia. Cardio vascular Patholyrgf, 18(5); 267-78.
26.Zafar Balanejad, S., Pariva, K., Baharara, J., Koochesfahani, H. (2009). The effect of kljmk; rapamycinon angiogenesis in chick chorioalantoic membrane. J Arak Univ Med Sci, 12(1); 73-80. [Persian].
