ارزیابی پارامترهای اسپرمی و سطح استرس اکسیداتیو در مردان نابارور آستنوتراتوزو اسپرمی تحت درمان با ان- استیل سیستئین
الموضوعات : مجله پلاسما و نشانگرهای زیستیراحیل جنتی فر 1 , کاظم پریور 2 , محمد حسین نصر اصفهانی 3 , نسیم حیاتی رودباری 4
1 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، گروه زیست شناسی، تهران، ایران
2 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، گروه زیست شناسی، تهران، ایران
3 - پژوهشگاه رویان، پژوهشکده زیست فناوری جهاد دانشگاهی، مرکز تحقیقات پزشکی تولید مثل، گروه زیست فناوری تولید مثل، اصفهان، ایران
4 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، گروه زیست شناسی، تهران، ایران
الکلمات المفتاحية: استرس اکسیداتیو, آستنو تراتوزو اسپرمی, ناباروری, ان- استیل سیستئین,
ملخص المقالة :
زمینه و هدف:مردان نابارور دارای سطوح بالاتری از گونه های فعال اکسیژن(ROS) نسبت به مردان بارور هستند.سطح بالایROS در اسپرم می تواند باعث اختلال در عملکرد اسپرم، آسیب DNA اسپرم و کاهش توان تولید مثلی در مردان شود. در این مطالعه اثران-استیل سیستئین(NAC) برمیزان کیفیت اسپرم، سلامت کروماتین، سطح استرس اکسیداتیو(ROS)و هم چنین ارتباط بین پارامترهای اسپرم در افرادآستنوتراتوزو اسپرمی بررسی شده است. روش کار: این مطالعه در مرکز درمان ناباروری جهاد دانشگاهی قم، انجام شد. بیماران، شامل 50 مرد نابارور مبتلا به آستنوتراتوزوسپرمی بودند که به مدت 3 ماه به صورت خوراکی(600 میلی گرم در روز)ان - استیل سیستئین دریافت کردند. پس از درمان پارامترهای اسپرم براساس سازمان بهداشت جهانی 2010، سلامت کروماتین به روش TUNL و کرومایسینA3 و میزان استرس اکسیداتیو با رنگ آمیزیH2DCFDA در اسپرم با وضعیت پیش درمان مقایسه شدند. یافتهها:بعد از درمانبا ان- استیل سیستئین، پارامتر های اسپرمی یافت(05/0>P).میزان قطعه قطعه شدن DNA و کمبود پروتامین در مقایسه با قبل از درمان، کاهش داشته است(05/0>P). سطح استرس اکسیداتیوبه طور معنا داری نسبت به قبل از درمان کاهش یافت. ارتباط معنی داری بین سطحROS ، تحرک و مورفولوژی غیر طبیعی در اسپرم ها مشاهده شد(05/0>P). نتیجهگیری:تجویز ان – استیل سیستئین می تواند پارامترهای اسپرم و وضعیت اکسید کننده / آنتی اکسیدانی را در مردان نابارور بهبود بخشد.
1.Agarwal, A., Said, TM. (2003). Role of sperm chromatin abnormalities and DNA damage in male infertility. Human reproduction update, 9(4); 331-45.
2.Agarwal, A., Saleh, RA., Bedaiwy, MA. (2003). Role of reactive oxygen species in the pathophysiology of human reproduction. Fertility and sterility, 79(4); 829-43.
3.Agarwal, A., Sekhon, LH. (2010). The role of antioxidant therapy in the treatment of male infertility. Human Fertility, 13(4); 217-25.
4.Aruoma, OI., Halliwell, B., Hoey, BM., Butler, J. (1989). The antioxidant action of N-acetylcysteine: its reaction with hydrogen peroxide, hydroxyl radical, superoxide, and hypochlorous acid. Free Radical Biology and Medicine, 6(6); 593-7.
5.Barekat, F., Tavalaee, M., Deemeh, MR., Bahreinian, M., Azadi, L., Abbasi, H. (2016). A preliminary study: N-acetyl-L-cysteine improves semen quality following varicocelectomy. International Journal of Fertility & Sterility, 10(1); 120.
6.Bizzaro, D., Manicardi, GC., Bianchi, P., Bianchi, U., Mariethoz, E., Sakkas, D. (1998). In-situ competition between protamine and fluorochromes for sperm DNA. Molecular human reproduction. 1998;4(2):127-32.
7.Ciftci, H., Verit, A., Savas, M., Yeni, E., Erel, O. (2009). Effects of N-acetylcysteine on semen parameters and oxidative/antioxidant status. Urology, 74(1); 73-6.
8.Cooper, TG., Noonan, E., Von Eckardstein, S., Auger, J., Baker, H., Behre, HM. (2010). World health organization reference values for human semen characteristics. Human reproduction update, 16(3); 231-45.
9.De Vries, N., De Flora, S. (1993). N‐acetyl‐l‐cysteine. Journal of Cellular Biochemistry, 53(S17F); 270-7.
10.Dodd, S., Dean, O., Copolov, DL., Malhi, GS., Berk, M. (2008). N-acetylcysteine for antioxidant therapy: pharmacology and clinical utility. Expert Opinion on Biological Therapy, 8(12); 1955-62.
11.Gharagozloo, P., Aitken, RJ. (2011). The role of sperm oxidative stress in male infertility and the significance of oral antioxidant therapy. Human Reproduction, 26(7); 1628-40.
12.Halliwell, B., Gutteridge, JM. (2014). Free radicals in biology and medicine: Oxford University Press, USA.
13.Kelly, GS. (1998). Clinical applications of N-acetylcysteine. Alternative medicine review: a journal of clinical therapeutic, 3(2); 114-27.
14.Lanzafame, FM., La Vignera, S., Vicari, E., Calogero, AE. (2009). Oxidative stress and medical antioxidant treatment in male infertility. Reproductive Biomedicine Online, 19(5); 638-59.
15.Lopes, S., Jurisicova, A., Sun, J-G., Casper, RF. (1998). Reactive oxygen species: potential cause for DNA fragmentation in human spermatozoa. Human Reproduction (Oxford, England), 13(4); 896-900.
16.Nasr‐Esfahani, MH., Abasi, H., Razavi, S., Ashrafi, S., Tavalaee, M. (2009). Varicocelectomy: semen parameters and protamine deficiency. International journal of andrology, 32(2); 115-22.
17.Ni, K., Steger, K., Yang, H., Wang, H., Hu, K., Chen, B. (2015). 295 Sperm protamine mRNA ratio and DNA fragmentation index represent reliable clinical biomarkers for men with varicocele after microsurgical varicocele ligation. European Urology Supplements, 14(2); e295.
18.Oeda, T., Henkel, R., Ohmori, H., Schill, WB. (1997). Scavenging effect of N‐acetyl‐L‐cysteine against reactive oxygen species in human semen: a possible therapeutic modality for male factor infertility? Andrologia, 29(3); 125-31.
19.Razavi, S., Nasr‐Esfahani, MH., Mardani, M., Mafi, A., Moghdam, A. (2003). Effect of human sperm chromatin anomalies on fertilization outcome post‐ICSI. Andrologia, 35(4); 238-43.
20.Safarinejad, MR., Safarinejad, S. (2009). Efficacy of selenium and/or N-acetyl-cysteine for improving semen parameters in infertile men: a double-blind, placebo controlled, randomized study. The Journal of Urology, 181(2); 741-51.
21.Showell, MG., Mackenzie‐Proctor, R., Brown, J., Yazdani, A., Stankiewicz, MT., Hart, RJ. (2014). Antioxidants for male subfertility. Cochrane Database of Systematic Reviews, 12; 56-60.
22.Tremellen, K. (2008). Oxidative stress and male infertility—a clinical perspective. Human reproduction update,14(3);243-58.
23.Tvrdá, E., Kňažická, Z., Bárdos, L., Massányi, P., Lukáč, N. (2011). Impact of oxidative stress on male fertility—a review. Acta Veterinaria Hungarica, 59(4); 465-84.
_||_