بررسی تاثیر تنش کمبود آب و سالیسیلیک اسید بر برخی صفات رشدی، رنگیزه‌های فتوسنتزی و عملکرد اسانس نعناع فلفلی (Mentha piperita L.)
الموضوعات :سعید فتاحی سیاه‌کمری 1 , حمیده آزاد قوجه‌بیگلو 2 , علی صالحی ساردویی 3 , افشار فلاح‌ایمانی 4 , خیرالله بابایی 5
1 - دانشجوی دکتری، گروه علوم باغبانی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
2 - کارشناس‌ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی زابل، زابل، ایران
3 - گروه اموزشی علوم باغبانی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرکان
4 - دانشجوی دکتری، گروه علوم باغبانی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد اراک، اراک، ایران
5 - دانشجوی دکتری، گروه علوم باغبانی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
الکلمات المفتاحية: تنش کمبود آب, عملکرد اسانس, اورتو هیدروکسی بنزوئیک اسید, صفات رویشی,
ملخص المقالة :
به‌منظور بررسی تأثیر سالیسیلیک اسید بر صفات رشدی، رنگیزه‌های فتوسنتزی و میزان اسانس نعناع فلفلی تحت تنش کمبود آب، آزمایشی به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوک های کامل تصادفی در سه تکرار انجام شد. عوامل آزمایشی شامل تنش کمبود آب در چهار سطح (90 (شاهد)، 75، 45 و 25 درصد ظرفیت زراعی) و سالیسیلیک اسید در دو سطح (صفر (شاهد) و 60 پی پی ام) بود. صفات مورد ارزیابی شامل ارتفاع بوته، تعداد شاخه فرعی، طول شاخه فرعی، تعداد گره، وزن تر و خشک بوته، وزن تر و خشک ریشه، محتوای کلروفیل a، b، کل و کاروتنوئیدها، درصد و عملکرد اسانس بود. . نتایج حاصل از این آزمایش نشان داد که اثر تنش خشکی بر صفات مورد مطالعه در سطح احتمال آماری یک درصد معنی‌دار بود. اثر متقابل تنش خشکی در اسید سالیسیلیک برای صفات طول شاخه فرعی، وزن تر و خشک بوته، محتوای کلروفیل a، b، و کل، درصد و عملکرد اسانس معنی‌دار بود. تنش کمبود آب موجب کاهش تمامی صفات به جز وزن تر و خشک ریشه شد و کاربرد اسید سالیسیلیک موجب کاهش اثرات تنش کمبود آب شده به‌طوری که بالاترین مقدار این صفات از 60 پی پی ام اسید سالیسیلیک به‌دست آمد. با توجه به اثرات متقابل بیشترین مقدار درصد و عملکرد اسانس از تیمار90 درصد ظرفیت زراعی و کاربرد اسید سالیسیلیک حاصل گردید. در مجموع کاربرد این هورمون سبب بهبود خصوصیات کمی و کیفی نعناع فلفلی تحت تنش کمبود آب گردید.
منابع
1) Alsammarraie, F.K., Wang, W., Zhou, P., Mustapha, A. and Lin, M. 2018. Green synthesis of silver nanoparticles using turmeric extracts and investigation of their antibacterial activities. Colloids Surfaces B: Biointerfaces. 171:398–405.
2) Cui, Y., Zhao, Y., Tian, Y., Zhang, W., Lü, X. and Jiang, X. 2012. The molecular mechanism of action of bactericidal gold nanoparticles on Escherichia coli. Biomaterials. 33(7): 2327–33.
3) Elamawi, R.M., Al-Harbi, R.E. and Hendi, A.A. 2018. Biosynthesis and characterization of silver nanoparticles using Trichoderma longibrachiatum and their effect on phytopathogenic fungi. Egyptian Journal of Biological Pest Control. 28(1):28.
4) Ghorbani, A., Razavi, S.M., Ghasemi Omran, V.O. and Pirdashti, H. 2018a. Piriformospora indica alleviates salinity by boosting redox poise and antioxidative potential of tomato. Russian Journal of Plant Physiology. 65(6):898–907
5) Ghorbani, A., Razavi, S.M., Ghasemi Omran, V.O. and Pirdashti, H. 2018b. Piriformospora indica inoculation alleviates the adverse effect of NaCl stress on growth, gas exchange and chlorophyll fluorescence in tomato (Solanum lycopersicum L.). Plant Biology. 20(4):729–736
6) Guilger, M., Pasquoto-Stigliani, T., Bilesky-Jose, N., Grillo, R., Abhilash, P.C. and Fraceto, L.F. 2017. Biogenic silver nanoparticles based on trichoderma harzianum: synthesis, characterization, toxicity evaluation and biological activity. Scientific Reports. 7:44421.
7) Kathiresan, K., Manivannan, S., Nabeel, M.A. and Dhivya, B. 2009. Studies on silver nanoparticles synthesized by a marine fungus, Penicillium fellutanum isolated from coastal mangrove sediment. Colloids Surfaces B: Biointerfaces. 71(1):133–7.
8) Kittel C. Introduction to Solid State Physics. 8 edition. Hoboken, NJ: Wiley; 2004. 704 p.
9) Li, G., He, D., Qian, Y., Guan, B., Gao, S. and Cui, Y. 2011. Fungus-mediated green synthesis of silver nanoparticles using aspergillus terreus. International Journal of Molecular Sciences. 13(1):466-476.
10) Logeswari, P., Silambarasan, S. and Abraham, J. 2013. Ecofriendly synthesis of silver nanoparticles from commercially available plant powders and their antibacterial properties. Scientia Iranica. 20(3):1049–54.
11) Logeswari, P., Silambarasan, S. and Abraham, J. 2015. Synthesis of silver nanoparticles using plants extract and analysis of their antimicrobial property. Journal of Saudi Chemical Society. 19(3):311-317.
12) Longoria, E., Vilchis-Nestor, A.R. and Avalos-Borja, M. 2011. Biosynthesis of silver, gold and bimetallic nanoparticles using the filamentous fungus Neurospora crassa. Colloids Surfaces B: Biointerfaces. 83(1):42–8.
13) Makarov, V.V., Love, A.J., Sinitsyna, O.V., Makarova, S.S., Yaminsky, I.V. and Taliansky, M.E. 2014. Green Nanotechnologies: Synthesis of Metal Nanoparticles Using Plants. Acta Naturae. 6(1):35–44.
14) Mishra, A., Tripathy, S.K., Wahab, R., Jeong, S.H., Hwang, I. and Yang, Y.B. 2011. Microbial synthesis of gold nanoparticles using the fungus Penicillium brevicompactum and their cytotoxic effects against mouse mayo blast cancer C 2 C 12 cells. Applied Microbiology and Biotechnology. 92(3):617–630.
15) Pagliacci, M.C., Spinozzi, F., Migliorati, G., Fumi, G., Smacchia, M. and Grignani, F. 1993. Genistein inhibits tumour cell growth in vitro but enhances mitochondrial reduction of tetrazolium salts: a further pitfall in the use of the MTT assay for evaluating cell growth and survival. European Journal of Cancer. 29(11):1573–7.
16) Rajan, R., Chandran, K., Harper, S.L., Yun, S.I. and Kalaichelvan, P.T. 2015. Plant extract synthesized silver nanoparticles: An ongoing source of novel biocompatible materials. Industrial Crops and Products. 70:356–373.
17) Rastogi, L., Kora, A.J. and Arunachalam, J. 2012. Highly stable, protein capped gold nanoparticles as effective drug delivery vehicles for amino-glycosidic antibiotics. Materials Science and Engineering: C. 32(6):1571–1577.
18) Rautaray, D., Sanyal, A., Adyanthaya, S.D., Ahmad, A. and Sastry, M. 2004. Biological synthesis of strontium carbonate crystals using the fungus Fusarium oxysporum. Langmuir. 20(16):6827–33.
19) Rezaei, A., Pourali, P. and Yahyayi, B. 2014. Assessment of the cytotoxicity of gold nanoparticles produced by Bacillus cereus on hepatocyte and fibroblast cell lines. Journal of Cellular and Molecular Researches. 29(3):291-301.
20) Sabatini, L., Battistelli, M., Giorgi, L., Iacobucci, M., Gobbi, L. and Andreozzi, E. 2016. Tolerance to silver of an Aspergillus fumigatus strain able to grow on cyanide containing wastes. Journal of Hazardous Materials. 306:115–123.
21) Sajjadi, G., Shojaiee, A., Fazeli, M.R., Amini, J. and Jamalifar, H. 2009. Study of ability Fusarium Oxysporum in extracellular biosynthesis of silver nanoparticle in vitro. Journal of Microbial World. 2(1):44-7.
22) Sambrook, J., Maniatis, T. and Fritsch, E.F. 1987. Laboratory CSH. Molecular cloning: a laboratory manual. 2nd ed. Cold Spring Harbor, N.Y.: Cold Spring Harbor Laboratory Press.
