شناسایی عفونت مایکوپلاسما سینوویه در مرغان مادر گوشتی واکسینه شده

الموضوعات :

منصور میاحی ¹ (علوم درمانگاهی دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز)
زهرا برومند ² (گروه علوم درمانگاهی دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز)
سید علی پور بخش ³ (آزمایشگاه مرجع مایکوپلاسما، مؤسسه تحقیفات واکسن و سرم‌سازی‌رازی کرج)
رمضان علی جعفری ⁴ (گروه علوم درمانگاهی دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز)
حسین گیلوری ⁵ (دانشجوی دوره دکترای تخصصی بهداشت و بیماریهای طیوردانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز)

تاريخ الإرسال : 05 الثلاثاء , ربيع الثاني, 1438 تاريخ التأكيد : 04 الجمعة , جمادى الثانية, 1438 تاريخ الإصدار : 04 الثلاثاء , جمادى الثانية, 1439

الکلمات المفتاحية:

ملخص المقالة :

مایکوپلاسما سینوویه یکی از مهمترین عوامل بیماری زای پرندگان است و خسارت های اقتصادی زیادی را به صنعت مرغداری وارد می کند، این مطالعه با هدف تشخیص احتمالی آلودگی گله های مرغ مادر گوشتی واکسینه شده و نتاج آن ها به سویه های وحشی مایکوپلاسما سینوویه و بررسی کارایی واکسن ضد مایکوپلاسما سینوویه در گله های مرغ مادر گوشتی انجام شد. به همین منظور در سنین 40 و 60 هفتگی هر نوبت 20 سواپ نای و 20 نمونه خون از 20 مزرعه مرغ مادر گوشتی واکسینه شده بر ضد مایکوپلاسما سینوویه و نتاج آن ها گرفته شد. تمام گله های مورد آزمایش قبل از واکسیناسیون از نظر عدم آلودگی به مایکوپلاسما سینوویه تأیید شده بودند. سواپ نای به لوله های درپوش دار حاوی محیط انتخابی مایکوپلاسما منتقل شده و در دمای 4 درجه سانتی گراد در کم تر از 24 ساعت به آزمایشگاه ارسال شدند. در آزمایشگاه میزان پادتن ضد مایکوپلاسما سینوویه به 2 روش آزمایش آگلوتیناسیون سریع روی لام و الیزا اندازه گیری شد. نمونه های سواپ های نای توسط آزمون (High Resolution Melting)HRM با استفاده از ژن vlhA، به منظور تفریق سویه های واکسن و سویه های وحشی مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج نشان داد واکسیناسیون گله های مادر به خوبی توانسته تا سن 40 هفتگی گله ها را از ابتلا به بیماری محافظت و عیار پادتن مناسبی ایجاد نماید ولی با افزایش سن میزان محافظت کاهش یافت و یک مزرعه گله ی مادر (5%) در سن 60 هفتگی و نتاج آن آلودگی به مایکوپلاسما سینوویه متمایز از میکوپلاسما سینوویه به کار رفته در واکسن زنده را نشان دادند. این مطالعه نشان داد واکسیناسیو ن با واکسن های فعلی ضد مایکوپلاسما سینوویه نمی تواند حفاظت کامل در مادران گوشتی در سنین بالا ایجاد نماید و احتمال انتقال آلودگی به نتاج نیز وجود دارد و گله های واکسینه شده باید به روش های مولکولی کنترل و بررسی شوند.

المصادر:

1-انصاری، ح.، پوربخش، س.ع.، شیخی، ن.، بزرگمهری­فرد، م.ح.، اشتری، ع. (1388) تشخیص گونه مایکوپلاسما سینوویه در نمونه­های بالینی با استفاده از روش ر vlhA-PCR. مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد تبریز، دوره 3، شماره 4، 673-681.

2-حسینی، ا. (1386): تعیین هویت مولکولی مایکوپلاسما سینوویه جدا شده از مرغداری­های صنعتی استان مازندران، رساله دکترای تخصصی بیماری­های طیور، دانشکده دامپزشکی دانشگاه علوم تحقیقات تهران.

3-Bayatzadeh MA, Pourbakhsh SA, Ashtari A, Abtin AR, Abdoshah M (2014) Molecular typing of Iranian field isolates Mycoplasma synoviae and their differentiation from the live commercial vaccine strain MS-H using vlhA gene. British poultry science:1-9.

4-Carnaghan R (1961) Egg transmission of infectious synovitis. Journal of Comparative Pathology and Therapeutics, 71:279-285.

5-Ewing M, Lauerman L, Kleven S, Brown M (1996) Evaluation of diagnostic procedures to detect Mycoplasma synoviae in commercial multiplier-breeder farms and commercial hatcheries in Florida. Avian Diseases:798-806.

6-Harada K, Kijima-Tanaka M, Uchiyama M, Yamamoto T, Oishi K, Arao M, Takahashi T (2009) Molecular typing of Japanese field isolates and live commercial vaccine strain of Mycoplasma synoviae using improved pulsed-field gel electrophoresis and vlhA gene sequencing. Avian Diseases. 53:538-543.

7-Jones JF, Whithear KG, Scott PC, Noormohammadi AH (2006) Duration of immunity with Mycoplasma synoviae: comparison of the live attenuated vaccine MS-H (Vaxsafe MS) with its wild-type parent strain, 86079/7NS. Avian Diseases. 50:228-231.

8-Jones JF, Whithear KG, Scott PC, Noormohammadi AH (2006). Onset of immunity with Mycoplasma synoviae: comparison of the live attenuated vaccine MS-H (Vaxsafe MS) with its wild-type parent strain (86079/7NS). Avian Diseases. 50:82-87.

9-Landman W, Feberwee A (2004) Aerosol-induced Mycoplasma synoviae arthritis: the synergistic effect of infectious bronchitis virus infection. Avian Pathology. 33:591-598.

10-Markham JF, Morrow CJ, Scott PC, Whithear KG (1998) Safety of a temperature-sensitive clone of Mycoplasma synoviae as a live vaccine. Avian Diseases:677-681.

11-Markham JF, Morrow CJ, Whithear KG (1998) Efficacy of a temperature-sensitive Mycoplasma synoviae live vaccine. Avian Diseases:671-676.

12-Markham JF, Scott PC, Whithear KG (1998) Field evaluation of the safety and efficacy of a temperature-sensitive Mycoplasma synoviae live vaccine. Avian Diseases:682-689.

13-Morrow C, Whithear K, Kleven S (1990) Restriction endonuclease analysis of Mycoplasma synoviae strains. Avian Diseases:611-616.

14-Morrow CJ, Markham JF, Whithear KG (1998) Production of temperature-sensitive clones of Mycoplasma synoviae for evaluation as live vaccines. Avian Diseases.667-670.

15-Jeffery, N., Gasser, Robin B., Steer, Penelope A. and Noormohammadi, Amir, A.. (2007): Classification of Mycoplasma synoviae strains using single-strand conformation polymorphism and high-resolution melting -curve analysis of the vlhA gene single-copy region, Microbiology, 153: 2679-2688.

16- Pourbakhsh S. A., Maghami, M., Bayatzadeh, M., A. and Ahangary, S. (2013). The vlhA gene sequencing of Iranian Mycoplasma synoviae isolates. Archives of Razi Institute. 68: 117-124.

17-Pourbakhsh S. A., Shokri G, Banani M, Elhamnia F, Ashtari A (2010) Detection of Mycoplasma synoviae infection in broiler breeder farms of Tehran province using PCR and culture methods. Archives of Razi, 65:75-81.

18-Ricardo, M. and Silveria, L.F. (1996): polymerase chain reaction optimization for Mycoplasma synoviae diagnosis,Avian Diseases, 40:218-222.

19-Seifi, S. (2013). Risk factors and seroprevalence of Mycoplasma synoviae infection in broiler farms in Mazandaran province, North Iran. Acta Veterinaria(Beogtrad), 63:303-309.

20- Swayne, D. E., Glisson, J. R., McDougald, L. R., Nolan, L. K., Suarez, D. L., Nair, V. (2013). Diseases of Poultry,13^th edition, Willey-Blackwell. Pp: 875-941.

21-Vardaman T (1976) The resistance and carrier status of meat-type hens exposed to Mycoplasma synoviae. Poultry Science: 55:268-273.

22-Yang Hong,Marcarmen Garcia, (2004): Specific Detection and typing of Mycoplasma synoviae strains in poultry with PCR and DNA sequence analysiss targeting the Hemagglutinin encoding Gene VlhA, Avian Diseases, 48:606-616.