شناسایی یک سویه جدید ویروس تنفسی در ایگوانای سبز (ایگوانا ایگوانا)

الموضوعات : پاتوبیولوژی مقایسه ای

پیمان محمدزاده ¹ (گروه پاتوبیولوژی دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ازاد اسلامی واحد سنندج، ایران)
سجاد محمدی ² (دانشجوی دوره دکترای عمومی دامپزشکی، دانشگاه ازاد اسلامی واحد سنندج ایران)

تاريخ الإرسال : 08 الإثنين , رجب, 1444 تاريخ التأكيد : 18 الأحد , رمضان, 1444 تاريخ الإصدار : 21 السبت , ذو القعدة, 1444

الکلمات المفتاحية: نیدو ویروس, کشت سلولی, واکنش زنجیره‌ای پلیمراز رونویس, توالی یابی نسل بعدی, آسیب‌شناسی, ایگوانا,

ملخص المقالة :

اخیراً نیدوویروس‌ها به‌عنوان عامل احتمالی بیماری‌های تنفسی شدید در خزندگان و بخصوص مارهای پیتون از نقاط مختلفی از جهان توصیف شده‌اند. هدف از این مطالعه، جداسازی عامل بیماری‌زا همراه با تعیین دقیق خصوصیات و نیز بررسی یافته‌های هیستوپاتولوژی در یک ایگوانای ماده می‌باشد. در طی معاینات پس از مرگ، ضایعات پیوگرانولوماتوز و فیبرونکروتیک در سیستم‌هایی غیر از دستگاه تنفس این ایگوانا مشاهده شد و نتایج بررسی واکنش زنجیره‌ای پلیمراز رونویسی معکوس نیز مثبت بود لذا ارتباط بین مشاهده این ضایعات گسترده با نتایج کالبدگشایی حاصل از مطالعه موارد ابتلا به سرپنتوویروس‌های قبلی و نیز میزان و نوع تغییرات در ژنوم سرپنتوویروس شناسایی شده با سرپنتو ویروس قبلی بررسی شد. تلقیح کشت‌ سلولی و سپسRT-PCR برای جمع‌آوری و به دست آوردن ایزوله‌ ویروسی استفاده شد. در ادامه ایمونوهیستوشیمی انجام شد. رنگ‌آمیزی برای نوکلئوپروتئین سرپنتویروس نشان داد که این ویروس نه‌تنها طیف وسیعی از اپیتلیوم (اپیتلیوم تنفسی و گوارشی، سلول‌های کبدی، لوله‌های ادراری، مجاری پانکراس و غیره)، بلکه مونوسیت‌های داخل عروقی، ماکروفاژهای داخل ضایعه و سلول‌های اندوتلیال را نیز آلوده می‌کند. با توالی یابی نسل بعدی، ژنوم کامل برای این‌گونه سرپنتویروس جدید به دست آمد. تجزیه‌وتحلیل ژنوم ویروسی بازیابی شده از این بیماری تنفسی و سیستمیک مرتبط با عفونت سرپنتوویروس، ارتباط توالی با فنوتیپ سایر سویه‌ها را نشان نداد. نتایج نشان داد که این سرپنتوویروس تروپیسم سلولی و بافتی گسترده‌ای دارد و سیر عفونت‌زایی توسط آن می‌تواند متفاوت باشد و در نتیجه گسترش سیستمیک ویروس در بدن ضایعات در طیف گسترده‌ای از بافت‌ها و سیستم‌های مختلف بدن ایجاد می‌کند.

المصادر:

1. Gorbalenya AE, Enjuanes L, Ziebuhr J, Snijder EJ. Nidovirales: evolving the largest RNA virus genome. Virus research. 2006;117(1):17-37.


2. Balasuriya U, Carossino M, Timoney P. Equine viral arteritis: A respiratory and reproductive disease of significant economic importance to the equine industry. Equine Veterinary Education. 2018;30(9):497-512.


3. Buchatsky LP, Makarov VV. Nidoviruses associated with aquatic animals. Veterinary Science Today. 2020:115-21.


4. Uccellini L, Ossiboff RJ, De Matos RE, Morrisey JK, Petrosov A, Navarrete-Macias I, et al. Identification of a novel nidovirus in an outbreak of fatal respiratory disease in ball pythons (Python regius). Virology journal. 2014;11(1):1-6.


5. Stenglein MD, Jacobson ER, Wozniak EJ, Wellehan JF, Kincaid A, Gordon M, et al. Ball python nidovirus: a candidate etiologic agent for severe respiratory disease in Python regius. MBio. 2014;5(5):e01484-14.


6. Zhang J, Finlaison DS, Frost MJ, Gestier S, Gu X, Hall J, et al. Identification of a novel nidovirus as a potential cause of large scale mortalities in the endangered Bellinger River snapping turtle (Myuchelys georgesi). PLoS One. 2018;13(10):e0205209.


7. O’Dea MA, Jackson B, Jackson C, Xavier P, Warren K. Discovery and partial genomic characterisation of a novel nidovirus associated with respiratory disease in wild shingleback lizards (Tiliqua rugosa). PloS one. 2016;11(11):e0165209.


8. Hoon-Hanks LL, Stöhr AC, Anderson AJ, Evans DE, Nevarez JG, Díaz RE, et al. Serpentovirus (nidovirus) and orthoreovirus coinfection in captive veiled chameleons (Chamaeleo calyptratus) with respiratory disease. Viruses. 2020;12(11):1329.


9. Marschang RE, Pasterny J, Seń J, Skomorucha Ł, Stanicki K. A novel iguanid herpesvirus detected in asymptomatic green iguanas (Iguana iguana) in Poland. Journal of Zoo and Wildlife Medicine. 2021;52(2):815-9.


10. Dervas E, Hepojoki J, Laimbacher A, Romero-Palomo F, Jelinek C, Keller S, et al. Nidovirus-associated proliferative pneumonia in the green tree python (Morelia viridis). Journal of virology. 2017;91(21):e00718-17.


11. Martínez Silvestre A, Silveira L, Mateo J, Urioste J, Rodríguez Domínguez M, Pether J. Cloacal microbiology in threatened captive giant lizards from the Canary Islands (genus Gallotia). Rev Esp Herp. 2003;17:29-37.


12. Millichamp NJ. Ophthalmic disease in exotic species. Veterinary Clinics: Exotic Animal Practice. 2002;5(2):223-41.


13. Jacobson E, Adams H, Geisbert T, Tucker S, Hall B, Homer B. Pulmonary lesions in experimental ophidian paramyxovirus pneumonia of Aruba Island rattlesnakes, Crotalus unicolor. Veterinary Pathology. 1997;34(5):450-9.


14. Caswell JL, Williams KJ. Respiratory system. Jubb, Kennedy & Palmer's Pathology of Domestic Animals: Volume 2. 2016:465-591. e4.


15. Pastor L. The histology of the reptilian lungs. Histology, Ultrastructure and Immunohistochemistry of Respiratory Organs in Non-Mammalian Vertebrates. 1995:131-53.


16. Maestre AM, Garzon A, Rodriguez D. Equine torovirus (BEV) induces caspase-mediated apoptosis in infected cells. PLoS One. 2011;6(6):e20972.

17. Koopmans M, Horzinek MC. The pathogenesis of torovirus infections in animals and humans. The Coronaviridae. 1995:403-13.


18. Kuwabara M, Wada K, Maeda Y, Miyazaki A, Tsunemitsu H. First isolation of cytopathogenic bovine torovirus in cell culture from a calf with diarrhea. Clinical and Vaccine Immunology. 2007;14(8):998-1004.


19. Tokarz R, Sameroff S, Hesse RA, Hause BM, Desai A, Jain K, et al. Discovery of a novel nidovirus in cattle with respiratory disease. The Journal of general virology. 2015;96(Pt 8):2188.


20. Ariel E. Viruses in reptiles. Veterinary Research. 2011;42(1):1-12.


21. Marschang R. Viruses infecting reptiles. Viruses 3: 2087–2126. 2011.


22. Penner J, Jacobson E, Brown D, Adams H, Besch-Williford C. A novel Mycoplasma sp. associated with proliferative tracheitis and pneumonia in a Burmese python (Python molurus bivittatus). Journal of comparative pathology. 1997;117(3):283-8.


23. Starck J, Weimer I, Aupperle H, Müller K, Marschang R, Kiefer I, et al. Morphological pulmonary diffusion capacity for oxygen of burmese pythons (Python molurus): a comparison of animals in healthy condition and with different pulmonary infections. Journal of Comparative Pathology. 2015;153(4):333-51.


24. de Macêdo IL, de Sousa DER, Hirano LQL, Name KPO, Báo SN, de Castro MB. Nasal Melanophoroma in a Captive Green Iguana (Iguana Iguana). Topics in Companion Animal Medicine. 2020;41:100463.


25. Shi M, Lin X-D, Tian J-H, Chen L-J, Chen X, Li C-X, et al. Redefining the invertebrate RNA virosphere. Nature. 2016;540(7634):539-43.


26. Malbon A, Meli ML, Barker E, Davidson A, Tasker S, Kipar A. Inflammatory mediators in the mesenteric lymph nodes, site of a possible intermediate phase in the immune response to feline coronavirus and the pathogenesis of feline infectious peritonitis? Journal of comparative pathology. 2019;166:69-86.


27. Rottier PJ, Nakamura K, Schellen P, Volders H, Haijema BJ. Acquisition of macrophage tropism during the pathogenesis of feline infectious peritonitis is determined by mutations in the feline coronavirus spike protein. Journal of virology. 2005;79(22):14122-30.


28. Roth-Cross JK, Bender SJ, Weiss SR. Murine coronavirus mouse hepatitis virus is recognized by MDA5 and induces type I interferon in brain macrophages/microglia. Journal of virology. 2008;82(20):9829-38.