تعیین الگوی فنوتیپی و ژنوتیپی مقاومت آنتیبیوتیکی درایزوله¬های کلبسیلا پنومونیه جدا شده از موارد کلینیکی شهرستان شهرکرد
الموضوعات : microbiologyفاطمه خداوردی پور 1 , فاطمه مومبینی 2 , خاتم امین الرعایائی 3
1 - گروه زیست شناسی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران.
2 - گروه زیست شناسی، واحد مسجد سلیمان، دانشگاه آزاد اسلامی، مسجد سلیمان، ایران.
3 - کارشناسی ارشد تغذیه دام، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران.
الکلمات المفتاحية: ژن های مقاومت آنتی بیوتیکی, کلبسیلاپنومونیه, عفونت , بیمارستانی.,
ملخص المقالة :
بخش عمده ای از نمونههای بالینی توسط گونههای کلبسیلا آلوده می شود. مقاومت دارویی کلبسیلا روز به روز افزوده میشود و بنابراین انجام تستهای مقاومت دارویی، قبل از تجویز آنتیبیوتیک، ضروری به نظر میرسد. هدف از این مطالعه تعیین الگوی فنوتیپی و ژنوتیپی مقاومت آنتیبیوتیکی در ایزولههای کلبسیلا پنومونیه جد اشده از موارد کلینیکی شهرستان شهرکرد میباشد. مطالعه حاضر روی 90 سویه کلبسیلا پنومونیه جدا شده از 5000 نمونه کلینیکی از بیماران مراجعه کننده به آزمایشگاههای تشخیص طبی شهرکرد انجام شد. با استفاده از روشهای بیوشیمیایی و تکنیک مولکولی بر اساس ردیابی ژن 16srRNA همه ایزولهها تایید و مقاومت آنتی بیوتیکی ایزولهها با استفاده از روش روش دیسک دیفیوژن بررسی شد. ردیابی ژنهای (qnr،tet A، tet B, aac (3)IIa وsul1) در حضور پرایمرهای اختصاصی صورت گرفت. از 90 ایزوله مورد بررسی، بیشترین مقاومت میکروبی به پنی سیلین (75/93 درصد) و بیشترین حساسیت نسبت به ونکومایسین (100درصد) برآوردگردید. ژن aac (3)IIa (کد کننده مقاومت به جنتامایسین) با فراوانی 33/83 درصد و ژن qnr (کد کننده ی مقاومت به سیپروفلوکساسین) با فراوانی 16/16 درصد، بیشترین و کمترین ژنهای کد کننده مقاومت آنتی بیوتیکی ردیابی شده در ایزولههای کلبسیلا پنومونیه بودند. از آنجا که کلبسیلا پنومونیه دارای مقاومت چندگانه یک خطر جدی برای بیماران مراجعه کننده به بیمارستانهای شهرکرد است، بنابراین نظارت بر مصرف آنتیبیوتیکها و تعیین ایزولههای مقاوم به داروها میتواند از توسعه مقاومت در باکتریها جلوگیری کند.
1. Babypadmini S, Appalaraju B. Extended spectrum -lactamases in urinary isolates of Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae prevalence and susceptibility pattern in a tertiary care hospital. Indian J Med Microbiol.2004;22(3):172-174.
2. Tsai YK, Fung CP, Lin JC, Chen JH, Chang FY, Chen TL, Siu LK. Klebsiella pneumoniae outer Membrane Porins OmpK35 and OmpK36 Play Roles in Both Antimicrobial Resistance and Virulence. Antimicrob Agents Chemother. 2011; 55(4):1485-1493.
3. Luo Y, Yang J, Zhang Y, Ye L, Wang L, Guo L. Prevalence of β-lactamases and 16S rRNA Methylase Genes Amongst Clinical Klebsiella pneumoniae Isolates Carrying Plasmid-mediated Quinolone Resistance Determinants. Int J Antimicrob Agents. 2011; 37(4):352-325.
4. Green VL, Verma A, Owens RJ, Phillips SE, Carr SB. Structure of New Delhi Metallo-β-Lactamase 1 (NDM-1). Acta Crystallogr Sect F Struct Biol Cryst Commun. 2011; 67(10):1160-1164.
5. Lye DC, Kwa AL, Chlebicki P. World Health Day 2011: Antimicrobial Resistance and Practical Solutions. Ann Acad Med Singapore. 2011; 40(4): 156-152.
6. Mustafa OA, Yusuf D. Investigation of some antibiotic susceptibility plasmid profiles and ESBL characteristic of Klebsiella pneumoniae isolated from urinary system infection. World Applied Scin J. 2009; 6(5): 630-636.
7. Walker, Stuart T. Cocos stain-causing Gram-positive. In: Bahador A, Alikhani MY, Mansouri SH, Piri Dogahe H, Taheri Kalani M. Walkers Microbiology. Tehran: khosravi publications & Dibaj publications. 2007; 151-193.
8. Lavilla S, Gonzalez-Lopez JJ, Sabate M, Garcia-Fernandez A, Larrosa MN, Bartolome RM, et al. Prevalence of qnr genes among extended-spectrum beta-lactamase-producing enterobacterial isolates in Barcelona, Spain. J Antimicrob Chemother. 2008; 61(2):291-295.
9. Wang M, Guo Q, Xu X, Wang X, Ye X, Wu S, et al. New plasmid-mediated quinolone resistance gene, qnrC, found in a clinical isolate of Proteus mirabilis. Antimicrob Agents Chemother. 2009; 53(5):1892-1897.
10. Garnier F, Raked N, Gassama A, Denis F, Ploy MC. Genetic environment of quinolone resistance gene qnrB2 in a complex sul1-type integron in the newly described Salmonella enterica serovar Keurmassar. Antimicrob Agents Chemother. 2006; 50(9):3200-3202.
11. Bouchakour M, Zerouali K, Gros Claude JD, Amarouch H, El Mdaghri N, Courvalin P, et al. Plasmid-mediated quinolone resistance in expanded spectrum beta lactamase producing enterobacteriaceae in Morocco. J Infect Dev Ctries. 2010; 4(12):779-803.
12. Nordmann P. Emergence of plasmid-mediated resistance to quinolones in Enterobacteriaceae. Pathol Biol (Paris). 2006; 54(1): 7-19.
13. Maynard C, Bekal S, Sanschagrin F, Levesque RC, Brousseau R, Masson L, Larivière S, Harel J. Heterogeneity among virulence and antimicrobial resistance gene profiles of extraintestinal Escherichia coli isolates of animal and human origin. J Clin Microbiol. 2004; 42 (12): 5444-5452.
14. Soleimani-Asl Y, Zibaei M, Firoozeh. Detection of qnrA gene among quinolone-resistant Escherichia coli isolated from urinary tract infections in Khorram Abad during. 2011-2012. J Kashan Univ Med Sci. 2013; 7(5): 488-494.
15. Kerrn MB, Klemmensen T, Frimodt-Møller N, Espersen F. Susceptibility of Danish Escherichia coli strains isolated from urinary tract infections and bacteraemia, and distribution of sul genes conferring sulphonamide resistance. J Antimicrob Chemother. 2002; 50(3): 513–516.
16. Chen LF, Chopra T, Kaye KS. Pathogens resistant to antibacterial agents. Infect Dis Clin North Am. 2009; 23(4): 817-845.
17. Soltan dallal, Mm; Sharifi yazdi, Mk. Comparison of multiple antibiotic resistance patterns of Klebsiella bacteria groups causing urinary infections and determination of imipenem MIC in MDR strains. J of Advances in Medical and Biomedical Research, 2014; 6(4): 28-37.
18. Al Shara MA. Emerging Antimicrobial Resistance of Klebsiella pneumonia strains Isolated from pediatric patients in Jordan. The New Iraqi Journal of Medicine 2011; 7(2): 29-32.
19. Jalalpoor, Sh. Antibiotic resistant pattern in ESBLs producer Klebsiella pneumoniae strains isolated of hospitalized and out patients acquired urinary tract infection. J. of Isfahan Medical School, 2011; 29(142): 695-706.
20. Kizirgil A. Demirdag K. Ozden M. Bulut Y. Yakupogullari Y. Toraman ZA. In vitro activity of three different antimicrobial agents against ESBL producing Escherichia coliKlebsiella pneumoniae blood isolates. Microb Res. 2005: 160 (2): 135-140.
21. Khalaf, NG. Eletreby, MM. Hanson. ND. Characterization of CTX-M ESBLs in Enterobacter cloacae, Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae clinical isolates from Cairo. Egypt. BMC Infect Dis; 2009: 9(84): 1-5.
22.Chong, Y. Yakushiji. H. Ito, Y. Kamimura. T. Clinical molecular epidemiology of extended-spectrum b-lactamase-producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae in a long-term study from Japan EurJ Clin Microbiol Infect Dis. 2001: 30 (1): 83–87.
23. Carattioli A. Resistance plasmide families in Enterobacteriaceae. J Antimicrob Chemother. 2009; 53: 2227-2238.
24. Grape M, Farra A, Kronall G, Sundstrom L. Integrons and gene cassettes in clinical isolates of co trimoxazole resistant gram negative bacteria. Clin Microbiol Infect. 2005; 11(3): 185- 192.
25.Trobos M, Jakobsen L, Olsen KE, et al. Prevalence of sulfonamide resistance and class 1integron genes in Escherichia coli isolates obtained from broilers, broiler meat healthy humans and urinary infections in Denmark. J Antimicrob Agents. 2008; 32(3): 367-369.
26. Bean DC, Live more D, Hall LM. E. coli: implications for Plasmids imparting sulfonamide resistance in persistence. Antimicrob Agents Chemother. 2009; 53(2): 1088-1093.
