بررسی تاثیر دارو های بیهوشی پیش از جراحی با کتامین، زایلازین و همزمان کتامین زایلازین بر بیان ژن های گیرنده آنژیوتانسین2 در بافت قلب کبوتر
الموضوعات :
لیلا درخشان
1
,
سیدمرتضی رزاقی منش
2
,
سیمین یعقوبیان
3
,
ملینا دقیقیان
4
1 - گروه دامپزشکی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی ، واحد شوشتر، دانشگاه آزاد اسلامی، شوشتر، ایران
2 - گروه دامپزشکی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی ، واحد شوشتر، دانشگاه آزاد اسلامی، شوشتر، ایران
3 - دانش آموخته دکترای حرفه‌ای دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد شوشتر، شوشتر، ایران
4 - دانشجوی دکترای حرفه‌ای دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد شوشتر، شوشتر، ایران
الکلمات المفتاحية: کتامین, زایلازین, AGTR1, بیهوشی, سیستم رنین-آنژیوتانسین-آلدسترون (RAAS),
ملخص المقالة :
سیستم رنین-آنژیوتانسین-آلدسترون (RAAS) نقش کلیدی در تنظیم فشار خون و تعادل الکترولیت‌ها ایفا می‌کند. اختلال در عملکرد این سیستم طی فرآیند بیهوشی می‌تواند به بی‌ثباتی فشار خون منجر شده و اثربخشی و ایمنی پروتکل‌های بیهوشی را تحت تأثیر قرار دهد. از آنجا که ترکیب کتامین و زایلازین به‌عنوان یک روش رایج در بیهوشی کاربرد گسترده‌ای دارد، ارزیابی دقیق اثرات آن بر سیستم RAAS و شاخص‌های وابسته به آن، از جمله میزان بیان ژن AGTR1 در بافت قلب، ضروری به نظر می‌رسد. این پژوهش به بررسی تأثیر ترکیب کتامین و زایلازین بر بیان ژن AGTR1 در بافت قلب کبوتر پرداخته است. هدف اصلی این مطالعه، تحلیل چگونگی تأثیر این ترکیب دارویی بر سیستم رنین-آنژیوتانسین-آلدسترون (RAAS) و نوسانات فشار خون در هنگام بیهوشی و بهبود پروتکل‌های بیهوشی برای کاهش ناپایداری‌های فشار خون است. بیست طوق کبوتر سالم و بالغ نژاد خانگی(نر و ماده) با وزن میانگین 150 الی 300 گرم و سن 1 تا 3 سال تهیه شد. پرندگان به طور تصادفی به 4 گروه تقسیم شدند. دوز های مختلف کتامین و زایلازین به صورت عضلانی در سمت چپ عضله سینه تزریق شد.بر اساس نتایج به دست آمده، ترکیب کتامین-زایلازین تغییرات معنی داری بر میزان بیان ژن AGTR1 ایجاد نکرد.
در نتیجه ترکیب کتامین-زایلازین می‌تواند به عنوان یک روش مؤثر برای بیهوشی در پرندگان پیشنهاد شود. این نتایج، درک بهتری از تأثیرات این داروها بر سیستم RAAS ارائه کرده و راه را برای بهبود پروتکل‌های بیهوشی در دامپزشکی هموار می‌کند.
1. SHEARER WM. The evolution of premedication. British journal of anaesthesia. 1960;32(11):554-62.
2. Sheen MJ, Chang F-L, Ho S-T. Anesthetic premedication: new horizons of an old practice. Acta Anaesthesiologica Taiwanica. 2014;52(3):134-42.
3. Buxton DW. The use of scopolamine, morphine, atropine, and similar drugs by hypodermic injection before inhalation anaesthesia. SAGE Publications; 1911.
4. Beecher HK. PREANESTHETIC MEDICATION: GUEST EDITORIAL. Journal of the American Medical Association. 1955;157(3):242-3.
5. Metkus TS, Suarez-Pierre A, Crawford TC, Lawton JS, Goeddel L, Dodd-o J, et al. Diastolic dysfunction is common and predicts outcome after cardiac surgery. Journal of Cardiothoracic Surgery. 2018;13(1):67.
6. Rhodes DR, Ateeq B, Cao Q, Tomlins SA, Mehra R, Laxman B, et al. AGTR1 overexpression defines a subset of breast cancer and confers sensitivity to losartan, an AGTR1 antagonist. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2009;106(25):10284-9.
7. Occhieppo VB, Basmadjian OM, Marchese NA, Silvero MJ, Rodríguez A, Armonelli S, et al. AT1‐R is involved in the development of long‐lasting, region‐dependent and oxidative stress‐independent astrocyte morphological alterations induced by Ketamine. European Journal of Neuroscience. 2020;54:5705 - 16.
8. Oh E, Kim JY, Cho Y, An H, Lee N, Jo H, et al. Overexpression of angiotensin II type 1 receptor in breast cancer cells induces epithelial-mesenchymal transition and promotes tumor growth and angiogenesis. Biochimica et biophysica acta. 2016;1863 6 Pt A:1071-81.
9. Pipkin FB, Waldron BA. Ketamine Hypertension and the Renin-Angiotensin System. Clinical and Experimental Hypertension Part A: Theory and Practice. 1983;5(6):875-83.
10. Durrani U, Ashraf M, Khan M. A comparison of the clinical effects associated with xylazine, ketamine, and a xylazine-ketamine cocktail in pigeons (Columba livia). Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences. 2009;33:413-7.
11. Antonaccio MJ, Robson RD, Kerwin LJ. Evidence for increased vagal tone and enhancement of baroreceptor reflex activity after xylazine (2-(2,6-dimethylphenylamino)-4-H-5,6-dihydro-1,3-thiazine) in anesthestized dogs. European journal of pharmacology. 1973;23 3:311-6.
12. Baumgartner C, Bollerhey M, Ebner JK, Laacke-Singer L, Schuster T, Erhardt W. Effects of ketamine-xylazine intravenous bolus injection on cardiovascular function in rabbits. Canadian journal of veterinary research = Revue canadienne de recherche veterinaire. 2010;74 3:200-8.
13. KAZDAĞLI HÖ, HASAN FEHMİ; ÖZBEK, MUSTAFA; ALPAY, ŞÜHEDA; and ALENBEY, MÜRÜVVET Classical heart rate variability and non-linear heart rate analysis in mice under Na-Pentobarbital and Ketamine/Xylazine anesthesia. Turkish Journal of Medical Sciences. 2022;52(3):858-69.
14. Picollo C, Serra A, Levy R, Antonio E, Santos Ld, Tucci P. Hemodynamic and thermoregulatory effects of xylazine-ketamine mixture persist even after the anesthetic stage in rats. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia. 2012;64:860-4.
15. Struck MB, Andrutis KA, Ramirez HE, Battles AH. Effect of a short-term fast on ketamine-xylazine anesthesia in rats. J Am Assoc Lab Anim Sci. 2011;50(3):344-8.
16. Sotoudeh N, Namavar MR. Optimisation of ketamine-xylazine anaesthetic dose and its association with changes in the dendritic spine of CA1 hippocampus in the young and old male and female Wistar rats. Veterinary Medicine and Science. 2022;8(6):2545-52.
