تأثیر ترکیب سنی مولدین بر انواع و میزان ناهنجاریهای ظاهری لارو و بچه ماهی کپور نقرهای (Hypophthalmicthys molitrix)
الموضوعات : Journal of Animal Biology
حسین عینی دیوشلی
1
,
عسگر زحمتکش کومله
2
,
مهران آوخ کیسمی
3
,
بابک تیزکار
4
,
افشار ذوقی شلمانی
5
,
محمد رهاننده
6
1 - بخش تحقیقات شیلات و آبزیان، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزي و منابع طبیعی استان گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزي، رشت، ایران
2 - بخش تحقیقات شیلات و آبزیان، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزي و منابع طبیعی استان گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزي، رشت، ایران
3 - بخش تحقیقات شیلات و آبزیان، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزي و منابع طبیعی استان گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزي، رشت، ایران
4 - بخش تحقیقات شیلات و آبزیان، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزي و منابع طبیعی استان گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزي، رشت، ایران
5 - بخش تحقیقات شیلات و آبزیان، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزي و منابع طبیعی استان گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزي، رشت، ایران
6 - بخش تحقیقات شیلات و آبزیان، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزي و منابع طبیعی استان گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزي، رشت، ایران
الکلمات المفتاحية: کپور نقرهای , لارو, بچهماهی, ناهنجاری, سن مولدین,
ملخص المقالة :
این تحقیق جهت بررسی انواع و میزان ناهنجاریهای ظاهری لارو و بچهماهی کپور نقرهای (Hypophthalmicthys molitrix) با تلاقي بين مولدین در 4 گروه آزمایشی متفاوت شامل تیمار 1 (مولدین ماده با سن ⁺4 و نر با سن⁺4) ، تیمار2 (مولدین ماده با سن ⁺5 و نر با سن ⁺4) تیمار3 (مولدین ماده با سن ⁺5 و نر با سن⁺5) ، تیمار4 (مولدین ماده با سن ⁺ 5 و ⁺4 نر با سن ⁺4 و⁺ 5) اجراء گردید. لاروها و بچهماهیهای استحصالی از مولدین به صورت تصادفی به ترتیب در مخازن پلاستیکی 100 لیتری(داخل سالن) و قفسهای توری در استخر خاکی رهاسازی شدند. تغذیه ی لاروها با شیر خشک و تغذیه ی بچهماهیها با غذای پودری انجام شد. انواع و میزان ناهنجاری ظاهری در لاروها(یکروزه، سهروزه، و پنج روزه) و بچهماهیها (32 روزه) تعیین شد. بیشترین ناهنجاری ماهی کپور نقرهای از نظر سن لارو با میزان 336/0 ± 703/1 درصد در لاروهای سهروزه و بیشترین نوع ناهنجاری، انحراف محوری بدن، 133/0 ± 133/2 درصد بود و بیشترین میزان آن با میانگین 759/0 ±518/1 درصد در تیمار آزمایشی3، در زمان لاروی به دست آمد. شایعترین ناهنجاری مشاهدهشده در بچهماهیها خوردگی باله دمی بود و فراوانترین این نمونه از ناهنجاری در بچهماهیان تیمار 4، 073/0 ±426/25 درصد دیده شد. در مقایسه کمترین تنوع، 435/2 ± 521/5 درصد و کمترین فراوانی ناهنجاری، 502/2 ±589/3 درصد، ، بالاترین میانگین افزایش وزن ، طول و بازماندگی در بچهماهیان گروه آزمایشی 2 به دست آمد. با توجه به شرایط یکسان ایجادشده برای تیمارها و نتایج تحقیق مشخص گرديد كه در تلاقيهاي گروههای سنی مختلف تیمار2 سبب کاهش معني دار نواقص و افزایش رشد و بازماندگی گردید. بنابراین شاید تلاقی مولدین ماده با سن ⁺5 و نر با سن ⁺4 بتواند در کاهش بروز ناهنجاری در تولید لارو و بچهماهی کپور نقرهای موثر باشد.
1. Miao X, Guo H, Song Y, Du C, Feng J, Tao Y, Xu H, Li Y. Improvement of flesh quality of farmed silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) by short-term stocked in natural water. Fishes. 2023;8(3):142.
2. George AE, Chapman DC. Aspects of embryonic and larval development in bighead carp Hypophthalmichthys nobilis and silver carp Hypophthalmichthys molitrix. PloS one. 2013;8(8):e73829.
3. Kamilov BG. Age and growth of the silver carp (Hypophthalmichthys molitrix val.) in Tudakul reservoir, Uzbekistan. Croatian Journal of Fisheries: Ribarstvo. 2014;72(1): 12-16.
4. Eissa AE, Abu‐Seida AM, Ismail MM, Abu‐Elala NM, Abdelsalam M. A comprehensive overview of the most common skeletal deformities in fish. Aquac Res. 2021;52(6):2391-2402.
5. Keysami MA, Zoughi Shalmani A, Zahmatkesh Kumleh A, Karimi A. Screening of bacterial flora isolated from the gastrointestinal tract of silver carp broodstocks (Hypophthalmichthys molitrix) as probiotics. J Anim Environ. 2022;14(1): 285-292. (In Persian)
6. Aydin İ, Öztürk RÇ, Terzi Y, Küçük E, Polat H, Altinok I. Skeletal development and malformations in the early life stage of diploid and triploid turbot (Scophthalmus maximus). Aquaculture. 2022;550:737886.
7. SanJuan-Reyes N, Gómez-Oliván LM, Borja RP, Luja-Mondragón M, Orozco-Hernández JM, Heredia-García G, Islas-Flores H, Galar-Martínez M, Escobar-Huérfano F. Survival and malformation rate in oocytes and larvae of Cyprinus carpio by exposure to an industrial effluent. Environ Res. 2020;182:108992.
8.Ashaf-Ud-Doulah M, Islam SM, Zahangir MM, Islam MS, Brown C, Shahjahan M. Increased water temperature interrupts embryonic and larval development of Indian major carp rohu Labeo rohita. Aquac Int. 2021; 29(2):711-722.
9.Georgakopoulou E, Katharios P, Divanach P, Koumoundouros G. Effect of temperature on the development of skeletal deformities in Gilthead seabream (Sparus aurata Linnaeus, 1758). Aquaculture. 2010; 308(1-2):13-19.
10.Dionísio G, Campos C, Valente LM, Conceição LE, Cancela ML, Gavaia PJ. Effect of egg incubation temperature on the occurrence of skeletal deformities in Solea senegalensis. J Appl Ichthyol. 2012;28(3): 471-476.
11. Jawad LA. Vertebral abnormalities in the oriental sole Brachirus orientals (Bloch & Schneider, 1801) (Teleostei, Hetrosomata) collected from the coasts of Muscat City on the Sea of Oman. Boll. Mus. Civ. Stor. Nat. Verona. 2014; 38:193-6.
12. Dominguez D, Montero D, Zamorano MJ, Castro PL, Da Silva J, Fontanillas R, Izquierdo M. High Levels of Vitamin A in Plant‐Based Diets for Gilthead Seabream (Sparus aurata) Juveniles, Effects on Growth, Skeletal Anomalies, Bone Molecular Markers, and Histological Morphology. Aquac Nutr. 2023;2023(1):5788432.
13. Taslima K, Al-Emran M, Rahman MS, Hasan J, Ferdous Z, Rohani MF, Shahjahan M. Impacts of heavy metals on early development, growth and reproduction of fish–A review. Toxicol Repo. 2022; 9:858-68.
14. Cobcroft JM, Battaglene SC. Skeletal malformations in Australian marine finfish hatcheries. Aquaculture. 2013; 396:51-58.
15. Germanguz I, Gitelman I. All four twist genes of zebrafish have partially redundant, but essential, roles in patterning the craniofacial skeleton. J Appl Ichthyol. 2012; 28(3):364-371.
16. Cobcroft JM, Shu-Chien AC, Kuah MK, Jaya-Ram A, Battaglene SC. The effects of tank colour, live food enrichment and greenwater on the early onset of jaw malformation in striped trumpeter larvae. Aquaculture. 2012; 356:61-72.
17. Naz S, Mustafa Chatha AM, Rani B, Fatima A, Abbas G, Alrefaei AF, Almutairi MH, Gul S, Naz S. Survival potential and assessment of deformities in embryo and larvae of Chinese carps (Hypophthalmichthys molitrix and Ctenopharyngodon idella) under acute exposure of cadmium and nickel. J Appl Anim Res. 2023;51(1):695-702.
18. Roo FJ, Hernández‐Cruz CM, Socorro JA, Fernández‐Palacios H, Izquierdo MS. Occurrence of skeletal deformities and osteological development in red porgy Pagrus pagrus larvae cultured under different rearing techniques. J Fish Biol. 2010; 77(6):1309-24.
19. Koumoundouros G. Morpho-anatomical abnormalities in Mediterranean marine aquaculture. Recent Adv Aquac Res. 2010; 661(2):125-148.
20. Yi Y, Yang Z, Zhang S. Ecological risk assessment of heavy metals in sediment and human health risk assessment of heavy metals in fishes in the middle and lower reaches of the Yangtze River basin. Environ Pollut. 2011;159(10):2575-2585.
21. Jezierska B, Ługowska K, Witeska M. The effects of heavy metals on embryonic development of fish (a review). Fish Physiol Biochem. 2009;35(4):625-640.
22. Chandra G, Saini VP, Kumar S, Fopp‐Bayat D. Deformities in fish: A barrier for responsible aquaculture and sustainable fisheries. Rev Aquac. 2024;16(2):872-891.
23. Gulab R, Syed U, Said M. Comparison of Relative Fecundity and Early Survival of Ctenopharyngodon idella and Hypophthalmichthys molitrix through Induced Breeding. Open Access Pub Health & Health Admin Rev. 2025;4(1):99-116.
24. Avakh Keysami M, Avakh Keysami M, Zoughi Shalmani A, Rahanandeh M. The effect of mercuric chloride (HgCl2) on growth indices, survival rate, some blood indices and immunity of common carp fry. J Aqua Eco. 2025;15(2):54-67 (In Persian).
25. Ghafari T, Falahatkar B. The effect of age on reproductive indices of common carp (Cyprinus carpio). J Aquac Dev. 2014;9(1):67-79. (In Persian)
26. Boglione C, Pulcini D, Scardi M, Palamara E, Russo T, Cataudella S. Skeletal anomaly monitoring in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum 1792) reared under different conditions. PLoS One. 2014;9(5):e96983.
27.Brix KV, Baken S, Poland CA, Blust R, Pope LJ, Tyler CR. Challenges and Recommendations in Assessing Potential Endocrine‐Disrupting Properties of Metals in Aquatic Organisms. Environ Toxicol Chem. 2023;42(12): 2564-2579.
28. Fjelldal PG, Hansen T, Breck O, Ørnsrud R, Lock EJ, Waagbø R, Wargelius A, Eckhard Witten P. Vertebral deformities in farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.)–etiology and pathology. J Appl Ichthyol. 2012;28(3):433-440.
29. Beraldo P, Canavese B. Recovery of opercular anomalies in gilthead sea bream, Sparus aurata L.: morphological and morphometric analysis. J Fish Dis. 2011; 34(1):21-30.
30. Ma Z, Zheng P, Guo H, Zhang N, Jiang S, Zhang D, Qin JG. Jaw malformation of hatchery reared golden pompano Trachinotus ovatus (Linnaeus 1758) larvae. Aquac Res. 2016;47(4):1141-1149.
31. Cobcroft JM, Battaglene SC. Jaw malformation in striped trumpeter Latris lineata larvae linked to walling behaviour and tank colour. Aquaculture. 2009;289(3-4):274-282.
32. Wasif Z, Saqlain M, Hayat S, Mahmood S, Suleman S. Effects of heavy metals on fishes. J Life Soc Sci. 2024;2024(1): 24-34.
33. Ługowska K, Sarnowski P. Heads or tails—fish hatching. Acta Ichthyologica et Piscatoria. 2011;41:13-17.
34. de Souza CS, Junior PD, de Kikuchi RK, Dominguez JM. Assessment of the Brazilian Coast Oil Spill Impact in the fish eggs and larvae development from the Tropical Continental Shelf. Reg Stud Mar Sci. 2022; 56:102635.
35. Morthorst JE, Brande-Lavridsen N, Korsgaard B, Bjerregaard P. 17β-estradiol causes abnormal development in embryos of the viviparous eelpout. Environ Sci Technol. 2014;48(24):14668-14676.
36. Cahu C, Infante JZ, Takeuchi T. Nutritional components affecting skeletal development in fish larvae. Aquaculture. 2003;227(1-4):245-258.
