اثرات محافظتی تجویز همزمان عصاره سرخارگل و هیدروکورتیزون در برابر ضایعات ریوی ناشی از سپسیس در رت
الموضوعات :
ریحانه زنده دل
1
,
سعید حصارکی
2
1 - گروه پاتوبیولوژی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
2 - گروه پاتوبیولوژی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
الکلمات المفتاحية: سرخارگل, هیدروکورتیزون, سپسیس, ضایعات ریوی,
ملخص المقالة :
سپسیس یک بحران سایتوکاینی شدید است که معمولا در ادامه عفونتهای سپتیسمی شده با درگیری سیستمی و ادم ریه موجب مرگ جاندار میشود. کورتیکواستروئیدها در بحران سپسیس تجویز می‌شوند تا از واکنشهای تخریبی ناشی از پاسخ اغراقی سیستم ایمنی بویژه در ادم ریه بکاهند. هدف از این مطالعه بررسی میزان اثرات محافظت کنندگی عصاره گیاه سرخارگل همراه هیدروکورتیزون در کاهش ادم و التهاب ریه های رت‌هایی است که دچار بحران سپسیس شده بودند. در این پژوهش رت‌ها به سه گروه تقسیم شدند که شامل گروه سپسیس (بدون پیش‌درمان) و گروه‌های 400 و 800 که هر روز به مدت دو هفته بترتیب دریافت کننده 400 و 800 میکروگرم برکیلوگرم عصاره سرخارگل همراه یک تزریق 8 میلیگرم برکیلوگرم هیدروکورتیزون در روز 14 (پس از ایجاد سپسیس) بودند. سپسیس به روش CLP در روز 14 ایجاد و رت‌ها 24 ساعت بعد به وسیله پنتوباربتال (250mg/kg-IP) کشته شدند. ابتدا نسبت وزن مرطوب به خشک ریه محاسبه شد. ارزیابی تعداد نوتروفیلهای مایع برونکوسی-آلوئولی (bronchoalveolar lavage) انجام شد. نیمی از بافت ریه برای هیستوپاتولوژی و نیم دیگر به منظور بررسی پارامترهای مالون دی‌آلدهاید (MDA) و ظرفیت آنتی‌اکسیدانی تام (TAC) اختصاص یافت. مشخص شد که نسبت وزن مرطوب به خشک ریه در گروه سپسیس از بقیه گروه‌ها بیشتر بود (01/0>P). با بررسی میزان مالوندی‌آلدهاید MDA به صورت معنی‌داری در گروه سپسیس نسبت به دو گروه دیگر بالاتر بود (01/0>P). اما ذخیره آنتی‌اکسیدانی در گروه 800 به شکل معنی‌داری نسبت به گروه سپسیس و گروه 400 بالاتر بود (01/0>P). درجات ضایعات هیستوپاتولوژی (اکسودای داخل آلوئولی و مجاری هوایی) نیز بترتیب در گروه های سپسیس، 400 و 800 کاهش معنی‌دار نشان داد. نتایج مطالعه حاضر نشان داد که عصاره سرخارگل در کاهش التهاب ناشی از بیماری سپسیس نقش دارد.
1. Kumar V. Pulmonary innate immune response determines the outcome of inflammation during pneumonia and sepsis-associated acute lung injury. Frontiers in immunology. 2020;11:1722.
2. Prauchner CA. Oxidative stress in sepsis: Pathophysiological implications justifying antioxidant co-therapy. Burns. 2017;43(3):471-85.
3. Sharifi-Rad M, Mnayer D, Morais-Braga MFB, Carneiro JNP, Bezerra CF, Coutinho HDM, et al. Echinacea plants as antioxidant and antibacterial agents: From traditional medicine to biotechnological applications. Phytother Res. 2018;32(9):1653-63.
4. Burlou-Nagy C, Bănică F, Jurca T, Vicaș LG, Marian E, Muresan ME, et al. Echinacea purpurea (L.) Moench: Biological and pharmacological properties. A review. Plants. 2022;11(9):1244.
5. Hubbard WJ, Choudhry M, Schwacha MG, Kerby JD, Rue III LW, Bland KI, Chaudry IH. Cecal ligation and puncture. Shock. 2005;24:52-7.
6. Deng Z, He M, Hu H, Zhang W, Zhang Y, Ge Y, et al. Melatonin attenuates sepsis-induced acute kidney injury by promoting mitophagy through SIRT3-mediated TFAM deacetylation. Autophagy. 2024;20(1):151-65.
7. Legras A, Giraudeau B, Jonville-Bera AP, Camus C, François B, Runge I, et al. A multicentre case-control study of nonsteroidal anti-inflammatory drugs as a risk factor for severe sepsis and septic shock. Crit Care. 2009;13(2):R43.
8. Barnes J, Anderson LA, Gibbons S, Phillipson JD. Echinacea species (Echinacea angustifolia (DC.) Hell., Echinacea pallida (Nutt.) Nutt.,Echinacea purpurea (L.) Moench): a review of their chemistry, pharmacology and clinical properties. J Pharm Pharmacol. 2005;57(8):929-54.
9. Guiotto P, Woelkart K, Grabnar I, Voinovich D, Perissutti B, Invernizzi S, et al. Pharmacokinetics and immunomodulatory effects of phytotherapeutic lozenges (bonbons) with Echinacea purpurea extract. Phytomedicine. 2008;15(8):547-54.
10. Tsai MS, Huang CH, Wang CH, Cheng HJ, Wu SN, Chang WT, Chen WJ. Post-Cardiac Arrest Hydrocortisone Use Ameliorates Cardiac Mitochondrial Injury in a Male Rat Model of Ventricular Fibrillation Cardiac Arrest. J Am Heart Assoc. 2021;10(10):e019837.
11. Moorthy AN, Rai P, Jiao H, Wang S, Tan KB, Qin L, et al. Capsules of virulent pneumococcal serotypes enhance formation of neutrophil extracellular traps during in vivo pathogenesis of pneumonia. Oncotarget. 2016;7(15):19327-40.
12. Singer M, Deutschman CS, Seymour CW, Shankar-Hari M, Annane D, Bauer M, et al. The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3). Jama. 2016;315(8):801-10.
13. Ingbar DH. Mechanisms of repair and remodeling following acute lung injury. Clin Chest Med. 2000;21(3):589-616.
14. Czermak BJ, Breckwoldt M, Ravage ZB, Huber-Lang M, Schmal H, Bless NM, et al. Mechanisms of enhanced lung injury during sepsis. Am J Pathol. 1999;154(4):1057-65.
15. Fein AM, Calalang-Colucci MG. Acute lung injury and acute respiratory distress syndrome in sepsis and septic shock. Crit Care Clin. 2000;16(2):289-317.
16. Tongyoo S, Permpikul C, Mongkolpun W, Vattanavanit V, Udompanturak S, Kocak M, Meduri GU. Hydrocortisone treatment in early sepsis-associated acute respiratory distress syndrome: results of a randomized controlled trial. Crit Care. 2016;20(1):329.
17. Park YJ, Lee MJ, Bae J, Lee JH, Lee HAR, Mun S, et al. Effects of Glucocorticoid Therapy on Sepsis Depend Both on the Dose of Steroids and on the Severity and Phase of the Animal Sepsis Model. Life (Basel). 2022;12(3).
18. Aziz M, Wang P. Glucocorticoid resistance and hyperlactatemia: A tag team to worsen sepsis. Cell Metab. 2021;33(9):1717-8.
19. Chen J, Zhou L, Li X, Wu X, Li Y, Si L, Deng Y. Protective effect of zerumbone on sepsis-induced acute lung injury through anti-inflammatory and antioxidative activity via NF-κB pathway inhibition and HO-1 activation. Naunyn-Schmiedeberg's Archives of Pharmacology. 2024;397(4):2241-55.
20. Aziz M, Ode Y, Zhou M, Ochani M, Holodick NE, Rothstein TL, Wang P. B-1a cells protect mice from sepsis-induced acute lung injury. Molecular Medicine. 2018;24(1):26.
21. Aarland RC, Bañuelos-Hernández AE, Fragoso-Serrano M, Sierra-Palacios ED, Díaz de León-Sánchez F, Pérez-Flores LJ, et al. Studies on phytochemical, antioxidant, anti-inflammatory, hypoglycaemic and antiproliferative activities of Echinacea purpurea and Echinacea angustifolia extracts. Pharm Biol. 2017;55(1):649-56.
22. Duan M, Jie J, Li C, Bai X, Hua S, Tang M, Li D. Echinatin alleviates sepsis severity through modulation of the NF-κB and MEK/ERK signaling pathways. Biomed Pharmacother. 2024;179:117359.
23. Li W, Wu AH, Zhu S, Li J, Wu R, D'Angelo J, Wang H. EGCG induces G-CSF expression and neutrophilia in experimental sepsis. Immunol Res. 2015;63(1-3):144-52.
24. Gharebaghi N, Hasanloei MA, Khalifani A, Pakzad S, Lahooti D. Neutrophil-to-lymphocyte ratio in patients with gram-negative sepsis admitted to intensive care unit. Anaesthesiology Intensive Therapy. 2019;51(1):11-6.
