بررسی تأثیر جهشهای میتوکندریایی بر میزان مقاومت به شیمیدرمانی در سرطان دهانه رحم
الموضوعات :آیت محبی فر 1 , کتایون مایلی 2 , صابر صفی نژاد 3 , کیومرث صفی نژاد 4
1 - دانشجوی دکتری، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، گروه زیست شناسی، واحد ورامین ،دانشگاه آزاد اسلامی ، پیشوا، تهران، ایران.
2 - کارشناسی ارشد، واحد تهران شرق ،دانشگاه آزاد اسلامی ، تهران، ایران.
3 - دامپزشک، گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران.
4 - استادیار گروه زیست شناسی، واحد بروجرد ،دانشگاه آزاد اسلامی ، بروجرد، ایران
الکلمات المفتاحية: سرطان دهانه رحم, مقاومت به شیمیدرمانی, DNA میتوکندریایی,
ملخص المقالة :
مقدمه: سرطان دهانه رحم یکی از شایعترین بدخیمیهای زنان است که شیمیدرمانی به عنوان یکی از روشهای اصلی درمان آن به کار میرود. با اینحال، بروز مقاومت دارویی در برخی بیماران، اثربخشی درمان را کاهش میدهد. مطالعات نشان دادهاند که جهشهای DNA میتوکندریایی میتوانند در تنظیم متابولیسم انرژی و پاسخهای سلولی به استرس نقش داشته باشند. این پژوهش با هدف بررسی تأثیر جهشهای A1555G، A3243G و A7445G در DNA میتوکندریایی بر میزان مقاومت به شیمیدرمانی در بیماران مبتلا به سرطان دهانه رحم انجام شد.
مواد و روشها : این مطالعه بر روی 100 بیمار مبتلا به سرطان دهانه رحم که تحت درمان با داروهای شیمیدرمانی قرار گرفتند و 100 فرد سالم بهعنوان گروه کنترل انجام شد. استخراج DNA به روش فنل-کلروفرم انجام شد و جهشهای موردنظر با روش PCR-RFLP بررسی و با توالییابی تأیید شدند. ارتباط جهشها با میزان پاسخ به درمان از طریق آزمونهای آماری ارزیابی شد.
یافتهها: نتایج نشان داد که جهش A3243G بهطور معناداری با افزایش مقاومت به شیمیدرمانی مرتبط است (P<0.05) درحالیکه جهشهای A1555G و A7445G ارتباط معناداری با مقاومت دارویی نشان ندادند(P>0.05).
نتیجهگیری: یافتههای این مطالعه نشان میدهد که جهش A3243G میتواند بهعنوان یک نشانگر بالقوه برای پیشبینی مقاومت به شیمیدرمانی در بیماران مبتلا به سرطان دهانه رحم در نظر گرفته شود. درک بهتر مکانیسمهای دخیل در این فرایند میتواند به توسعه راهکارهای درمانی شخصیسازیشده و افزایش کارایی درمانهای ضدسرطانی کمک کند.
1. Sung, H., Ferlay, J., Siegel, R. L., Laversanne, M., Soerjomataram, I., Jemal, A., & Bray, F.. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN Estimates of Incidence and Mortality Worldwide for 36 Cancers in 185 Countries. CA: a cancer journal for clinicians, 2021; 71(3), 209–249. DOI: 10.3322/caac.21660
2. Bray, F., Ferlay, J., Soerjomataram, I., Siegel, R. L., Torre, L. A., & Jemal, A. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians, 2018; 68(6), 394-424. DOI: 10.3322/caac.21492
3. Fadaei, R., & Alizadeh, R. Cervical cancer incidence and its risk factors in Iran: A nationwide study. Iranian Journal of Cancer Prevention, 2020; 13(2), e9559. DOI: 10.17795/ijcp-9559
4. Sharma, S., & Rao, A. Cisplatin and paclitaxel as treatment strategies in cervical cancer: A review. Journal of Cancer Research & Clinical Oncology, 2019; 145(3(, 567-576. DOI: 10.1007/s00432-019-02814-5
5. Holohan, C., van Schaeybroeck, S., Longley, D. B., & Johnston, P. G. Cancer drug resistance: An evolving paradigm. Nature Reviews Cancer, 2013; 13(10(, 714-726. DOI: 10.1038/nrc3599
6. Chao, S. P., & Chen, C. Y. Molecular mechanisms of drug resistance in cervical cancer: Advances and future perspectives. Oncology Letters, 2021; 22(2), 1-9. DOI: 10.3892/ol.2021.12837
7. Chandra, S., & Lee, A. Mitochondrial mutations and their role in cancer development and therapy resistance. Journal of Mitochondrial Medicine, 2020; 12(2), 67-78. DOI: 10.1007/s12272-020-01271-4
8. Wu, Y., & Liang, X. Mitochondrial DNA mutations in cancer: Potential as biomarkers for therapy resistance. Molecular Cancer Research, 2018; 16(3), 508-520. DOI: 10.1158/1541-7786.MCR-17-0544
9. Dhingra, S., & Zareen, N. Mitochondrial mutations and their roles in cancer metastasis. Cellular and Molecular Life Sciences, 2019; 76(8), 1691-1702. DOI: 10.1007/s00018-018-2905-2
10. Lee, D. H., & Park, T. K. Bioinformatics approaches in understanding drug resistance in cancer: Recent advances. Bioinformatics, 2020; 36(8), 2561-2570. DOI: 10.1093/bioinformatics/btz976
11. Xu, W., Liu, K., Li, Y., & Zhao, P. Mechanisms of apoptosis induced by natural plant compounds in cancer therapy. Molecular Cancer, 2025; 21(1), 30-44. DOI: 10.1186/s12885-020-01569-2
12. Sharma, V., Anderson, D., & Dhawan, A. Zinc oxide nanoparticles induce oxidative DNA damage and ROS-triggered mitochondria-mediated apoptosis in human liver cells (HepG2). Apoptosis, 2023; 25(1-2), 54-68. DOI: 10.1007/s10495-019-01541-9
13. Chou, C. H., Lin, C. H., & Chiu, Y. C. The role of oxidative stress in regulating the apoptosis pathway in breast cancer cell lines. Free Radical Biology and Medicine, 2024; 180, 215-234. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2022.05.006
14. Shu, H.Y., H.C. Li, W.Q. Xie, B. Ni and H.Y.Z. Zhou . Mitochondrial DNA variations in tongue squamous cell carcinoma. Bimed Rep. 2019; 10(1): 23-28. DOI:10.3892/br.2018.1167
15. Vyas, S., E. Zaganjor and M.C. Haigis. Mitochondria and Cancer. 2016; Cell, 166: 555-566. DOI:10.1016/j.cell.2016.07.002.
16. Maa, Y., F. Fang and Y. Yang . The study of mitochondrial A3243G mutation in different samples Mitochondrion, 2009; 9: 139-43. DOI: 10.1016/j.mito.2009.01.004
17. Bonora, M., Morganti, C., Morciano, G., Giorgi, C., Wieckowski, M. R., & Pinton, P. (2016). Comprehensive analysis of mitochondrial permeability transition pore activity in living cells using fluorescence-imaging-based techniques. Nature protocols, 11(6), 1067–1080. DOI:10.1038/nprot.2016.064
18. Porporato, P.E., N. Filigheddu, J.M. Bravo-San Pedro and G. Kroemer. Mitochondrial metabolism and cancer. Cell Research, 2018; 28: 265-280. DOI:10.1038/cr.2017.155
19. Prezant, T.R., J.V. Agapian, M.C. Bohlman, X. Bu, S. Oztas and W.Q. Qiu . Mitochondrial ribosomal RNA mutation associated with both antibiotic-induced and non-syndromic deafness. Nat Genet., 1993; 4(3): 289-94 DOI:10.1038/ng0793-289.
20. Schapira A. H. Mitochondrial diseases. Lancet (London, England), 2012; 379(9828), 1825–1834. DOI:10.1016/S0140-6736(11)61305-6