بررسی بیان ژن TYDC2 در بافت¬های ریشه، برگ، ساقه و ارتباط آن با میزان کالوس¬زایی این بافت¬ها در گیاه دارویی خشخاش(Papaver somniferum L.)
الموضوعات :
نازیلا باقری
1
,
علیرضا تاری‌نژاد
2
,
محمد مجیدی
3
,
Karim Hasanpur
4
1 - دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید مدنی تبریز
2 - گروه بیوتکنولوژی، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان ، ایران
3 - عضو هیات علمی
4 - دانشگاه تبریز
الکلمات المفتاحية: بیان ژن, توالی¬یابی, کالوسزایی, هورمون اکسین,
ملخص المقالة :
خشخاش با نام علمی Papaver somniferum L. متعلق به خانواده Papaveraceae است. بیش از 40 نوع آلکالوئید، در خشخاش شناخته شده است که مهمترین آنها مورفین، کدئین، تبائین، نوسکاپین و پاپاورین میباشد. هدف از این پژوهش؛ شناسایی میزان بیان ژن TYDC2 در سه بافت ساقه، ریشه و برگ گیاه دارویی خشخاش از طریق NGS بوده و ارتباط آن را با میزان کالوسزایی این بافتها بررسی میکند. در این تحقیق، توالی این ژن در سه بافت ساقه، ریشه و برگ گیاه خشخاش، از بخش Gene سایت NCBI انتخاب شد و توسط ابزار SRAtoolkit دانلود گردید و کیفیت آنها توسط ابزار fastqc مورد ارزیابی قرار گرفت و نمودار heatmap با نرم افزار Rstudio و سایر نمودارهای مقایسه بیان ژن، ترسیم گردید. در ادامه، محیط کشت موراشیک-اسکوگ با هورمون 2,4-D با غلظت 2 میلی گرم بر لیتر تهیه شد و بافتهای ذکر شده در این محیط قرار گرفتند و با میزان بیان ژن مقایسه شدند. در انتها، این ژن با ژن آنتولوژی توسط gprofiler مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج این بررسی نشان داد؛ میزان بیان ژن تولیدی در بافتهای ساقه، ریشه و برگ گیاه دارویی خشخاش، متفاوت بوده و میزان بیان در بافت برگ بیشتر از سایر بافتهای مورد آزمایش میباشد. کمترین میزان بیان نیز در بافت ریشه مشاهده گردید و همینطورنتایج کالوسزایی این سه بافت گیاهی با هورمون 2,4-D (2 میلی گرم بر لیتر) در شرایط درون شیشهای نشان داد، که میزان کالوسزایی در بافت برگ بیشتر از سایر بافتها بوده و کمترین میزان کالوسزایی نیز در بافت ریشه مشخص گردید، که نشان دهندهی ارتباط مستقیم بین بیان ژن و میزان کالوسزایی در بافتها است.
Alqethami, A., & Aldhebiani, A. Y. (2021). Medicinal plants used in Jeddah, Saudi Arabia: phytochemical screening. Saudi Journal of Biological Sciences, 28(1), 805-812
. Arumuganathan, K., & Earle, E. (1991). Nuclear DNA content of some important plant species. Plant molecular biology reporter, 9, 208-218
. Bagheri, N., Maleki Zanjani, B., & Ammarlou, A. (2020). A callus study of different explants of the medicinal Myrtle plant (Myrtus communis). Journal of Medicinal Plants Biotechnology, 6(1), 93-101
. Birnie, R., Bryce, S. D., Roome, C., Dussupt, V., Droop, A., Lang, S. H., . . . Stower, M. J. (2008). Gene expression profiling of human prostate cancer stem cells reveals a pro-inflammatory phenotype and the importance of extracellular matrix interactions. Genome biology, 9, 1-13
. Cánovas, R., Moffat, A., & Turpin, A. (2016). CSAM: compressed SAM format. Bioinformatics, 32(24), 3709-3716
. Consortium, G. O. (2008). The gene ontology project in 2008. Nucleic acids research, 36(suppl_1), D440-D444
. D'Antuono, L. F., Moretti, A., & Lovato, A. F. (2002). Seed yield, yield components, oil content and essential oil content and composition of Nigella sativa L. and Nigella damascena L. Industrial crops and products, 15(1), 59-69
. Diaz-Bárcena, A., & Giraldo, P. (2023). Exploring the research evolution of Papaver somniferum and Cannabis sativa: A bibliometric comparative analysis. Industrial Crops and Products, 203, 117143
. Eckert, R. L., Crish, J. F., Efimova, T., Dashti, S. R., Deucher, A., Bone, F., . . . Balasubramanian, S. (2004). Regulation of involucrin gene expression. Journal of Investigative Dermatology, 123(1), 13-22
. Ghasemi, S., Kumleh, H. H., & Kordrostami, M. (2019). Changes in the expression of some genes involved in the biosynthesis of secondary metabolites in Cuminum cyminum L. under UV stress. Protoplasma, 256, 279-290
. Hori, K., Yamada, Y., Purwanto, R., Minakuchi, Y., Toyoda, A., Hirakawa, H., & Sato, F. (2018). Mining of the uncharacterized cytochrome P450 genes involved in alkaloid biosynthesis in California poppy using a draft genome sequence. Plant and Cell Physiology, 59(2), 222-233
. Kanei, M., Horiguchi, G., & Tsukaya, H. (2012). Stable establishment of cotyledon identity during embryogenesis in Arabidopsis by ANGUSTIFOLIA3 and HANABA TARANU. Development, 139(13), 2436-2446
. Lee, D.-K., Geisler, M., & Springer, P. S. (2009). LATERAL ORGAN FUSION1 and LATERAL ORGAN FUSION2 function in lateral organ separation and axillary meristem formation in Arabidopsis
. Lee, M.-L. T., Kuo, F. C., Whitmore, G., & Sklar, J. (2000). Importance of replication in microarray gene expression studies: statistical methods and evidence from repetitive cDNA hybridizations. Proceedings of the National Academy of Sciences, 97(18), 9834-9839
. Marioni, J. C., Mason, C. E., Mane, S. M., Stephens, M., & Gilad, Y. (2008). RNA-seq: an assessment of technical reproducibility and comparison with gene expression arrays. Genome research, 18(9), 1509-1517
. Miranda, M., Vega-Gálvez, A., Quispe-Fuentes, I., Rodríguez, M. J., Maureira, H., & Martínez, E. A. (2012). Nutritional aspects of six quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) ecotypes from three geographical areas of Chile. Chilean journal of agricultural research, 72(2), 175
. Romero, I. G., Ruvinsky, I., & Gilad, Y. (2012). Comparative studies of gene expression and the evolution of gene regulation. Nature Reviews Genetics, 13(7), 505-516
. Sakai, H., Honma, T., Aoyama, T., Sato, S., Kato, T., Tabata, S., & Oka, A. (2001). ARR1, a transcription factor for genes immediately responsive to cytokinins. Science, 294(5546), 1519-1521
. Santelia, D., Vincenzetti, V., Azzarello, E., Bovet, L., Fukao, Y., Düchtig, P., . . . Geisler, M. (2005). MDR-like ABC transporter AtPGP4 is involved in auxin-mediated lateral root and root hair development. FEBS letters, 579(24), 5399-5406
. Shinozaki, K., Yamaguchi-Shinozaki, K., & Seki, M. (2003). Regulatory network of gene expression in the drought and cold stress responses. Current opinion in plant biology, 6(5), 410-417
. Yoshikawa, T., & Furuya, T. (1983). Regeneration and in vitro flowering of plants derived from callus cultures of opium poppy (Papaver somniferum). Experientia, 39, 1031-1033
