بررسی کارآیی قارچ‌کش فالکن در کنترل بیماری سوختگی برگ گندم ناشی از قارچ Mycosphaerella graminicola
الموضوعات :
دو فصلنامه تحقیقات بیماریهای گیاهی
محمد رضا اصلاحی
1
,
شیده موجرلو
2
1 - استادیار، بخش تحقیقات گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران.
2 - استادیار، گروه باغبانی و گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود، شاهرود، ایران.
تاريخ الإرسال : 13 الإثنين , ربيع الأول, 1438
تاريخ التأكيد : 06 الجمعة , جمادى الأولى, 1438
تاريخ الإصدار : 04 الأربعاء , ربيع الأول, 1439
الکلمات المفتاحية:
بلاچ برگی,
سپتوریوز گندم,
استروبیلورین‌ها,
مدیریت بیماری,
ملخص المقالة :
سپتوریوز برگی گندم ناشی از قارچMycosphaerella graminicola یکی از بیماریهای خسارت‌زای گندم می‌باشد. از آنجاییکه مقاومت ارقام پایدار نیست، کنترل بیماری در مناطقی که کاهش محصول قابل توجه است عمدتاً با استفاده از قارچکشها انجام می‌گیرد. در این تحقیق اثر قارچ‌کش فالکن در کنترل بیماری سپتوریوز گندم مورد بررسی قرار گرفت. آزمایش در قالب طرح بلوک کامل تصادفی در چهار تکرار در مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان انجام شد. از تیمار بدون قارچ‌کش به عنوان شاهد و قارچ‌کش تیلت برای مقایسه استفاده گردید. نتایج نشان داد که تیمار قارچ‌کش فالکن در مقایسه با شاهد و تیلت دارای مقدار سطح زیر منحنی پیشرفت بیماری کمتر، عملکرد و وزن هزار دانه بیشتری بود. روند شدت بیماری در قارچ‌کش تیلت و فالکن مشابه هم بود. بر اساس نتایج بدست آمده از این پژوهش، در یک برنامه تناوبی استفاده از قارچکشها در مبارزه با بیماری سپتوریوز برگی، قارچ‌کش فالکن جایگزین مناسبی برای قارچ‌کش تیلت می‌باشد.
المصادر:
Adhikari TB, Cavaletto JR, Dubcovsky J, Gieco JO, Schlatter AR and Goodwin SB. 2004. Molecular mapping of the Stb4 gene for resistance to Septoria tritici blotch in wheat. Phytopathology 94: 1198–1206.
Cools HJ, Mullins JGL, Fraaije BA, Parker JE, Kelly DE, Lucas JA and Kelly SL. 2011. Impact of recently emerged sterol 14-demethylase (CYP51) variants of Mycosphaerella graminicola on azole fungicide sensitivity. Applied and Environmental Microbiology 77: 3830–3837.
Cuthbert RD. 2011. Molecular mapping of Septoria tritici blotch resistance in hexaploid wheat (Triticum aestivum L.). [PhD]. [Winnipeg, Canada]: The University of Manitoba.
Dadrezaei ST, Minasian V, Torabi M and Lotf Ali Ayeneh Gh A. 2003. Effect of Septoria tritici infections at different growth stages on yield and yield components of three wheat cultivars. Seed and Plant Improvement Journal 19: 101–116.
Dalvand M and Roohparvar R. 2013. Evaluation of Iranian wheat cultivars reaction to Septoria tritici blotch and virulence survey of Mycosphaerella graminicola in Khuzestan province. International Research Journal of Applied and Basic Science 5: 1097–1100.
Dutzmann S and Suty-Heinze A. 2004. Prothioconazole: a broadspectrum demethylation-inhibitor (DMI) for arable crops. Pflanzenschutz-Nachrichten Bayer 57: 249–264.
Eyal Z, Scharen AL, Prescott JM and Van Ginkel M. 1987. The Septoria Diseases of Wheat: Concepts and Methods of Disease Management. Mexico: CIMMYT, 54 pp.
Gaurilčikienė I, Butkutė B and Mankevičienė A. 2010. A multi aspect comparative investigation on the use of strobilurin and triazole-based fungicides for winter wheat disease control. pp. 69–94. In O Carisse (ed). Fungicides. [cited 2013 Oct 20]. Available from: http://www.intechopen.com/books/fungicides
Goodwin SB. 2007. Back to basics and beyond: increasing the level of resistance to Septoria tritici blotch in wheat. Australasian Plant Pathology 36: 532–538.
Köller W and Scheinpflug H. 1987. Fungal resistance to sterolbio synthesis inhibitors: a new challenge. Plant Disease 71: 1066–1074.
Krupinsky J. 1999. Influence of cultural practices on Septoria/Stagonospora diseases. pp. 105–110, In M van Ginkel, A McNab and Krupinsky J (eds). Septoria and Stagonospora diseases of cereals: A compilation of global research. Mexico: CIMMYT.
Leroux P, Albertini C, Gautier A, Gredt M and Walker AS. 2007. Mutations in the CYP51 gene correlated with changes in sensitivity to sterol 14α demethylation inhibitors in field isolates of Mycosphaerella graminicola. Pest Management Science 63: 688–698.
Palmer C and Skinner W. 2002. Mycosphaerella graminicola: latent infection, crop devastation and genomics. Molecular Plant Pathology 3: 63–70.
Pedersen E. 1992. The effect of crop rotation on development of the Septoria disease complex on spring wheat in Saskatchewan. Canadian Journal of Plant Pathology 14: 152–158.
Petrak F and Esfandiari E. 1941. Beiträge zur Kenntnis der Iranischen Pilzflora. Annals of Mycology 39: 204–228.
Quaedvlieg W, Kema G, Groenewald J, Verkley G, Seifbarghi S, Razavi M, Gohari AM, Mehrabi R and Crous P. 2011. Zymoseptoria gen. nov.: a new genus to accommodate Septoria-like species occurring on graminicolous hosts. Persoonia:Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi 26: 57.
Sanderson F and Gaunt R. 1980. Commercial control of speckled leaf blotch (Mycosphaerella graminicola, imperfect state Septoria tritici) on wheat using fungicides. Paper presented at: 3rd International Wheat Conference; May 22 - June 3; Madrid, Spain.
Sarri EE and Prescott JM. 1975. A scale for appraising the foliar intensity of wheat disease. Plant Disease Reporter 59:377–380.
Shipton W, Boyd WRJ, Rosielle A and Shearer B. 1971. The common Septoria diseases of wheat. The Botanical Review 37: 231–262.
Somai-Jemmali L, Selim S, Siah A and Hamada W. 2014. Fungicide sensitivity of Mycosphaerella graminicola Tunisian isolates: the importance of drug transporter genes in the process of fungicide tolerance. Phytopathologia Mediterranea 53: 83−93.
Stammler G, Carstensen M, Koch A, Semar M, Strobel D and Schlehuber S. 2008. Frequency of different CYP51-haplotypes of Mycosphaerella graminicola and their impact on epoxiconazole-sensitivity and field efficacy. Crop Protection 27: 1448–1456.
Tompkins D, Fowler D and Wright A. 1993. Influence of agronomic practices on canopy microclimate and Septoria development in no-till winter wheat produced in the Parkland region of Saskatchewan. Canadian Journal of Plant Science 73: 331–344.
Zhan J, Stefanato FL and McDonald BA. 2006. Selection ofincreased cyproconazole tolerance in Mycosphaerella graminicola through local adaptation and response to hostresistance. MolecularPlant Pathology 7: 259–268.
_||_
