استفاده از تیمار فسفیت پتاسیم جهت کنترل بیماری شانکر باکتریایی بادام (Pseudomonas syringae pv. syringae) در آزمایشگاه و باغ

 

 

الموضوعات :

محمدرضا ارژنگ ¹ ( دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه علوم و مهندسی باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران )
جلال غلام نژاد ² ( دانشیار، گروه علوم و مهندسی باغبانی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران )
اعظم جعفری ³ ( دانشیار، گروه علوم و مهندسی باغبانی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران )

تاريخ الإرسال : 26 الأحد , جمادى الأولى, 1445 تاريخ التأكيد : 21 الجمعة , رجب, 1445 تاريخ الإصدار : 03 الأربعاء , صفر, 1446

الکلمات المفتاحية: شانکر باکتریایی, بادام, فسفیت پتاسیم, Pseudomonas syringae pv.syringae,

ملخص المقالة :

بادام dulcis Prunus یکی از مهم­ترین درختان هسته‌دار در مقیاس تجاری در ایران و در استان چهار‌محال ‌و بختیاری است. بیماری شانکر باکتریایی با عامل بیمارگر Pseudomonas syringae-pv. syringae در بادام یکی از خسارت‌زاترین بیماری‌ها در سطح باغات بادام استان است و در سال‌های اخیر، با گسترش علایم شانکر همراه با ترشح صمغ و پلاست شکوفه در باغات استان مشاهده می‌شود. این باکتری از طریق زخم‌های ریز در برگ‌ها و شاخه‌ها وارد درخت بادام شده و باعث ایجاد التهابات و سیاهی در برگ‌ها و شاخه‌ها می‌شود. برای کنترل این بیماری، استفاده از ترکیبات مسی نظیر بردوفیکس و اکسی‌کلرید مس علاوه بر مقاومت در جمعیت باکتری‌ها، تأثیر پایین عملکرد و گیاه‌سوزی را به همراه دارد؛ لذا با استفاده از روش‌های جایگزین و به­کار‌گیری ترکیبات شیمیایی نظیر فسفیت‌پتاسیم باعث تحریک در واکنش‌های دفاعی گیاه در برابر بیمارگر می‌شود. در این تحقیق از غلظت‌های 20، 30 و 40 میلی‌گرم در لیتر فسفیت پتاسیم و ترکیب بردو جهت کنترل باکتری عامل شانکر باکتریایی در آزمایشگاه روی محیط نوترینت آگار و باغ استفاده شد. نتایج نشان داد فسفیت پتاسیم در مقایسه با ترکیب بردو در سطح قابل قبولی قادر به کنترل این باکتری در هر دو شرایط محیطی آزمایشگاه و باغ قرار داشت. این ترکیب علاوه بر اینکه مادۀ مغذی است، به­عنوان ترکیبی بی­ضرر می­توان در کنترل این بیماری از آن بهره جست. غلظت‌های 20، 30 و 40 میلی­گرم در لیتر فسفیت پتاسیم به ترتیب توانستند میزان رشد باکتری را به میزان 88/40، 78/47 و 93/52 درصد در مقایسه با شاهد کاهش دهند. در باغ نیز تعداد لکه برگی­ها در اثر مصرف غلظت­های دو، سه و پنج در هزار فسفیت پتاسیم به ترتیب به تعداد 23، 19 و 14 (در مقایسه با شاهد با تعداد 38 لکه) مورد مشاهده قرار گرفت. فسفیت پتاسیم علاوه بر مقرون به صرفه بودن از نظر اقتصادی نسبت به قارچ­کش‌های مسی، برای سلامتی انسان و محیط زیست کم‌خطر نیز است. این پژوهش نشان داد فسفیت‌پتاسیم همانند قارچ­کش‌های مسی نظیر اثر ضد­باکتریایی قابل قبول دارد. 

 

المصادر:

اطمینانی، ف. و اطمینانی، ا. 1399. فعالیت ضد¬باکتریایی عصاره¬های هیدرو¬الکلی گیاه آویشن و به¬لیمو بر باکتری Pseudomonas syringae در شرایط آزمایشگاهی. پژوهش¬های سلولی و مولکولی 33(2): 136-143.
باباعلی، ا.، کشورزی، م.، بوذری، ن.، شکیب، ع.م. و حسین آوا، س. 1392. مقاومت نسبی برخی ژنوتیپ¬های بومی و تجاری گیلاس و آلبالو به Pseudomonas syringae. مجله به نژادی نهال و بذر 29(2): 295-310.
رسولی، م. 1395. اثر سطوح مختلف فسفیت پتاسیم و اسید بوریک روی درصـد تـشـکـیـل مـیوه ارقام مختلف انگور (.Vitis vinifera L). پژوهش¬های میوه¬کاری 1(1): 56-69.
رنجبری، ش.، کشاورزی، م.، بوذری، ن.، کاکوان، ن. و صالحی، ز. ۱۴۰۰. بررسی سطوح نسبی مقاومت به شانکر باکتریایی در ژرم پلاسم ایرانی آلبالو. پژوهش¬های کاربردی در گیاهپزشکی (دانش کشاورزی) 10(4): 25-35.
قاضی¬زاده هاشمی، س.ع.، اصغر¬زاده، ا. و تاتاری، م. 1398. اثر سطوح مختلف نیتروژن و تراکم کاشت بر جذب عـناصر غذایی نیتروژن، فسفر و پتاسیم و کارآیی مصرف و جذب نیتروژن در میوه گیاه بالنگو. هفتمین کنفرانس ملی پژوهش¬های کاربردی در علوم کشاورزی غذای سالم از مزرعه تا سفره.
ملکوتی، م.ج.، شهابی، ع.ا. و بازرگان، ک. 1395. پتاسیم در کشاورزی، نقش پتاسیم در تولید محصولات کشاورزی سالم. انتشارات آثار علمی اهدایی، چاپ دوم. 720 صفحه.
Achary, V.M.M., Ram, B., Manna, M., Datta, D., Bhatt, A., Reddy, M.K. and Agrawal, P.K. 2017. Phosphite: a novel P fertilizer for sweed management and pathogen control. Plant Biotechnology Journal 15(12): 1493-1508.‏
Agrios, G.N. 2005. Plant pathology 5th edition: Elsevier academic press. Burlington, Ma. USA.
Amtmann, A., Troufflard, S. and Armengaud, P. 2008. The effect of potassium nutrition on pest and disease resistance in plants. Physiologia Plantarum 133(4): 682-691.‏
Casas-Agustench, P., Salas-Huetos, A. and Salas-Salvadó, J. 2011. Mediterranean nuts: origins, ancient medicinal benefits and symbolism. Public Health Nutrition 14(12A): 2301-2296.
Cacique, A., Barbosa, E., de Pinho, GP. and Silverio, F.O. 2019. Maceration extraction conditions for determining the phenolic compounds and the antioxidant activity of Catharanthus roseus (L.) G.Don. Ciencia e Agrotecnologia 44(2), http://dx.doi.org/10.1590/1413-7054202044017420.
Chaves, M.M. and Oliveira, M.M. 2004. Mechanisms underlying plant resilience to water deficits: prospects for water–saving agriculture. Journal of Experimental Botany 55(407): 2365-2384.
Cherif, M., Menzies, J.G., Benhamou N. and Bélanger, R.R. 1992. Studies of silicon distribution in wounded and Pythium ultimum infected cucumber plants. Physiological and Molecular Plant Pathology 41: 371-385.
Costa, B.H.G., de Resende, M.L.V., Monteiro, A.C.A., Ribeiro Júnior, P.M., Botelho, D.M.D.S. and Silva, B.M.D. 2018. Potassium phosphites in the protection of common bean plants against anthracnose and biochemical defense responses. Journal of Phytopathology 166(2): 95-102.‏
De Gara, L., de Pinto, M.C. and Tommasi, F. 2003. The antioxidant systems vis-a-vis reactive oxygen species during plant–pathogen interaction. Plant Physiology and Biochemistry 41: 863-870.
Deliopoulos, T., Kettlewell, P.S. and Hare, M.C. 2010. Fungal disease suppression by inorganic salts: a review. Crop Protection 29(10): 1059-1075.‏
Dordas, C. 2008. Role of nutrients in controlling plant diseases in sustainable agriculture. A review. Agronomy for Sustainable Development 28(1): 33-46.‏
Ercolin, F. and Reinhardt, D. 2011. Successful joint ventures of plant: Arbuscular mycorrhiza and beyond. Trends Plant Science 16: 356-362.
Eshraghi, L.E., Anderson, J., Aryamanesh, N., Shearer, B., McComb, J., Hardy, G.S. and O’Brien, P.A. 2011. Phosphite primed defence responses and enhanced expression of defense genes in Arabidopsis thaliana infected with Phytophthora cinnamomi. Plant Pathology 60(6): 1086-1095.‏
Flowers, T.J. and Dalmond, D. 1992. Protein synthesis in halophytes: the influence of potassium, sodium and magnesium in vitro. Plant and Soil 146: 153-161.
Gašić, K., Prokić, A., Ivanović, M., Kuzmanović, N., and Obradović, A. 2012. Differentiation of Pseudomonas syringae pathovars originating from stone fruits. Pesticidi i fitomedicina, 27(3): 219-229.‏
Gerdemann, J.W. 1968. Vesicular-arbuscular mycorrhiza on plant growth. Annual Review of Phytopathology 6: 397-418.
Gholamnezhad, J. 2016. Transcriptomics and useful techniques of defense gene expression evaluation of plant. Applied Biology 6(4): 21-42.
Gholamnezhad, J. 2017. Effect of plant extracts against apple gray mold caused by Botrytis cinerea. Applied Microbiology in Food Industries 3(1): 53-66.
Gholamnezhad, J. 2019. Effect of plant extracts on activity of some defense enzymes of apple fruit in interaction with Botrytis cinerea. Journal of Integrative Agriculture 18(1): 115-123.
Gholamnezhad, J., Sanjarian F., Mohammadi Goltapeh, E., Safaei, N. and Razavi, Kh. 2016. Effect of salicylic acid on enzyme activity in wheat in immediate early time after infection with Mycosphaerella graminicola. Scientia Agriculturae Bohemica, 47(1): 1-8.
Goellner, K. and Conrath, U. 2008. Priming: it’s all the world to induced disease resistance. Pp: 233-242. ‏In: Collinge, D.B., Munk, L., Cooke, B.M. (eds). Sustainable Disease Management in a European context. Springer.
Kamble, S.R., Navale A.M. and Sonawane. R.B. 2009. Response of mango seedlings to VA-mycorrhizal inoculation. International Journal of Plant Protection 2(2): 161-164.
Kennelly, M.M., Cazorla, F.M., de Vicente, A., Ramos, C. and Sundin, G.W. 2007. Pseudomonas syringae diseases of fruit trees: progress toward understanding and control. Plant Disease 91(1): 4-17.‏
Liang, Y.C., Wong, J.W.C. and Long, W. 2005. Silicon-mediated enhancement of cadmium tolerance in maize (Zea mays L.) grown in cadmium contaminated soil. Chemosphere 58: 475-483.
Liljeroth, E., Lankinen, A., Wiik, L., Burra, D.D., Alexandersson, E. and Andreasson, E. 2016. Potassium phosphite combined with reduced doses of fungicides provides efficient protection against potato late blight in large-scale field trials. Crop Protection 86: 42-55.‏
Lim, S., Borza, T., Peters, R.D., Coffin, R.H., Al-Mughrabi, K.I., Pinto, D.M. and Wang-Pruski, G. 2013. Proteomics analysis suggests broad functional changes in potato leaves triggered by phosphites and a complex indirect mode of action against Phytophthora infestans. Journal of Proteomics 93: 207-223.‏
Lin, H.C., Chang, H. and Tzeng, K.C. 2008. Characterization of novel strains of citrus canker bacterium from citrus in Taiwan. Journal of Taiwan Agricultural Researches 57: 265-278.‏
Lobato, M.C., Machinandiarena, M.F., Tambascio, C., Dosio, G.A., Caldiz, D.O., Daleo, G.R. and Olivieri, F.P. 2011. Effect of foliar applications of phosphite on post-harvest potato tubers. European Journal of Plant Pathology 130: 155-163.‏
Mirsalehian, A., Feizabadi, M., Nakhjavani, F.A., Jabalameli, F., Goli, H. and Kalantari, N. 2010. Detection of VEB-1, OXA-10 and PER-1 genotypes in extended-spectrum β-lactamase-producing Pseudomonas aeruginosa strains isolated from burn patients. Burns 36(1): 70-74.‏
Moayedi, A., Rezaei, K., Moini, S. and Keshavarz, B. 2011. Chemical compositions of oils from several wild almond species. Journal of the American Oil Chemists' Society 88(4): 503-508.‏
Mostajeran, A. and Rahimi-Eichi, V. 2009. Effects of drought stress on growth and yield of rice Oryza sativa L.) cultivars and accumulation of proline and soluble sugars in sheath and blades of their different ages leaves. American-Eurasian Journal of Agriculture and Environmental Sciences 5(2): 264-272.
Rademaker, J.L., Hoste, B., Louws, F.J., Kersters, K., Swings, J., Vauterin, L. and de Bruijn, F.J. 2000. Comparison of AFLP and rep-PCR genomic fingerprinting with DNA-DNA homology studies: Xanthomonas as a model system. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology 2: 665-677.
Samavi, S., Hassanzadeh, N., Faghihi, M.M. and Danesh, Y.R. 2009. Effects of thyme (zaatar) essential oil and some chemical compounds in the control of citrus bacterial canker in Iran. Journal of Plant Pathology 91: 691-696.‏
Schaad, N.W., Jones, J.B. and Chun, W. 2001. Laboratory Guide for Identification of Plant, third edition. Phytopathological Society Press. USA.
Shamshiri, M.H. and Fattahi, H. 2014. Effects of arbuscular mycorrhizal fungi on photosystem II activity of three pistachio rootstocks under salt stress as srobed. Russian Journal of Plant Physiology 63(1): 101–110.
Silva, O.C., Santos, H.A.A., Dalla Pria, M. and May-De Mio, L.L. 2011. Potassium phosphite for control of downy mildew of soybean. Crop Protection 30(6): 598-604.‏
Sulikowska, M. and Sobiczewski, P. 2008. Pseudomonas spp. isolated from stone fruit trees in Poland. Zemdirbyste-Agriculture 95(3): 166-170.‏
Thomidis, T., Tsipouridis, C., Exadaktylou, E. and Drogoudi, P. 2005. Comparison of three laboratory methods to evaluate the pathogenicity and virulence of ten Pseudomonas syringae pv. syringae strains on apple, pear, cherry and peach trees. Phytopathology 33: 137-140.