اثر سرب و مس بر برخی صفات فیزیولوژیکی گونه گیاهی خلر (Lathyrus sativus)
الموضوعات : یافته های نوین کشاورزیسیده مهتاب بلادی 1 , علی کاشانی 2 , داوود حبیبی 3 , فرزاد پاک نژاد 4 , محیا گلشن 5
1 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کرج، باشگاه پژوهشگران جوان، کرج، ایران
2 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کرج ، گروه زراعت و اصلاح نباتات، کرج، ایران
3 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کرج ، گروه زراعت و اصلاح نباتات، کرج ، ایران.
4 - دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کرج ، گروه زراعت و اصلاح نباتات، کرج ، ایران.
5 - فارغ التحصیل کارشناسی ارشد دانشکده کشاورزی دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج
الکلمات المفتاحية: کلروفیل, خلر, مالون دی آلدهید (MDA), سوپراکسید دیسموتاز (SOD),
ملخص المقالة :
این تحقیقبه منظور بررسی اثرات سرب و مس بر گونه گیاهی خلر در خاک های آلوده به این عناصرصورت پذیرفت. بر این اساس به منظور برآورد و شناسایی توانایی گیاه خلر نسبت به عناصرسنگین سرب و مس آزمایشی در پاییز 1387 بر خلر(Lathyrussativus) رقم زنجان انجام شد. این آزمایش به صورت فاکتوریلو در قالب طرح کاملا تصادفی انجام شد. که در این راستا از چهار سطح سرب (2 Pb(NO3)) 0، 200، 400 و800 میلی گرم بر کیلوگرم خاک و چهار سطح مس 2) (Cu(SO4)0،150،300 و400 میلی گرم بر کیلوگرم خاکاستفاده شد. اگرچه نتایج آزمایش حاکی از افت محتویکلروفیل کل و غشای لیپیدی تحت سمیت عناصر سنگین سرب و مس بود اما فعالیت بیشتر آنزیم سوپر اکسید دیسموتاز(SOD) با افزایشسطوح سرب و مس در این گونه گیاهی مانع از تولید بیشتر رادیکال های آزاد اکسیژنتولیدی در این گونه گیاهی شد، به طوری کههمبستگی منفی بین محتوی کلروفیلa، کلروفیلb وکلروفیل کل با آنزیم سوپر اکسید دیسموتاز(SOD) مشاهده شد، همچنین همبستگی بین ظرفیت مالوندی آلدهید (MDA) کهوسیله ای برای اندازه گیری فرایند پراکسیداسیون لیپید است با آنزیم سوپر اکسیددیسموتاز(SOD) مثبتبود بدین معنی که افزایش ظرفیت این بیومارکر که نشان دهنده ی تولید بیشتر اکسیژنبرای تخریب غشای لیپیدی است با فعالیت بیشتر آنزیم سوپر اکسید دیسموتاز(SOD) برای هضم وحذف بیشتر اکسیژن های مخرب همراه بود. همچنین وضعیت آب دربافت برگ ها (RWC) تحتتاثیر این عناصر قرار نگرفت.
1- Ali, B. M., Vajpayee, P., Tripathi, R. D., Rai, U. N., Singht, S. N. and Singhgh, S. P. 2003. Phytoremediation of lead, nickel, and copper by salix acmophylla boiss. : Role of Antioxidant Enzymes and Antixidant substances. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 70: 462-469.
2- Arnon, D. I. 1949. Copper enzyme in isolated chloroplast, polyphenol oxidase in betavulgaris. Plant physiology, 24: 1-15.
3- Brunet, J., Repellin, A., Varrault, G., Terrync, N. and Zuily-fodil, Y. 2008. Leadaccumulation in the roots of grass pea (lathyrus sativusl): a novel plant for phytoremediation systems?. C.R Biologies, 331, 859-864.
4- Davey, M. W., Stals, E., Panis, B., Keulemans, J. and Swennen, R. L. 2005. High Throughput determination of mabndialdehyde in plant tissues. Analytical Biochemistry 347: 201-207.
5- Estrella-Gomez, N., Mendoza–Cozatl, D., Moreno–Sanchez, R., Gonzalez–Mendoza, D., Zapata–Perez, O., Martinez–Hernandez, A. and Santamaria, J. M. 2009. The pb-hyperaccumulator aquatic fern salvinia minima baker, responds to pb 2+ by increasing phytochelatins via changes in smpcs expression and in phytochelatin synthase activity. Aquatic Toxicology, 91, 320-328.
6- Gaetke, L. M. and Chow, C. K. 2003. Copper toxicity oxidative stress and antioxidant nutrients. Toxicology, 189: 197-163.
7- Garnczarska, M. and Ratajczak, L. 2000. Metabolic responses of lemna minor to lead ions, II. Induction of antioxidant enzymes in roots. Acta Physiologiae Plantarum, 22: 429-432.
8- Groppa,. M. D., Tomaro, M. L. and Benarides, M. P. 2007. Polyamines and heavy metal stress: the antioxidant behavior of spermine in cadmium – and copper – treated wheat leaves. Biometals, 20: 185-195.
9- Khatun, S., Babar Ali, M., Hahn, E. J. and Paek, K. Y. 2008. Copper toxicity in Withania somnifera : Growth and antioxidant enzymes responses of in vitro grown plants. Environmental and Experimental Botany, 64: 279-285.
10- Kupper, H., Kiipper, F. and Spiller, M. 1996. Environmental relevance of heavy metal-substituted chlorophylls using the example of water plants. Journal of Experimental Botany, 47, 259-266.
11- Levitt, J. 1980. Response of Plants to Environmental Stresses, Vol. 2, Water, Radiation, Salt and Other Stresses, Academic Press, New York, 650p.
12- Lin, C., Liu, J., Liu, L., Zhu, T., Sheng, L.and Wang, D. 2009. Soil amendment application frequency contributes to phytoextraction of lead by sunflower at different nutrient levels. Environmental and Experimental Botany, 65, 410-416.
13- Luis, A. D. R., Lyon, D. S., olah, I., Glick, B. and Salin, M. 1983. Immunocytochemical evidence for a peroxisomal localization of manganese superoxide dismutase in leaf protoplasts from a higher plant. Planta , 158: 216-224.
14- Misra, H. p. and Fridovich, I. 1972. The generation of superoxide radical during auto oxidation. J. Biol. Chem. 247, 6960-6966.
15- Morgan, J. M. 1988. The use of coleoptile responses to osmoregulation; growth and yield. Annals of Botany 62, 193-8.
16- Navari-Izzo, F., Quartacci, M. F., Pinzino, O., Vecchia, F. D. and Sgherii, C. L. M. 1998. Thilakoid-bound and stromal antioxidative enzymes in wheat treated with exess copper. Plant physiology. 104: 630-638.
17- Prasad, M. N. V., Malec, P. and Waloszek, A. 2001. Physical responses of Lemma Trisulca L. to cadmium and copper bioaccumulation. Plant Sci. 161, 881-889.
18- Sharma., P. and Dubey, R. S. 2005. Lead Toxicity in plants. Plant physiol., 17, 35-52.
19- Sharma, S. S., Kaul, S., metwally, A., Goyal, K. C., Finkemeier, I. and Dietz, K. J. 2004. Cadmium toxicity to barley (Hordeum vulgar) as affected by varying Fe nutritional status. Plant science, 166: 1287-1295.
20- Steven, H. and Sidney, M. H. 1987.Lipid peroxidase in samples as measured by liquid chromatography. Separeathion or malondialdehyde tiobarbituric acid. Elin. Chem. 32: 214-220.
21- Sudhakar, C., Syamalabai, L. and Veeranjaneyulu K. 1992. Lead tolerance of certain legume species grown on lead ore tailings. Agriculture, ecosystems and environment, 41, 253-261.
22- Wainwright, S. G. and Woolhouse, H.W. 1976. Physiological mechanisms of heavy metal tolerance. In: M.J. Chadwick and G. T. Goodman (Editors), The Ecology of Resource Degradation and Renewal. Blackwell
