مقایسه تاثیر مترونیدازول با پیوسیانین سودوموناس آئروژینوزا بر روی تریکوموناس واژینالیس در شرایط برون تنی
الموضوعات :
سارا عبدی زاده جوزم
1
,
زهره مومنی
2
,
مونا فرهادی
3
1 - کارشناسی ارشد، گروه میکروبیولوژی، واحد کرج، دانشگاه آزاد اسلامی، کرج، ایران
2 - استادیار گروه میکروبیولوژی، واحد کرج، دانشگاه آزاد اسلامی، کرج،ایران.
3 - استادیار گروه میکروبیولوژی، واحد کرج، دانشگاه آزاد اسلامی، کرج،ایران.
تاريخ الإرسال : 13 الثلاثاء , رمضان, 1444
تاريخ التأكيد : 04 الأحد , صفر, 1445
تاريخ الإصدار : 21 الأربعاء , صفر, 1445
الکلمات المفتاحية:
سودوموناس آئروژینوزا,
رده سلولی,
مترونیدازول,
تریکوموناس واژینالیس,
رنگدانه پیوسیانین,
ملخص المقالة :
سابقه و هدف: رنگدانه پیوسیانین ترکیبی با پتانسیل اکسایش و احیا، آبی رنگ و از نظر متابولیکی فعال می باشد و اثرات دارویی بر سلول های یوکاریوتی و پروکاریوتی دارد. تریکوموناس واژینالیس عامل ایجادکننده تریکومونیازیس، مهم ترین بیماری غیرویروسی مقاربتی در جهان است. هدف از این مطالعه، بررسی اثر رنگدانه پیوسیانین استخراج شده از باکتری سودوموناس آئروژینوزا برروی انگل تریکوموناس واژینالیس و رده سلولیPC12 بود.
مواد و روش ها: این مطالعه به روش مداخله ای تجربی انجام شد. ابتدا رنگدانه پیوسیانین به کمک کلروفرم از سویه سودوموناس آئروژینوزا RTCC1474 استخراج و خلوص نسبی رنگدانه با استفاده از کروماتوگرافی لایه نازک، اسپکتروفتومتری UV-Vis و FTIR تایید شد. سپس تاثیر غلظت های مختلف آن روی تریکوموناس واژینالیس و رده سلولیPC12 مورد بررسی قرار گرفت.
یافته ها: رنگدانه پیوسیانین در غلظت µg/ml 10000 در 24 ساعت و غلظت های µg/ml 5000 و2500 در 48 ساعت باعث مهار صددرصد رشد انگل شد. میزان IC50 آن در 48 ساعت µg/ml17/44 بوده و نیز CC50 این رنگدانه بر روی رده سلولی µg/ml930 به دست آمد، بنابراین پیوسیانین برروی انگل تریکوموناس واژینالیس موثر بوده و سمیت آن بر روی رده سلولی نسبت به انگل با غلظت 53 برابر است (32/53 =SI ).
نتیجه گیری: با توجه به اثر بازدارندگی رنگدانه پیوسیانین بر رشد تریکوموناس واژینالیس براساس نتایج حاضر، می توان با تحقیقات بیشتر روی استخراج و خالص سازی رنگدانه پیوسیانین از انواع جدایه های سودوموناس آئروژینوزا و نیز با آزمایشات تکمیلی در شرایط برون تنی و درون تنی، قضاوت دقیق تری در رابطه با توان ضدانگلی این رنگدانه به دست آورد.
المصادر:
Rein MF. Trichomoniasis. Hunter's tropical medicine and emerging infectious diseases:10th ed; Elsevier; 2020;731-733.
Van Gerwen O,1 Camino A Sharma J,1 Kissinger P, Muzny Ch.Epidemiology, Natural History, Diagnosis, and Treatment of Trichomonas vaginalis in Men; CID 2021:73 (15 September) 1119-1124. https://doi.org/10.1093/cid/ciab514.
Gahlout M · Chauhan P · Prajapati H · Tandel N · Rana S · Solanki D · Patel N. Characterization, application and statistical optimization approach for enhanced production of pyocyanin pigment by Pseudomonas aeruginosa DN9; Systems Microbiology and Biomanufacturing (2021) 1:459–470 https://doi.org/10.1007/s43393-021-00033-z
Saleem H, Mazhar S, Syed Q, Javed MQ, Adnan A. Bio-characterization of food grade pyocyanin bio-pigment extracted from chromogenic Pseudomonas species found in Pakistani native flora. Arab J Chem [Internet]. 2021;14(3):103005. Available from: https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2021.103005
Cheluvappa R. Standardized chemical synthesis of Pseudomonas aeruginosa pyocyanin. MethodsX [Internet]. 2014;1(1):67–73. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.mex.2014.07.001
Ozdal M. A new strategy for the efficient production of pyocyanin, a versatile pigment, in Pseudomonas aeruginosa OG1 via toluene addition. 3 Biotech [Internet]. 2019;9(10):1–8. Available from: https://doi.org/10.1007/s13205-019-1907-1
Ozdal M, Gurkok S, Gur O, Basaran E. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology Enhancement of pyocyanin production by Pseudomonas aeruginosa via the addition of n -hexane as an oxygen vector. Biocatal Agric Biotechnol [Internet]. 2019;22(August):101365. Available from: https://doi.org/10.1016/j.bcab.2019.101365
Devnath P, Uddin MK, Ahamed FMM, Hossain MT, Manchur MA. Extraction , purification and characterization of pyocyanin produced by Pseudomonas aeruginosa. Int Res J Biol Sci . 2017;6(5):1–9.
Nawas T. Extraction and purification of pyocyanin: a simpler and more reliable method. MOJ Toxicol. 2018;4(6);417-22.
Momeni Z, Sadraei J, Kazemi B, Dalimi A. Experimental Parasitology Molecular typing of the actin gene of Trichomonas vaginalis isolates by PCR-RFLP in Iran. Exp Parasitol [Internet]. 2015;159:259–63. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.exppara.2015.10.011
Jali Azar A,Farhadi M,Torabzadeh P, Momeni Z.In vitro Effects of alchoholic and aquatic Extract of Physalis alkekengi on proliferation of Trichomonas vaginalis. IJOGI, Jan 2017, 19(38), 48-56.
Diken Gü S r, Seyis Bilkay I, Bilen Özyürek S. Investigation of Antimicrobial Activity of Pyocyanin Produced by Pseudomonas aeruginosa Strains Isolated from Different Clinical Specimens. Hacettepe J Biol Chem. 2016;1(44):1–6.
Mansourabadi A, Hematti M, Moradi A, Maghsoudi A. Evaluation of Curcumin and Quercetin Toxicity Effects on 4T1 Murine Breast Cancer Cell Line by MTT Method. Vol. 20, Iranian South Medical Journal. 2017.v.20. p. 1–8. [In Persion]
Sudhakar T, Karpagam S, Shiyama S. Analysis of pyocyanin compound and its antagonistic activity against phytopathogens. Int J ChemTech Res. 2013;5(3):1101–8.
Mullaiselvan I, Kanagaraj V, Dharmar B, Balaraman M, Meignanalakshmi S. Production, Characterization and Cytotoxic Evaluation of Pyocyanin Pigment Extracted from Pseudomonas aeruginosa Isolated from Industrial Soil Resources. Int J Curr Microbiol Appl Sci. 2020;9(3):2117–30.
Hamad MNF, Marrez DA, El-Sherbieny SMR. Toxicity evaluation and antimicrobial activity of purified pyocyanin from pseudomonas aeruginosa. Biointerface Res Appl Chem. 2020;10(6):6974–90.
DeBritto S, Gajbar TD, Satapute P, Sundaram L, Lakshmikantha RY, Jogaiah S, et al. Isolation and characterization of nutrient dependent pyocyanin from Pseudomonas aeruginosa and its dye and agrochemical properties. Sci Rep. 2020;10(1):1–12.
Bouchemal K, Bories C, Loiseau PM. Strategies for Prevention and Treatment of Trichomonas vaginalis Infections. 2017;30(3):811–25.
karimi F, Bakhshi M, Dadgar S, Maleki Saghooni N.Review of anti-Trichomonas vaginalis herbs and their therapeutic effects. IJOGI, Feb 2018, 20 ( 12), 96-109. [In Persian]
Kissinger P. Trichomonas vaginalis: A review of epidemiologic, clinical and treatment issues. BMC Infect Dis [Internet]. 2015;15(1):1–8. Available from: http://dx.doi.org/10.1186/s12879-015-1055-0
Najafi E, Nakhaei Moghaddam M, Najafi M, Yousefi E. Application of phenazine pigment of Pseudomonas aeruginosa isolates to prepare colored paper and candel, NCMBJ ,2021,11/44,29-39. [In Persian]
Zr A, Ss A. Antimicrobial Effect of Pyocyanin Extracted from Pseudomonas aeroginosa Keywords : iMedPub Journals. 2016;6(6:3):4–7.
Zhao J, Wu Y, Alfred AT, Wei P, Yang S. Anticancer effects of pyocyanin on HepG2 human hepatoma cells. Lett Appl Microbiol. 2014;58(6):541–8.
Moayedi A, Nowroozi J, Akhavan Sepahy A. Cytotoxic effect of pyocyanin on human pancreatic cancer cell line (Panc-1). IJBMS. 2018;21(8):794–9.
Hassani HH, Hasan HM, Al-Saadi A, Ali AM, Muhammad MH. A comparative study on cytotoxicity and apoptotic activity of pyocyanin produced by wild type and mutant strains of Pseudomonas aeruginosa. PRIME .2012;2012(5):1389–94. Available from: www.pelagiaresearchlibrary.com
_||_
Rein MF. Trichomoniasis. Hunter's tropical medicine and emerging infectious diseases:10th ed; Elsevier; 2020;731-733.
Van Gerwen O,1 Camino A Sharma J,1 Kissinger P, Muzny Ch.Epidemiology, Natural History, Diagnosis, and Treatment of Trichomonas vaginalis in Men; CID 2021:73 (15 September) 1119-1124. https://doi.org/10.1093/cid/ciab514.
Gahlout M · Chauhan P · Prajapati H · Tandel N · Rana S · Solanki D · Patel N. Characterization, application and statistical optimization approach for enhanced production of pyocyanin pigment by Pseudomonas aeruginosa DN9; Systems Microbiology and Biomanufacturing (2021) 1:459–470 https://doi.org/10.1007/s43393-021-00033-z
Saleem H, Mazhar S, Syed Q, Javed MQ, Adnan A. Bio-characterization of food grade pyocyanin bio-pigment extracted from chromogenic Pseudomonas species found in Pakistani native flora. Arab J Chem [Internet]. 2021;14(3):103005. Available from: https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2021.103005
Cheluvappa R. Standardized chemical synthesis of Pseudomonas aeruginosa pyocyanin. MethodsX [Internet]. 2014;1(1):67–73. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.mex.2014.07.001
Ozdal M. A new strategy for the efficient production of pyocyanin, a versatile pigment, in Pseudomonas aeruginosa OG1 via toluene addition. 3 Biotech [Internet]. 2019;9(10):1–8. Available from: https://doi.org/10.1007/s13205-019-1907-1
Ozdal M, Gurkok S, Gur O, Basaran E. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology Enhancement of pyocyanin production by Pseudomonas aeruginosa via the addition of n -hexane as an oxygen vector. Biocatal Agric Biotechnol [Internet]. 2019;22(August):101365. Available from: https://doi.org/10.1016/j.bcab.2019.101365
Devnath P, Uddin MK, Ahamed FMM, Hossain MT, Manchur MA. Extraction , purification and characterization of pyocyanin produced by Pseudomonas aeruginosa. Int Res J Biol Sci . 2017;6(5):1–9.
Nawas T. Extraction and purification of pyocyanin: a simpler and more reliable method. MOJ Toxicol. 2018;4(6);417-22.
Momeni Z, Sadraei J, Kazemi B, Dalimi A. Experimental Parasitology Molecular typing of the actin gene of Trichomonas vaginalis isolates by PCR-RFLP in Iran. Exp Parasitol [Internet]. 2015;159:259–63. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.exppara.2015.10.011
Jali Azar A,Farhadi M,Torabzadeh P, Momeni Z.In vitro Effects of alchoholic and aquatic Extract of Physalis alkekengi on proliferation of Trichomonas vaginalis. IJOGI, Jan 2017, 19(38), 48-56.
Diken Gü S r, Seyis Bilkay I, Bilen Özyürek S. Investigation of Antimicrobial Activity of Pyocyanin Produced by Pseudomonas aeruginosa Strains Isolated from Different Clinical Specimens. Hacettepe J Biol Chem. 2016;1(44):1–6.
Mansourabadi A, Hematti M, Moradi A, Maghsoudi A. Evaluation of Curcumin and Quercetin Toxicity Effects on 4T1 Murine Breast Cancer Cell Line by MTT Method. Vol. 20, Iranian South Medical Journal. 2017.v.20. p. 1–8. [In Persion]
Sudhakar T, Karpagam S, Shiyama S. Analysis of pyocyanin compound and its antagonistic activity against phytopathogens. Int J ChemTech Res. 2013;5(3):1101–8.
Mullaiselvan I, Kanagaraj V, Dharmar B, Balaraman M, Meignanalakshmi S. Production, Characterization and Cytotoxic Evaluation of Pyocyanin Pigment Extracted from Pseudomonas aeruginosa Isolated from Industrial Soil Resources. Int J Curr Microbiol Appl Sci. 2020;9(3):2117–30.
Hamad MNF, Marrez DA, El-Sherbieny SMR. Toxicity evaluation and antimicrobial activity of purified pyocyanin from pseudomonas aeruginosa. Biointerface Res Appl Chem. 2020;10(6):6974–90.
DeBritto S, Gajbar TD, Satapute P, Sundaram L, Lakshmikantha RY, Jogaiah S, et al. Isolation and characterization of nutrient dependent pyocyanin from Pseudomonas aeruginosa and its dye and agrochemical properties. Sci Rep. 2020;10(1):1–12.
Bouchemal K, Bories C, Loiseau PM. Strategies for Prevention and Treatment of Trichomonas vaginalis Infections. 2017;30(3):811–25.
karimi F, Bakhshi M, Dadgar S, Maleki Saghooni N.Review of anti-Trichomonas vaginalis herbs and their therapeutic effects. IJOGI, Feb 2018, 20 ( 12), 96-109. [In Persian]
Kissinger P. Trichomonas vaginalis: A review of epidemiologic, clinical and treatment issues. BMC Infect Dis [Internet]. 2015;15(1):1–8. Available from: http://dx.doi.org/10.1186/s12879-015-1055-0
Najafi E, Nakhaei Moghaddam M, Najafi M, Yousefi E. Application of phenazine pigment of Pseudomonas aeruginosa isolates to prepare colored paper and candel, NCMBJ ,2021,11/44,29-39. [In Persian]
Zr A, Ss A. Antimicrobial Effect of Pyocyanin Extracted from Pseudomonas aeroginosa Keywords : iMedPub Journals. 2016;6(6:3):4–7.
Zhao J, Wu Y, Alfred AT, Wei P, Yang S. Anticancer effects of pyocyanin on HepG2 human hepatoma cells. Lett Appl Microbiol. 2014;58(6):541–8.
Moayedi A, Nowroozi J, Akhavan Sepahy A. Cytotoxic effect of pyocyanin on human pancreatic cancer cell line (Panc-1). IJBMS. 2018;21(8):794–9.
Hassani HH, Hasan HM, Al-Saadi A, Ali AM, Muhammad MH. A comparative study on cytotoxicity and apoptotic activity of pyocyanin produced by wild type and mutant strains of Pseudomonas aeruginosa. PRIME .2012;2012(5):1389–94. Available from: www.pelagiaresearchlibrary.com