بررسی مورفولوژیک و هیستولوژیک تخمدان گوسفندان نژاد کردی در مراحل جنینی و بلوغ
محورهای موضوعی : پژوهش های بالینی دام های بزرگ
کلید واژه: مرفولوژی, گوسفند, تخمدان, هیستولوژی, جنین, بالغ,
چکیده مقاله :
در این بررسی ساختار ماکروسکوپی و میکروسکوپی 40 جفت تخمدان جنین گوسفند نژاد کردی و 10 جفت گوسفند بالغ این نژاد مورد بررسی قرار گرفت. سن گوسفند بالغ از روی دندان و سن جنین با اندازه گیری فاصله قاعده سر تا عجز تعیین شد. تخمدان ها به ترتیب به گروه‌های سنی جنین های 65 -50 ، 95-66 ، 125-96 و 145- 125 روزه و گوسفند بالغ تقسیم شدند. برای بررسی بافت شناسی، تخمدان ها تثبیت و به روش هماتوکسیلین- ائوزین رنگ‌آمیزی شدند. فولیکول های تخمدان بر اساس تعداد سلول های لایه گرانولوزا به 5 نوع 1 ، A1 ، 2 ، 3 ،4و 5 طبقه‌بندی شدند. از نظر ماکروسکوپی شکل تخمدان ها از گرد تا بیضوی و بادامی، سطح تخمدان از صاف تا برجسته و رنگ تخمدان ها از شیری تا سفید تغییر یافته بود . وزن تخمدان گوسفندان بالغ بطور معنی‌داری بیشتر از تخمدان جنین ها درگروه های سنی مختلف بود. از نظر میکروسکوپی تخمدان های گروه سنی 65-50 روزه ، فاقد لایه جدا کننده بخش قشری از میانی تخمدان و حاوی تعداد زیادی اووگونی ما بین سلول های استرومای تخمدان بود. در گروه سنی 95-66 روزه فولیکول های نوع 1 ، A1 ، 2 و 3 و در گروه سنی 125-96 روزه فولیکول های نوع 4 و 5 با شواهدی از تشکیل حفره مشاهده شد. در گروه سنی 145 – 125 روزه تخمدان حاوی فولیکول هایی از تیپ 5 بود. تخمدان گوسفند بالغ حاوی تمام تیپ های فولیکولی بود. تعداد فولیکول های نوع 1 با افزایش سن جنین افزایش یافت و کمترین تعداد آن در تخمدان گوسفندان بالغ مشاهده شد.
This survey investigates the morpho-histological features of Kurd sheep. So, 40 foetal and 10 adult ovaries were obtained from slaughtered Kurd sheep in Kurdistan abattoir. Crown rump length method used to determine the ages of the adult ewes while the age of foetuses were determined by dentition method. The foetal and adult ovaries were divided into five different groups using specific age intervals as gestation day as follows: (GD) 50–65, 66–95, 96–125 and 126–145, as well as adult sheep. The ovaries were fixed, processed and routinely stained with H&E for histological studies. The ovarian follicles were classified into 5 types according to granulosa cell layers surrounding the oocytes. The number of ovarian follicles per microscopic field was determined for each group at 400× magnification. Grossly, the foetal ovaries were like pin head, oval in shape, uniformly smooth and creamy in color. The adult ovaries had follicles with different sizes. The adult mean ovarian weights were significantly higher (P < 0.01) than those of the foetuses. Microscopically, the GD 50–65 ovaries had no distinct cortex and medulla. Oogonia were numerous among other stromal cells toward the periphery of the ovary. By GD 66–95 the ovaries contained types 1, 1a, 2 and 3 follicles. GD 96–125 ovaries contained type 4 and type 5 follicles with early antrum formation and those of GD126–145 comprised type 5 among other follicles. The adult ovaries comprised all the ovarian follicle types. The number of type 1 follicles increased significantly (P < 0.01) with foetal age while It was the least in the adults.
1- Borwick, S.C., Rhind, S.M., McMillen, S.R., Racey, P.A. (1997): Effect of undernutrition of ewes from the time of mating on fetal development in mid gestation. J. Reprod. Fertil. Dev. 9, 711–715.
2- Byskov, A.G. (1975): The role of the rete oovarii in meiosis and follicle formation in the cat, mink and ferret. J. Reprod. Fertil. 45, 201–209.
3- Chang H,M.M. (2001): Smad 5 is required for mouse primordial germ cell development. Mech Dev; 104: 61-67
4- Da Silva, P., Van den Hurk, R., Ashworth, C.J., Lea, R.G., te Velde, E.R., Taverne, M.A.M. (2002): Fetal ovarian development in inadequately grown porcine fetuses. Reprod. Abstract Series 28, N69.
5- Da Silva, P., Aitken, R.P., Rhind, S.M., Racey, P.A.,Wallace, T.M. (2002): Impact of maternal nutrition during pregnancy on pituitary gonadotrophin gene expression and ovarian development in growth-restricted and normally grown late gestation sheep fetuses. J. Reprod. 123, 769–777.
6- Da Silva, P., Van den Hurk, R., te Velde, E.R., Taverne, M.A.M. (2003): Ovarian development in intrauterine growth-retarded and normally developed piglets originating from the same litter. J. Reprod. Fertil. 126, 249–258.
7- Dubeuf, J., Morand-Ferh, P., Rubino, R. (2004): Situation, changes and future of goat industry around the world. Small Rumin. Res.52 (1), 165–173.
8- Fraser, H.M. (2006): Regulation of the ovarian follicular vasculature.Reproductive Biology and Endocrinology 4 18.
9- Grazul-Bilska, A.T. Banerjee J., Yazici I., Borowczyk E, Bilski J.J., Sharma R.K., Siemionov M. & Falcone T. (2008): Morphology and function of cryopreserved whole ovine ovaries after heterotopic autotransplantation.Reproductive Biology and Endocrinology 6 16.
10- Kelly, A. and Peter, K. (2002): Charting the course of cvarian development in vertebrates .Int. J. Dev.Biol, 503- 510.
11- Lundy, T., Smith, P., O’Connel, A., Hudson, N.N., McNatty, K.P. (1999): Populations of granulosa cells in the sheep ovary. J. Reprod. Fertil. 115, 251–262.
12- McNatty, K.P., Smith, P., Hudson, N., Heath, D., Tisdall, D.J., Brawtal, R. (1995): Development of the sheep ovary during fetal and early neonatal life and the effect of fecundity genes. J. Reprod. Fertil. 49, 123–135.
13- McNatty, K.P., Fidler, A.E., Juengil, J.L., Quirk, L.D., Smith, P.R., Heath, D.A., Lundy, T.O., Connel, A., Tisdall, D.J. (2000): Growth and paracrine factors regulating follicular formation and cellular function. Mol. Cell Endocrinol. 163, 11–20.
14- Nwaogu, I.C., Ezeasor, D.N., (2008): Studies on the development of omasum in West African Dwarf goats (Capra hircus). Vet. Res. Commun. 32, 543–552.
15- Oxender,W.D., Colenbrader, B., Van de Wiel, D.F.M.,Wensing, C.J. (1979): Ovarian development in fetal and prepubertal pigs. Biol. Reprod. 21, 715–721.
16- Rae, M.T., Palassio, S., Kyle, C.E., Brooks, A.N., Lea, R.G., Miller, D.W., Rhind, S.M. (2001): Effect of maternal undernutrition during pregnancy on early ovarian development and subsequent follicular development in sheep fetuses. J. Reprod. Fertil. 122,915–922.
17- Zamboni, L., Bezard, F., Mauleon, P. (1979): The role of the mesonephros in the development of the sheep fetal ovary. Anim. Biochem. Biophys. 19, 1153–1178.
_||_