شناسایی پنومونی مانهیمیازیس در بز با استفاده از روش های ایمنوهیستوشیمی، باکتریولوژی و هیستوپاتولوژی

محورهای موضوعی : میکروبیولوژی

کیوان جمشیدی ¹

1 - استادیار،گروه پاتولوژی، دانشکده دامپزشکی، واحد گرمسار، دانشگاه آزاد اسلامی، گرمسار، ایران

تاریخ دریافت : 1398/04/18 تاریخ پذیرش : 1399/07/10 تاریخ انتشار : 1401/06/01

کلید واژه: بز, مانهیمیا همولیتیکا, پنومونی, ایمونوهیستوشیمی,

چکیده مقاله :

پنومونی مانهیمیوزیس با عامل مانهیمیا (پاستورلا) همولیتیکا یکی از مهمترین عوامل اتیولوژیک پنومونی در گاو، گوسفند و بز می باشد. مطالعه حاضر که در کشتارگاه سمنان به اجرا درآمد به منظور تعیین وجود و میزان شیوع آنتی ژن های مانهیمیا همولیتیکا با استفاده از نشان گذاری ایمنوهیستوشیمی در بافت ریه بزهای مبتلا به پنومونی ذبح شده تثبیت شده در فرمالین و قالب گیری شده در پارافین و سپس مقایسه نتایج ایمنوهیستوشیمی با نتایج جداسازی باکتریایی طراحی شد. به همین منظور ریه های متعلق به 402 راس بز ذبح شده در کشتارگاه تحت بازرسی های روتین پس از کشتار قرار گرفت و پنومونی در 38 مورد از آنها شناسایی شد. آزمایشات ایمونوهیستوشیمی روی 32 مورد باستثنای 6 مورد ریه مبتلا به پنومونی کرمی به اجرا درآمد. آنتی ژن های مانهیمیا همولیتیکا در 14 مورد (75/43%) از 32 مورد ریه های پنومویک شناسایی شد. آنتی ژنهای باکتریایی بیشتر در سلول های اپیتلیال برونشیولی و برونشی، در لکوسیت های دژنره در آلوئول ها، و در لکوسیت های دژنره در نواحی نکروز انعقادی و تا حد کمتری در سلول های اپیتلیومی غدد برونشی و سلول های لنفوئیدی مشاهده شدند. در مجموع شناسایی آنتی ژن های مانهیمیا همولیتیکا در ریه های پنومونیک با استفاده از ایمونوهیستوشیمی بسیار قابل اعتمادتر از روش جداسازی باکتریایی می باشد.

منابع و مأخذ:

 

1. Ackermann, M. R., K.A. Brogden. (2000). Response of the ruminant respiratory tract to Mannheimia (Pasteurella) haemolytica. Microbes and infection 2: 1079–1088. doi:10.1016/S1286-4579(00)01262-4


2. Bancroft, J. D., G. Marilyn. (2007). Theory and practice of histological techniques. 6th Edn., K, Elsevier-Health Sciences Division. PP: 250-260.


3. Brogden, K.A., H. D. Lehmkuhl., R.C. Cutlip. (2008). M. haemolytica complicated respiratory infections in sheep and goats. Veterinary Research 29: 233–254.


4. Diker, K.S., M. Akan., O. Kaya. (2000). Evaluation of Immunogenicity of Pasteurella hemolytica serotypes in Experimental Models. Turkish Journal of Veterinaryand Animal Sciences 24: 139–143.


5. Dungworth, D. L. (2016). Respiratory system. In: Jubb KVF, Kennedy PC, Palmer N, Editors: Pathology of Domestic Animals. 4th Ed. 2: 613–615.


6. Haritani, M., S. Ishino., M. Oka., M. Nakazawa., Kobayashi., M.  Narita., T. Takizawa. (2006). Immunoperoxidase evaluation of pneumonic lesions in calves naturally infected with Pasteurella haemolytica. Nippon juigaku zasshi. The Japanese journal of Veterinary Science 51: 1137–41.


7. Haritani, M., M. Nakazawa., K. Hashimoto., M. Narita., Y. Tagawa., M. Nakagawa. (2009). Immunoperoxidase evaluation of the relationship between necrotic lesions and causative bacteria in lungs of calves with naturally acquired pneumonia.  American Journal of Veterinary Research 51: 1975–9.


8. Haritani, M., M. Nakazawa., S. Oohashi., Y. Yamada., R. Haziroglu., M. Narita. (2005). İmmunoperoxidase evaluation of pneumonic lesions induced by P. haemolytica in calves. American Journal of Veterinary Research 48: 1358–62.


9.  Haziroglu, R., K. S. Diker., J. Turkarslan., M. Y. Gulbahar. (2013). Detection of Mycoplasma ovipneumoniae and Pasteurella haemolytica Antigens by an Immunoperoxidase Technique in Pneumonic Ovine Lungs. Veterinary Pathology 33: 74–76.  


10. Horadagoda, N. U., M. C. L. Alwis., S. G. Wettimuny., C. S. V. B. Anthony., A. A. Vipubasiri., M. C. L. De-Alwis. (1981). Bacteriological studies on normal and pneumonic lungs of goats in Sri Lanka. Ceylon Veterinary Journal 29: 13-19.


11. Hsu, S.M., L. Raine, H. Fanger. (2016). Use of avidin-biotin-peroxidase complex (ABC) in immunoperoxidase techniques: a comparison between ABC and unlabelled antibody (PAP) procedures. Journal of Histochemistry and Cytochemistry 291: 577–580. 


12. Jasni, S., M. Zamri-Saad, A. Kamal-Hizat., A. R. Mutalib., N. Salim, A. R. Sheikh-Omar. (2011). Seasonal occurrence of caprine pneumonic pasteurellosis in central Peninsular Malaysia. Jurnal Veterinar Malaysia(JVM) 2: 147–148.  


13. Keles, I., Z. Woldehiwet., R. D. Murray. (2006). In-vitro studies on mechanisms of immunosuppression associated with bovine respiratory syncytial virus. Journal of Comparative Pathology, 118: 337–45.


14. Narita, M., K. Kimura., N. Tanimura., S. Arai., T. K. Katsuda. (2000). Immunohistochemical characterization of calf pneumonia produced by the combined endobronchial administration of bovine herpesvirus 1 and Pasteurella haemolytica. Journal of Comparative Pathology , 123: 126–34. doi:10.1053/jcpa.2000.0402


15. Slocombe, R. F., J. Malark., R. Ingersoll., F. J. Derksen., N. E. Robinson. (2008). Importance of neutrophils in the pathogenesis of acute pneumonic pasteurellosis in calves. American Journal of Veterinary Research 46: 2253–2258.


16. Whiteley, L. O., S. K. Maheswaran., D. J. Weiss. (2010). Immunohistochemical localization of P.haemolytica A1-derived endotoxin, leukotoxin, and capsular polysaccharide in experimental bovine Pasteurella pneumonia. Veterinary Pathology, 27: 150–61. PMID: 2191489, DOI: 1177/030098589002700302


17. Yener, Z., K., Gürtürk, M.Y., Gülbahar, H.Solmaz. (2001). Pathological and bacteriological studies on pneumonia in goats slaughtered at Bitlis slaughterhouse. Veteriner Bilimleri Dergisi 17: 13-20 DOI: 10.1046/j.1435-6935.2002.00025


18. Yener, Z., Y. S. Sağlam., N. Timurkaan., F. Ilhan. (2005). Immunohistochemical Detection of Parainfluenza Type 3 virus Antigens in Paraffin Sections of Pneumonic Caprine Lungs. Journal of veterinary medicine 52:268–271. doi:10.1111/j.1439-0442.2005.00724.x


19. Yener, Z., F. Ilhan., Z. , Y. S. Saglam. (2009). Immunohistochemical detection of Mannheimia (Pasteurella) haemolytica antigens in goats with natural pneumonia. Veterinary Research Communication 33:305-13. doi: 10.1007/s11259-008-9178-z.