اثر رتینوئیک اسید بر روی بافت تخمدان و اوویداکت در موش ماده بالغ BALB/c

محورهای موضوعی : مجله پلاسما و نشانگرهای زیستی

آرزو مستقیمی ¹ , پروین تراب زاده خراسانی ² , مینا رمضانی ³

1 - کارشناس ارشد گروه زیست شناسی(تکوین جانوری) دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج،کرج، ایران.
2 - گروه زیست شناسی(تکوین جانوری) دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج،کرج، ایران.
3 - گروه زیست شناسی(تکوین جانوری) دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج،کرج، ایران.

تاریخ دریافت : 1397/05/24 تاریخ پذیرش : 1397/07/25 تاریخ انتشار : 1397/08/01

کلید واژه: تخمدان, موش, فولیکول, رتینوئیک اسید, اوویداکت,

چکیده مقاله :

زمینه وهدف: رتینوئیک اسیدها به عنوان تنظیم کننده های مهم رشد و تمایز سلولی شناخته شده و برای فرآیند طبیعی تولید مثلی در جنس نر و ماده ضروری می باشند. تحقیق حاضر به منظور بررسی اثرات رتینوئیک اسید برروی بافت تخمدان و اوویداکت موش های ماده بالغ BALB/c انجام شد. روش کار: در این مطالعه پس از مشخص شدن دوز مناسب رتینوئیک اسید، تزریق طی۳۰ روز به صورت درون صفاقی(IP) بر روی ۷۵ موش ماده بالغ BALB/c با انتخاب دوزهای۱۵(گروه اول)، 25(گروه دوم) و kg.b.w / mg۳۵(گروه سوم)، گروه کنترل(عدم تزریق) و شم(تزریق آب مقطر) صورت گرفت. برای مقایسه گروه ها از آنالیز ANOVA و سپس آزموندانکن استفاده و سطح معنی داری(۰۵/۰P<) و(۰۰۱/۰P<) در نظرگرفته شد. یافته ها: در طی بررسی های ماکروسکوپی در هر سه دوز تزریقی کاهش معنی دار(001/0P<) وزن و در بررسی های میکروسکوپی کاهش معنی دار قطر کوچک و بزرگ تخمدان، تعداد فولیکول های گراف و جسم زرد(001/0P<)، (05/0 P<) مشاهده شد. درحالی که افزایش معنی داری فولیکول های تخریبی و زوناپلوسیدا چین خورده(05/0P<)، (001/0 P<) و کاهش قطر اوویداکت نسبت به گروه کنترل نیز مشاهده گردید، که البته این کاهش معنی دار نبود. نتیجه‌گیری:به طورکلی می توان این طور نتیجه گرفت که رتینوئیک اسید اثر تخریبی بر روی بافت تخمدان و اوویداکت موش سوری ماده داشته است.

منابع و مأخذ:

1- ایمانی،ح.، طاهایی، ل.، پریور،ک.، رضازاده،م.، کاظمی آشتیانی، س.، شاهوردی، ع.1386. تاثیرهم کشتی گرانولوزا و رتینوئیک اسید بر بلوغ و تکوین تخمک های نارس موش درمحیط آزمایشگاه. مجله علمی– پژوهشی علوم تشریح ایران. دوره 5. شماره 19و20. صفحه 146- 137.

2- شجاعی، ن.، عباس نژاد، م.، پورابولی، ا. 1386. اثر رتینوئیک اسید تزریقی در پوسته هسته اکومبنس بر دریافت غذا و وزن بدن موش های صحرایی نر. مجله زیست شناسی ایران. جلد 20. شماره4. صفحه 9-1.

3- عبدی، ا. 1391. بررسی اثر رتینوئیک اسید بر روی نمو تخمدان موش NMRI. کارشناسی ارشد. پایان نامه علمی– پژوهشی دانشگاه رازی. علوم پایه. صفحه 52-2.

4.Bucco, RA., Zheng, WL., Wardlaw, SA. (1996). Regulation and localization of cellular retinol-binding protein, cellular retinoic acid-binding protein(CRABP), and CRABP II in the uterus of the Pseudopregnant rat. The Jornal of the Endocrinology, 137(7); 3111 -3122.

5.Chew, BP., Archer, RG. (1983). Comparative Role of vitamin A and B-carotene on reproductive and neonatal survival in Rats. Theriogenology J, 20(4); 459-472.

6.Dawn, M. E., Whitney, A. W., James, D. G. (1999). Retinol administration to superovulated ewes improves in vitro embryonic viability. Biology of Reproduction, 60; 1483–1487.

7.Giguere, V. (1994). Retinioc acid receptors cellular retinoid  binding proteins :complex interplay retinoid signaling. Endocrine Society, 15(1); 61-79

8.Goss Paul, E., Shangle, Qi., Haiqing, Hu. (2012). Anti-tumor effects of a novel retinoic acid metabolism blocking agent vn/14-1 in the n-methyl-n-nitrosourea -induced rat mammary carcinoma model and its effects on the uterus. The Journal of NIH Public Access Author Manuscript, 133(1); 137-144.

9.Gudas, LJ., Sporn, MB., Roberts, AB. (1994). Cellular biology and biochemistry of the retinoids. In: Sporn MB, Roberts AB, Goodman DS (eds.) The retinoids-Biology, Chemistry and Medicine. New York: Raven Press, 269(22); 443–520.

10.Hong, W. K., Itri, L. M. (1994). In the retinoids: biology, chemistry, and  medicine (sporn, m. b., roberts, a. b, and goodman, d. s., eds) raven press.Biochemistry and Molecular Biology(IUBMB), 22(1); 597-630.

11.Kin Ting Kam, R., Chen Y., Deng, Yi., Zhao, H. (2012). Retinoic acid synthesis and functions in early embryonic development. The Journal Cell & Bioscience, 2(11);1-14.

12.Koda, T., Morita, M. S., Imai, H. (2007). Retinoic acid inhibits uterotrophic activity of bisphenola in adult ovariectomized rats. Journal of Nutr Sci Vitaminology. 53(5); 432-436.

13.Mangelsdorf, DJ., Umesono, K., Evans, RM. (1994). Cellular biology and biochemistry of the retinoids. In: sporn MB, roberts AB, goodman DS (eds.), the retinoids-biology, Chemistry and Medicine. New York: Raven Press, 319–350.

14.Napoli, JL. (1996). Retinoic acid biosynthesis and metabolism. FASEB J, 10; 993–1001.

15.Niederreither, K., Mcaffery, P., Drager, UC., Chambon, P., Dolle, P. (1997). Restricted expression and retinoic acid-induced down regulation of the retinaldehyde dehydrogenase type 2 (RALDH-2) gene during mouse development. Mech Dev, 62(1); 67-785.

16.Niederreither, K., Vermot, J., Fraulob, V., Chambon, P., Dolle, P. (2002). Retinaldehyde dehydrogenase 2 (RALDH2)- independent patterns of retinoic acid synthesis in the mouse embryo. The Jornal of Procnatlacadsci U S A, 10;99(25); 111-166

17.Reichrath, J., Mittmann, M., Kamradt, J. (1997). Expression of retinoid-x receptors (-alpha,-beta,- gamma) and retinoic acid receptors (-alpha,-beta,- gamma) in normal human skin: an immune histological evaluation. Histochem. J, 29(2); 33-127.

18.Stachurska, E., Loboda, A., Niderla, B. (2011). Expression of cellular retinoic acid binding protein I and II (CRABP I and II) in embryonic mouse hearts treated with retinoic acid. Actabiochim Pol, 58(1);19-29.

 

19.Tomoko, K., Noriyuki, Y., Joanne, R., Masayuki, Sh. (2015). De novo-synthesized retinoic acid in ovarian antral follicles enhances fsh-mediated ovarian follicular cell differentiation and female fertility. The Jornal of Biology endocrine, 1210-1264.

20.Zhengwen, li., Buccorichard , A. Sierra-rieveraelaine, G., Osteen, K., Melnermichael, H., Ongdavid, E. (1999). Synthesis of retinoic acid by rat ovarian cells that express cellular retinoic acid binding protein-Ι,Π. Journal Biology of Reproduction, 60; 110-114