مطالعه پلی‌مورفیسم ژن کوآگولاز در استافیلوکوکوس آرئوس‌های جدا شده از شیر گاومیش

محورهای موضوعی : علوم و صنایع غذایی

جلال شایق ¹ ( دانشگاه آزاد اسلامی، واحد شبستر، استادیار گروه دامپزشکی، شبستر، ایران. )
علی رضا منادی ² ( دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تبریز، استادیار گروه پاتوبیولوژی، تبریز، ایران )

تاریخ دریافت : 1392/05/28 تاریخ پذیرش : 1392/09/26 تاریخ انتشار : 1392/03/01

کلید واژه: PCR-RFLP, استافیلوکوکوس آرئوس, ژن کوآگولاز, پلی مورفیسم, شیر گاومیش,

چکیده مقاله :

هدف از این مطالعه آنالیز ژن کوآگوالاز در استافیلوکوکوس آرئوس‌های جدا شده از شیر گاومیش‌های بومی در شمال غربی ایران بود. برای این منظور تعداد 75 جدایه استافیلوکوکوس آرئوس به روش PCR-RFLP مورد آزمایش قرار گرفتند. نتیجه تکثیر شده برای ژن کوآگولاز تولید باندهای با اندازه‌های 600، 700، 760 و 850 جفت باز بود که به ترتیب 12، 25، 29 و 9 مورد از جدایه‌های مورد آزمایش را شامل می‌شد. از هضم باندهای مذکور با آنزیم AluI الگوهای متفاوتی از هر اندازه بدست آمد. اما الگوهای متعلق به یک اندازه، مشابه هم بودند. نتایج آنالیز ژن کواگولاز در این مطالعه مشابه نتایج حاصل از جدایه‌های گاوی بودند.

چکیده انگلیسی:

The aim of this study was to analyze the coA gene on Staphylococcus aureus isolates collected from milks of native buffaloes in north-west of Iran. For this purpose, seventy five S. aureus isolates were examined by PCR-RFLP. Amplification of coA gene revealed various amplicons with a sizes of approximately 600, 700, 760 and 850 bp in 12, 25, 29 and 9 of the isolates, respectively. AluI digestion of the amplicons demonstrated that the isolates had the same PCR band size in the same PCR-RFLP patterns. The result of coA gen analysis was similar to the isolates from cattle milk.

منابع و مأخذ:

• برومندی جزی، مسعود (1384). پرورش گاومیش، انتشارات موسسه آموزشی عالی عامی کاربردی، چاپ اول.صفحه 104-94.


• رضویلر، ودود (1378). میکروب‌های بیمای‌زا در مواد غذایی و اپید میولوژی مسمومیت‌های غذایی انتشارات دانشگاه تهران صفحه 135-127.

 

• Bromandi Jazi, M. (2006). Buffaloes culture. Applied-scientific High educational institute, Tehran[In Farsi].


• Busch, U., Nitschko, H. (1999). Methods for the differentiation of microorganisms. Journal of Chromatography B: Biomedical Sciences and Applications ,722: 263–278.


• Dastmalchi  Saei,  H.,  Ahmadi,  M.,  Mardani,  K.,  Batavani,  R.A.  (2009). Molecular typing of Staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis based on polymorphism of the coagulase gene in the north west of Iran. Veterinary Microbiology, 137: 202-206.


• Dastmalchi Saei, H. and Ahmadi, M. (2010). Genotyping of Staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis based on PCR-RFLP analysis of the aroA gene. Comparative Clinical Pathology, 19: 163-168.


• Enright, M.C., Day, N.P., Davies, C.E., Peacock, S.J. and Spratt, B.G. (2000). Multilocus sequence typing for characterization of methicillin-resistant and methicillin-susceptible clones of Staphylococcus aureus. Journal of Clinical Microbiology, 38:1008–1015.


• Fitzgerald, J.R., Meaney, W.J., Hartigan, P.J., Smyth, C.J. and Kapur, V. (1997). Fine-structure molecular epidemiological analysis of Staphylococcus aureus recovered from cows. Epidemiology and Infection, 119: 261–269.


• Hookey JV, Richardson JF, Cookson BD. (1998) Molecular typing of Staphylococcus aureus based on PCR restriction fragment length polymorphism and DNA sequence analysis of the coagulase gene. Journal of Clinical Microbiology.36:1083–1089.


• Ishino, K., Tsuchizaki, N., Ishikawa, J. and Hotta, K. (2007). Usefulness of PCR-restriction fragment length polymorphism typing of the coagulase gene to discriminate arbekacin-resistant methicillinresistant Staphylococcus aureus strains. Journal of Clinical Microbiology, 45: 607–609.


• Marcos, J.Y., Soriano, A.C., Salazar, M.S., Moral, CH., Ramos, S.S., Smeltzer, M.S. and Carrasco, G.N. (1999). Rapid identification and typing of Staphylococcus aureus by PCR-restriction fragment length polymorphism analysis of the aroA gene. Journal of Clinical Microbiology, 37: 570-574.


• Melles, D.C., van Leeuwen, W.B., Snijders, S.V., Horst-Kreft, D., Peeters, J.K., Verbrugh, H.A. and van Belkum, A. (2007). Comparison of multilocus sequence typing (MLST), pulsed-field gel electrophoresis (PFGE),and amplified fragment length polymorphism (AFLP) for genetic typing of Staphylococcus aureus. Journal of  Microbiological Methods, 69: 371–375.


• Razavilar, V. (1999). Pathogenic Microorganisms in foods and Epidemiology of food borne intoxication. TehranUniversity Press [In Farsi].


• Reinoso, E.B., El-Sayed, A., Lammler, C., Bogni, C. and Zschock, M., (2008). Genotyping of Staphylococcus aureus isolated from humans, bovine subclinical mastitis and food samples in Argentina. Microbiological Research, 163: 314–322.


• Shayegh, J., Barzegari, A. and Mikaili, P. (2013). Molecular characteristics of Staphylococcus aureus isolates from buffaloes milk. The Journal of the Faculty of Veterinary Medicine, University of Kafkas, 19 (4): 665-668.


• Strommenger, B., Braulke, C., Heuck, D., Schmidt, C., Pasemann, B., Nubel, U. and Witte, W. (2008). spa Typing of Staphylococcus aureus as a frontline tool in epidemiological typing. Journal of Clinical Microbiology, 46: 574–581.


• Stutzenberger, F.J. and San Clemente, C.L. (1967). Nephelometric assay of bovine ntistaphylocoagulase serum. Journal of Bacteriology, 94(4): 821–825.


• Weller, T.M. (2000). Methicillin-resistant Staphylococcus aureus typing methods: which should be the international standard?. Journal of Hospital Infection, 44:160–172.