تأثير پروبيوتيک‌هاي لاکتوباسيلوس کازئي و بيفيدوباکتريوم لاکتيس بر سطح سوپراکسیددسموتاز و مالون دی آلدهید در بافت کلیه موش‌هاي صحرايي ديابتي شده با استرپتوزوتوسين
محورهای موضوعی : زیست شناسی سلولی تکوینی گیاهی و جانوری ، تکوین و تمایز ، زیست شناسی میکروارگانیسم
1 - گروه زيست شناسی، واحد تهران مرکزی، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ايران
کلید واژه: استرپتوزتوسین, ديابت, سوپراکسیددسموتاز, مالون دی آلدهید, پروبیوتک, موش صحرايي,
چکیده مقاله :
دیابت قندی از شایع ترین بیماری های متابولیکی بوده و از طریق افزایش استرس اکسیداتیو باعث ایجاد آسیب در کلیه می شود. استفاده از آنتی اکسیدان ها باعث کاهش استرس اکسیداتیو شده و میزان آسیب را کاهش میدهند. هدف از اين مطالعه بررسي تأثير پروبيوتيک‌هاي لاکتوباسيلوس‌کازئي و بيفيدوباکتريوم لاکتيس بر سطح سوپراکسید دسموتاز و مالون دی آلدهید بافت کلیه در موش‌هاي صحرايي ديابتي شده با استرپتوزوتوسين مي‌باشد.
در اين مطالعه تجربي28 سر موشصحرايي نر ويستار به چهار گروه کنترل، ديابتي، گروه‌هاي ديابتي تيمار با پروبيوتيک لاکتوباسيلوس کازئي و بيفيدوباکتريوم لاکتيس تقسيم‌بندي شدند. گروه‌هاي ديابتي شده (نوع ۱) استرپتوزوتوسين با دوز ۶۰ میلیگرم بر کیلوگرم با تزريق داخل صفاقي دریافت کردند و پروبيوتیک ها به مدت ۳۵ روز گاواژ شدند. در پايان هفته پنجم، سطح گلوگز ،انسولین، سوپراکسید دسموتاز و مالون دی آلدهید بافت کلیه مورد بررسی قرارگرفت. دادههای به دست آمده با نرم افزار SPSS ،آزمون واریانس یک طرفه، تست توکی وP کمتر از ۰۵/۰ ارزیابی شد. در مطالعه حاضر سطح گلوکز و انسولین خون ، سوپراکسید دسموتاز و مالون دی آلدهید در بافت کلیه گروه دیابتی در مقايسه با گروه کنترل اختلاف معني‌داری نشان داد (۰۰۱/۰P<). در گروه‌هاي تيمار شده با لاکتوباسيلوس کازئي و بيفيدوباکتريوم لاکتيس در مقايسه با گروه ديابتي نیز تغییرات معني‌دار نشان داده شد (05/۰P<). این مطالعه نشان داد که در موشهای دیابتی مصرف پروبيوتيک‌هاي لاکتوباسيلوس کازئي و بيفيدوباکتريوم لاکتيس بر شاخصهای استرس اکسیداتیو اثر مثبت دارد.
Diabetes mellitus is one of the most common metabolic diseases and causes kidney damage through increased oxidative stress. The use of antioxidants reduces oxidative stress and reduces the amount of damage.The use of antioxidants reduces oxidative stress and reduces the amount of damage. The aim of this study was to investigate the effect of probiotics Lactobacillus casei and Bifidobacterium lactis on the levels of superoxide dismutase and malondialdehyde in kidney tissue in streptozotocin-induced diabetic rats. In this experimental study, 28 male Wistar rats were divided into four groups: control, diabetic, and diabetic groups treated with probiotics Lactobacillus casei and Bifidobacterium lactis. The diabetic groups (type 1) received streptozotocin at a dose of 60 mg/kg by intraperitoneal injection and the probiotics were gavage for 35 days. At the end of the fifth week, the levels of glucose, insulin, superoxide dismutase and malondialdehyde in kidney tissue were examined. The data obtained were evaluated using SPSS software, one-way ANOVA, Tukey test and P less than 0.05. In the present study, the levels of blood glucose and insulin, superoxide dismutase and alondialdehyde in kidney tissue of the diabetic group showed significant differences compared to the control group (P<0.001). In the groups treated with Lactobacillus casei and Bifidobacterium lactis, significant changes were also shown compared to the diabetic group (P<0.05). This study showed that in diabetic rats, the consumption of probiotics Lactobacillus casei and Bifidobacterium lactis has a positive effect on oxidative stress indices.
1.Elnahas SM, Mansour HA, El‐Sawi MR, Abou‐El‐Naga AM. Therapeutic effect of Momordica charantia on cardiomyopathy in a diabetic maternal rat model. Journal of Experimental Zoology Part A: Ecological and Integrative Physiology. 2024;341(9):977-990.
2. Dab H, Ben Hamed S, Hodroj W, Zourgui L. Combined diabetes and chronic stress exacerbates cytokine production and oxidative stress in rat liver and kidney. Biotechnol-ogy & Biotechnological Equipment. 2023;37(1):250-259.
3.Pérez-Villalobos MC, Barba-González A, García-Carrillo N, Muñoz-Ortega MH, Sánchez-Alemán E, Ávila-Blanco ME, Morones-Gamboa JC, Ventura-Juárez J, Mar-tínez-Hernández SL. Nephroprotective effect of pioglitazone in a Wistar rat model of adenine induced chronic kidney disease. Experimental and Therapeutic Medicine. 2024;28(4):392-402.
4.Palygin O, Spires D, Levchenko V, Bohovyk R, Fedoriuk M, Klemens CA, Sykes O, Bukowy JD, Cowley Jr AW, Lazar J, Ilatovskaya DV. Progression of diabetic kidney disease in T2DN rats. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 2019;317(6):F1450-1461
5. Emmanuel Adeleye O, Ajala T, Adekoya OA, Adeleye AI. Effective Dose Regimen of STZ for STZ-induced Diabetes in a Rat Model. Iranian Journal of Veterinary Medi-cine 2024; 18(3): 377-386.
6.Ghasemi A, Jeddi S. Streptozotocin as a tool for induction of rat models of diabetes: A practical guide. EXCLI journal. 2023;22:274.
7.Wan Chik M, Ramli NA, Mohamad Nor Hazalin NA, Surindar Singh GK. Strepto-zotocin mechanisms and its role in rodent models for Alzheimer’s disease. Toxin Re-views. 2023;42(1):491-502.
8.Singh H, Singh R, Singh A, Singh H, Singh G, Kaur S, Singh B. Role of oxidative stress in diabetes-induced complications and their management with antioxidants. Ar-chives of Physiology and Biochemistry. 2024;130(6):616-641.
9.Zhao Y, Li M, Wang Y, Geng R, Fang J, Liu Q, Kang SG, Zeng WC, Huang K, Tong T. Understanding the mechanism underlying the anti-diabetic effect of dietary compo-nent: a focus on gut microbiota. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2023;63(25):7378-7398.
10.Bajinka O, Tan Y, Darboe A, Ighaede-Edwards IG, Abdelhalim KA. The gut micro-biota pathway mechanisms of diabetes. AMB Express. 2023;13(1):16.
11.Li X, Xia Y, Song X, Xiong Z, Ai L, Wang G. Probiotics intervention for type 2 dia-betes mellitus therapy: a review from proposed mechanisms to future prospects. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2024;1:1-9.
12.Wu X, Zhao L, Zhang Y, Li K, Yang J. The role and mechanism of the gut microbio-ta in the development and treatment of diabetic kidney disease. Frontiers in Physiology. 2023;14:1166685.
13.Shen X, Ma C, Yang Y, Liu X, Wang B, Wang Y, Zhang G, Bian X, Zhang N. The Role and Mechanism of Probiotics Supplementation in Blood Glucose Regulation: A Review. Foods. 2024;13(17):2719.
14.Adeleye O, Ajala T, Adekoya OA, Adeleye AI. Effective Dose Regimen of STZ for STZ-induced Diabetes in a Rat Model. Iranian Journal of Veterinary Medicine. 2024; 18(3), 377-386.
15. Rad L, Keshtmand Z, Mir Noorollahi SM. The effect of probiotic mixture on the gut-brain axis and immune response in male rats infected with Salmonella Typhimurium. Journal of Veterinary Research.2024; 79(4): 249-263.
16. Omoruyi F, Sparks J, Stennett D, Dilworth L. Superoxide dismutase as a measure of antioxidant status and its application to diabetes. InDiabetes. 2020 ; 409-417.
17. Sincihu Y, Lusno MF, Mulyasari TM, Elias SM, Sudiana IK, Kusumastuti K, Su-listyorini L, Keman S. Wistar rats hippocampal neurons response to blood low-density polyethylene microplastics: a pathway analysis of SOD, CAT, MDA, 8-OHdG expres-sion in hippocampal neurons and blood serum Aβ42 levels. Neuropsychiatric disease and treatment. 2023 ; 31:73-83.
18.Mohamed NA, Ithmil MT, Elkady AI, Abdel Salam S. Tauroursodeoxycholic Acid (TUDCA) Relieves Streptozotocin (STZ)-Induced Diabetic Rat Model via Modulation of Lipotoxicity, Oxidative Stress, Inflammation, and Apoptosis. International Journal of Molecular Sciences. 2024; 25(13):6922. https://doi.org/10.3390/ijms25136922
19.Urcar Gelen S, Ozkanlar S, Gedikli S, Atasever M. The investigation of the effects of monosodium glutamate on healthy rats and rats with STZ‐induced diabetes. Journal of Biochemical and Molecular Toxicology. 2024 Jan;38(1):e23612.
20.Darenskaya M, Kolesnikov S, Semenova N, Kolesnikova L. Diabetic nephropathy: significance of determining oxidative stress and opportunities for antioxidant therapies. International Journal of Molecular Sciences. 2023;24(15):12378.
21.Dinić S, Arambašić Jovanović J, Uskoković A, Mihailović M, Grdović N, Tolić A, Rajić J, Đorđević M, Vidaković M. Oxidative stress-mediated beta cell death and dys-function as a target for diabetes management. Frontiers in endocrinology. 2022;13:1006376.
22.González P, Lozano P, Ros G, Solano F. Hyperglycemia and oxidative stress: An in-tegral, updated and critical overview of their metabolic interconnections. International Journal of Molecular Sciences. 2023;24(11):9352.
23. Azimi Abarghoei S, Raisi M, Sadeghi Nejad S, Mosaddegh MH. Determining the Effectiveness of Lactobacillus Casei in Camel Milk on Lipid and Sugar Parameters in Type 1 Diabetic Rats. SSU_Journals. 2024;32(3):7686-7694.
24.Scărlătescu AI, Voicu SN, Piţuru M, Apetroaei M, velescu BŞ, Udeanu DI, Nedea MI, Arsene AL. Probiotic effects on oxidative stress pathways in diabetes. Farmacia. 2024;72(6).
25.Shabani M, Hassanpour E, Aghighi F, Mohammadifar M, Bahmani F, Talaei SA. A Probiotic Mixture Decreases Neuropathy and Oxidative Stress Markers in Diabetic Rats. OBM Neurobiology. 2024 :8(3):1-8.
26.Mosallami S, Parsaeimehr M, Ahmadi hamedani M, Jebelli javan A, Moezifar M. Ef-fect of probiotic Lactobacillus plantarum ktbs2 on serum total oxidant and antioxidant, oxidative stress index and some biochemical parameters in induced diabetic rats. Scien-tific-research iranian veterinary journal. 2020;16(3 ):94-105.
27.Ahmadian F, Ejtahed H S, Javadi M, Razmpoosh E, Mirmiran P, Azizir F. The Ef-fects of Probiotic Supplementation on Glycemic Control, Insulin Resistance and In-flammatory Biomarkers of Type 2 Diabetic Patients. Iranian Journal of Endocrinology and Metabolism 2017; 19 (2) :72-83.
28.Zhang Z, Bai L, Guan M, Zhou X, Liang X, Lv Y, Yi H, Zhou H, Liu T, Gong P, Sun J. Potential probiotics Lactobacillus casei K11 combined with plant extracts reduce markers of type 2 diabetes mellitus in mice. Journal of Applied Microbiology. 2021;131(4):1970-1982.