بررسی استریولوژیکی و سنجش میزان مالون‌دی‌آلدهید، اوره و کراتینین سرم با اثر عصاره هیدروالکلی زنجبیل بر آسیب کلیوی ناشی از بیس‌فنل‌آ در موش نژاد NMRI
محورهای موضوعی : زیست شناسی سلولی تکوینی گیاهی و جانوری ، تکوین و تمایز ، زیست شناسی میکروارگانیسم
کلید واژه: کلیه, عصاره زنجبیل, بیس‌فنل‌آ, استریولوژی,
چکیده مقاله :
بیس‌فنل‌آ یک ترکیب زنواستروژنی است که به طور گسترده در صنایع کاغذ و پلاستیک استفاده می‌شود. این ترکیب می‌تواند گونه‌های فعال اکسیژن (ROS) را از طریق افزایش استرس اکسیداتیو در اندام‌های مختلف مانند کلیه تولید کند. هدف از این مطالعه بررسی اثر حفاظتی عصاره زنجبیل روی بافت کلیه و برخی پارامترهای بیوشیمیایی سرم در مقابل اثرات سمی بیس‌فنل‌آ می‌باشد.موش‌های نر نژادNMRI با میانگین وزنی 3±32 گرم به طور تصادفی در4 گروه کنترل، بیس‌فنل‌آ (mg/kg/day 240)، عصاره زنجبیل (mg/kg/day500) و بیس‌فنل‌آ + زنجبیل دسته‌بندی شدند (6n=). تیمار دهانی تا 34 روز به طول انجامید و بعد از آن وزن بدن وکلیه چپ ثبت شد. بعد از فیکس شدن بافت، برش‌های بافتی تهیه و به روش هایدن‌هان‌آزان رنگ‌آمیزی شدند. نهایتا مطالعات استریولوژیک روی حجم کلیه، کورتکس و مدولا، لوله‌های کلیوی، جسمک کلیوی و اجزای آن صورت گرفت. همچنین سطوح مالون‌دی‌آلدهید، اوره و کراتینین سرم نیز اندازه‌گیری شد. داده‌ها با روش one way ANOVA آنالیز شدند و 05/0>p معنی‌دار در نظر گرفته شد. افزایش معنی‌داری در وزن کلیه، حجم کلیه، کورتکس، لوله‌های کلیوی و اجزای آن‌ها، گلومرول، تافت، جسمک کلیوی و میزان مالون‌دی‌آلدهید، اوره و کراتینین سرم در گروه بیس‌فنل‌آ در مقایسه با گروه کنترل مشاهده شد. در گروه عصاره زنجبیل + بیس‌فنل‌آ، زنجبیل به طور معنی‌داری پارامترهای نامبرده را در مقایسه با گروه بیس‌فنل‌آ بهبود بخشید.با توجه به این یافته‌ها می‌توان پیشنهاد داد که عصاره زنجبیل با کاهش MDA، اوره و کراتینین سرم و آسیب‌های بافتی احتمالا یک نقش حفاظتی در آسیب ناشی از بیس‌فنل‌آ در کلیه دارد..
Bisphenol A (BPA), an endocrine disrupting compound largely used in plastic and paper industry, can induce reactive oxygen species (ROS) by increasing oxidative stress in many organs including kidney [1,2].The aim of this study was to investigate the protective effect of Ginger extract (GE) on kidney tissue and some serum biochemical parameters against toxicity induced with BPA. Adult male NMRI mice with mean body weight 32±3 g were randomly divided into 4 groups (n=6): Control, BPA (240mg/kg/day), GE (500ml/kg/day) and BPA + GE. Oral treatment was performed till 34 days. At the end of treatments, Body and left kidney weight were recorded. After fixation the tissue, tissue sections were prepared and stained with Haiden Han Azan method and studied stereological to evaluate the volume of kidney, cortex and medulla, renal tubules, renal corpuscle and its components. Serum malondialdehyde (MDA), creatinine and urea levels were also measured. Data were analyzed with One Way ANOVA test. P<0.05 was considered as statistically significant. A significant increase in weight of kidney, volume of kidney, cortex, renal tubules and their epithelium and lumen, glomerolus, taft, renal corpuscle and rare of MDA, creatinine and urea in serum was found in mice treated with BPA compared to the control group (p<0.05). In BPA + GE group, Ginger significantly decreased the mentioned parameters compared to the BPA group (p<0.05). These findings suggest that Ginger extract by reduction in serum MDA, creatinine and urea, and tissue damage, appears to have a protective role in the Bisphenol A -induced injury in renal tissue.
منابع
[1] Ahmed M.A and Sajida H.I. 2012, Protective Effect of Ginger Extract AgainstCisplatin-Induced Hepatotoxicity and Cardiotoxicity in Rats. 21(1): 27-33.
[2] Alonso-Magdalena P., Laribi O., Ropero A.B., Fuentes E., Ripoll C., Soria B., Nadal A. 2005, Low doses of bisphenol A and diethylstilbestrol impair Ca2+signals in pancreatic alpha-cells through a nonclassical membrane estrogen receptor within intact islets of Langerhans. Environ Health Perspect, 113(8): 969-977.
[3] Brotons J. A., Olea-Serrano M. F., Villalobos M., Pedraza V., and Olea N. 1995, Xenoestrogens released from lacquer coatings in food cans.103(6): 608–612.
[4] Chang Y. C., Chuang L. M. 2010, The role of oxidative stress in the pathogenesis of type 2 diabetes: from molecular mechanism to clinical implication. Am J Transl Res, 2(3): 316-331.
[5] Chitra K. C., Latchoumycandane C., Mathur P. P. 2003, Induction of oxidative stress by Bisphenol-A in the epididymal sperm of rats. Toxicology, 14(2): 119-127.
[6] Concolino G., Lubrano C., Ombers M., Santonati A., et al. 1993, Acquired cystic kidney disease: the hormonal hypothesis. Urology, 41(2): 170-175.
[7] Crain D.A. M., Eriksen T., Iguchi S., Jobling H., Laufer G.A., and L. J.Guillette, Jr. 2007, An ecological assessment of bisphenol-A. evidencefromcomparative biology, 24(2): 225-39.
[8] Elshater A.A., Salman M.M.A. and Moussa M.M.A. 2009, Effect of Ginger Extract Consumption on levels of blood Glucose, Lipid profile and Kidney Function in Alloxan Induced-diabetic Rats. Egypt. Acad. J. biology, 2(1): 153-162.
[9] Gonzalez-Parra E., Antonio Herrero J., Elewa U., Bosch R. J., Ortiz Arduan A., Egido J. 2013, Bisphenol A in Chronic Kidney Disease. International Journal of Nephrology, pages. 9.
[10] Guyton A. C., Hall J.E. 2000. Text Book Of Medical Physiology. 10th Edition. W. B. Saunders Company, London.
[11] Helal E. G.E., Badawi M. M.M., Soliman M. G., Abdel-Kawi N. A., Fadel H. A. E., Abozaid N M. G. 2013, Physiological and Histopathological studies on Bisphenol-A compound as xenoestrogen in male albino rats. The Egyptian Journal of Hospital Medicine Jan, 50 : 127 – 136.
[12] Hoseini L., Roozbeh J., Sagheb M., Karbalay-Doust S., Noorafshan A. 2009, Nandrolonedecanoate increases the volume but not the length of the proximal and distal convoluted tubules of the mouse kidney. Micron, 40, pp. 226-230.
[13] Joseph L., Heo J., Park Y., Flora J.R.V., Yoon Y. 2011, Adsorption of Bisphenol A and 17 α-ethinyl estradiol on single walled carbon nanotubes from seawater and brackish water.Desalination, Pages 68-74.
[14] Korkmaz A., Aydogan M., Koankaya D., Barlas N. 2009, Vitamin C coadministration augments bisphenol A, nonylphenol, and octylphenol induced oxidative damage on kidney of rats. Environmental Toxicology , 26(4):325-37.
[15] Kundakovic M., Champagne F. 2011, Epigenetic perspective on the developmental effects of bisphenol A. journal Brain, Behavior, and Immunity, 25(6):1084-93.
[16] Latendresse J.R., Newbold R.R., Weist C.C., DelclosK B. 2001, Polycystic kidney disease induced in F1 sprague-dawley rats fed para-Nonylphenol in a soyfree,caseincontainingdiet.ToxicologicalScinces, 62: 140-147.
[17] Manishasahay. 2012. Basic Nephrology and Acute Kidney Injury. JanezaTrdine.
[18] Niki E., Saito T., Kawakami A., et al. 1984, Inhibition of oxidation of methyl linoleate in solution by vitamin E and vitamin C. Journal BiolChem, 259(7): 4177-4182.
[19] Packer L., Rosen P., Tritschler H. J., King G. L., Azzi A. 2000, Oxidative stress and antioxidants: The antioxidant network, α-lipoic acid and diabetes. In: Packer L. Antioxidants in diabetes management. 1st ed. Basel, Switzerland: Marcel Dekker inc, p. 1-15.
[20] Ramudu S. K., Korivi M., Kesireddy N., Chen Ch. Y., Kuo Ch. H., and Kesireddy S. R. 2011, Ginger Feeding Protects Against Renal Oxidative Damage Caused by Alcohol Consumption in Rats. 21(3): 263–270.
[21] Shereen B.G and Doaa M.Z. 2013, Beneficial effects of green tea extract on liver and kidney function, ultrastructure, lipid profile and hematological parameters in aged male rats. Global veterinaria, 11(2): 191-205.
[22] Šutiakov I., Kovalkovičov N., Tulenková M., Šutiak V. 2012, Bisphenol A And Its Potential Toxic Effects On Living Organisms. Journal of Microbiology,Biotechnology and Food Sciences, 2 (2): 526-535.
[23] Takemura T., Yoshioka., K., Murakami K., Akano N., Okada M ., Aya N., Maki S. 1994, Cellular localization of inflammatory cytokines in human glomerulonephritis. Virchows Arch, 424(5): 459–464.
[24] Tan B. L.L., Kassim N.M., Mohd A.M. 2003, Assessment of pubertal development in juvenile male rats after sub-acute exposure to bisphenol A and nonylphenol.Toxicology letters 4(03): 378-427.
[25] Vandenberg L.N., Maffini M.V., Sonnenschein C., Rubin B.S., Soto A.M. 2009, Bisphenol-A and the great divide: a review of controversies in the field of endocrineDisruption, 30(1): 75–95.
[26] Walaa M.S., Ahmed, Walaa A. M., Nabil T.M. 2015, Bisphenol A Toxicity in Adult Male Rats: Hematological,Biochemical and Histopathological Approach. Global Veterinaria,14 (2): 228-238.
[27] Zahedi A., Fathiazad F., Khaki A., Ahmadnejad B. 2012, Protective Effect of Ginger on Gentamicin-Induced Apoptosis in Testis of Rats. Advanced Pharmaceutical Bulletin, 2(2): 197–200.
[28] Zahedi A., Khaki A., Ahmadi-Ashtiani H.R., Rastegar H., RezazadehS.h. 2010, Zingiberofficinale Protective Effects on Gentamicin’s Toxicity on Sperm in Rats. 9(35): 93-98.