• صفحه اصلی
  • اثرات افزودن ژل رویال به رقیق‌کننده تریس ـ زرده تخم مرغ بر فراسنجه‌های اسپرم قوچ افشاری پس از نگهداری‌ به صورت مایع

اشتراک گذاری

آدرس مقاله


کد مقاله : 13375 بازدید : 94 صفحه: 2553 - 2560

نوع مقاله: پژوهشی

اثرات افزودن ژل رویال به رقیق‌کننده تریس ـ زرده تخم مرغ بر فراسنجه‌های اسپرم قوچ افشاری پس از نگهداری‌ به صورت مایع

محورهای موضوعی : پاتوبیولوژی مقایسه ای

سارا امینی، رضا معصومی،بهنام رستمی، محمدحسین شهیر . 1

1 - .

تاریخ دریافت : 1397/09/29 تاریخ پذیرش : 1397/09/29 تاریخ انتشار : 1397/09/01

کلید واژه: قوچ, مایع منی, ژل رویال, اسپرم,

چکیده مقاله :

مطالعه ی حاضر با هدف بررسی اثرات محافظتی ژل رویال در رقیق کننده تریس بر فراسنجه های تحرک، زنده مانی، ناهنجاری های مورفولوژیک و تمامیت غشای پلاسمایی اسپرم قوچ در طول نگهداری به صورت مایع به مدت 7 روزانجام گرفت. تعداد 64 نمونه اسپرم از 4 راس قوچ افشاری با میانگین سن چهار سال با استفاده از واژن مصنوعی جمع آوری شد. پس از بررسی اولیه، نمونه های منی با هم مخلوط شده و سپس با رقیق کننده تریس ـ زرده بدون ژل رویال(شاهد) یا همراه با غلظت های مختلف ژل رویال (5%، 3%،1%)رقیق گردید. تحرک کلی نمونه های منی با استفاده از سیستم آنالیز کامپیوتری اسپرم (CASA) مورد بررسی قرار گرفت. فراسنجه های مورفولوژی و زنده مانی با روش رنگ آمیزی ائوزین-نیگروزین و یکپارچگی غشا با آزمون تورم هیپواسموتیک (HOST) مورد ارزیابی قرار گرفتند. نمونه های رقیق شده به صورت مایع به مدت یک هفته در دمای 0C4 نگهداری شدند. نتایج نشان داد که درصد تحرک کل نمونه های منی مایع پس از هفت روز نگهداری در دمای 0C4 در تیمار 3 درصد (86/2±25/51) به طور قابل توجهی از دیگر تیمارها بالاتر بود(05/0>P). درصد اسپرم های دارای غشای سالم در نمونه های رقیق شده در رقیق کننده ی حاوی 3 درصد ژل رویال(96/2±53/46) به طور معنی داری از گروه شاهد بالاتر بود(05/0>P). درصد اسپرم های زنده درگروه 3 درصد(37/3±96/56) و 1 درصد(83/2±68/54) ژل رویال به طور معنی داری بیشتر از گروه شاهد بود (05/0>P). به طور کلی، نتایج آزمایش حاضر نشان داد که افزودن 3% ژل رویال به رقیق کننده تریس موجب بهبود فراسنجه های اسپرم قوچ در مدت ذخیره سازی به صورت تازه گردید.

چکیده انگلیسی:

The present study was conducted to evaluate the protective effects of royal jelly in Tris based extender on ram sperm parameters including motility, viability, morphology and plasma membrane integrity during 7 days liquid storage. 64 semen samples were collected with artificial vagina from 4 rams. After initial assessments, semen samples were mixed and then were diluted with Tris based extender having 0 (control), %1, %3 and %5 royal jelly. Motility was assessed with CASA system. Morphology and viability were assessed with Eosin-Negrosin staining method and plasma membrane integrity was assessed with HOST method. Diluted semen samples were kept in 37° for 1 hour and 4° C for 7 days. The results showed that motility percentage (51.25±2.86) in %3 royal jelly supplemented group was significantly higher than other treatment groups after 7 days’ liquid storage of semen (P< 0.05). The percentage of sperm cells with functional plasma membrane (46.53± 2.96) in %3 royal jelly supplemented group was significantly higher than control group (P< 0.05). The percentage of live sperm cells in %3 (56.96±3.37) and in 1% (54.68±2.83) royal jelly supplemented groups were higher than control group (P< 0.05). In conclusion, the results of present study showed that supplementation of %3 royal jelly to Tris based extender improves ram sperm parameters after 7 days’ liquid storage of semen.

منابع و مأخذ:


  1. Alcay, S., Toker, M.B., Onder, N.T. Gokce, E.(2017). Royal jelly supplemented soybean lecithin-based extenders improve post-thaw quality and incubation resilience of goat spermatozoa. Cryobiology. 74, 81-85.
    2.
  2. Amirshahi, T., Najafi, G., Nejati, V. (2014): Protective effect of royal jelly on fertility and biochemical parameters in bleomycin- induced male rats. Iranian J. of ReprodMed.12(3): 209.
    3.
  3. Bogdanov, S. (2011). Royal jelly, bee brood: composition, health, medicine: a review. Lipids, 3(8), 8-19.
    4.
  4. Bouayed, J., Bohn, T. (2010). Exogenous antioxidants–double-edged swords in cellular redox state: health beneficial effects at physiologic doses versus deleterious effects at high doses. Oxid. Med. Cell. Longevity 3(4): 228–237.
    5.
  5. Bucak, M.N., Tekin, N. (2007). Protective effect of taurine, glutathione and trehalose on the liquid storage of ram semen. Small Rumin. Res. 73: 103-108.
    6.
  6. Correa, L.M., Thomas, A., Meyers, S.A. (2007). The macaque sperm actin cytoskeleton reorganizes in response to osmotic stress and contributes to motility and morphology defects. Biol. Reprod. 77: 942–953.
    7.
  7. Crabo, B.G. (1990). Preservation of boar semen: a worldwide perspective. Reprod. Dom. Anim. Suppl, 1: 3-9.
    8.
  8. Dhurvey, M., Gupta, V.K., Nema, S.P., Patidar, A., Shivhare, M., Singh, N., Shakya, V. (2012). Modern semen evaluation techniques in domestic animals: A review. Double Helix Res. 3: 2278-8301.
    9.
  9. Ebisch, I.M., Pierik, F.H., Jong, F.H., Thomas, C.M., Steeger, R.P. (2006). Does folic acid and zinc sulphate intervention affect endocrine parameters and sperm characteristics in men? Intern. J. Androl. 29: 339–345.
    10.
  10. Gancarczyk M, Kuklinska M, Sadowska J, Strzezek J, Bilinska B. (2006). Aromatization and antioxidant capacity in the testis of seasonally breeding bank voles: effects of LH, PRL and IGF–I. Theriogenology 65: 1376–1391.
    11.
  11. Hadad-Kaveh, S. (1987). Winged pharmaceutist. Tehran EnghelabIslami Press, 152p.(Translated in Persian).
    12.
  12. Hanes, J., Simuth, J. (1992). Identification and partial characterization of the major royal jelly protein of the honeybee. J. Apicult Res. 31: 22-26.
    13.
  13. Hove, S.R., Dimick, P.S., Benton, A.W. (1985). Composition of freshly harvested and commercial royal jelly. J Apic. Res. 24: 52–61.
    14.
  14. Husein, M.Q., Haddad, S.G. (2006). A new approache in sheep using royal jelly in comparison with equine chorionic gonadotropin.Anim. Reprod. Sci. 93: 24-33.
    15.
  15. Isidorova, V.A., Czyzewskaa, U., Isidorovab, A.G., Bakier, S. (2009). Gas chromatographic and mass spectrometric characterization of the organic acids extracted from some preparations containing lyophilized royal jelly. J. of Chromatogr.  877: 3776-3780.
    16.
  16. Kasimanickam, R., Kasimanickam, V., Tibary, A.,Pelzer, K. (2011). Effect of semen extenders on sperm parameters of ram semen during liquid storage at 4° C. Small Rumin. Res, 99(2): 208-213.
    17.
  17. King, M.E., Mckelvey, W.A. C., Dingwall, W.S., Matthews, K.P., Gebbie, F.E., Mylne, M.J.A., Stewart, E., Robinson. J.J. (2004). Lambing rates and litter sizes following intrauterine or cervical insemination of frozen-thawed semen with or without oxytocin administration. Theriogenology. 62: 1236-1244.
    18.
  18. Kodai, T., Umebayashi, K., Nakatani, T., Ishiyama, K., Noda, N. (2007). Compositions of royal jelly II.Organic acid glycosides and sterols of the royal jelly of honeybees, Chemical and Pharmaceutical Bulletin. 55: 1528-1531.
    19.
  19. Kuran, M.E., Sirin, E.S., Onal, A.G. (2005). Effect of honyebee royal jelly on the nuclear maturation of bovine oocytes in vitro. Proceeding of the 56 Annual Meeting of the European Association for Animal production, Uppsala, Sweden. 387.
    20.
  20. Manas, G.E., Najafi, G. (2017). Protective effects of royal jelly on the histomorphologic, oxidative stress and sperm parameters in Ofloxacin treated rat. Comp. Clin. Pathology.1-5.
    21.
  21. Maxwell, W.M.C., Watson, P.F. (1996). Recent progress in the preservation of ram semen. Anim. Reprod. Sci. 42, 55–65.
    22.
  22. Michael, A.J., Alexopoulos, C., Pontiki, E.A., Hadjipavlou-Litina, D.J., Saratsis, P., Ververidis, H.N., Boscos, C.M. (2009). Effect of antioxidant supplementation in semen extenders on semen quality and reactive oxygen species of chilled canine spermatozoa. Anim. Reprod. Sci. 112: 119-135.
    23.
  23. Moradi, A.R., Malekinejad, H., Farrokhi-ardabili, F., Bernousi, I. (2013). Royal Jelly improves the sperm parameters of ram semen during liquid storage and serves as an antioxidant source. Small Rumin. Res. 113: 346-352.
    24.
  24. Onal, A.G., Kuran, M., Tapki, I., Sirin, E., Gorgulu, O. (2005). Honeybee royal jelly an alternative source to serum for in vitro maturation of ovine Oocyte. Proceeding of the 56 Annual Meeting of the European Association for Animal production, Uppsala, Sweden. 283.
    25.
  25. Pavel, C.I., Mărghitaş, L.A., Bobiş, O., Dezmirean, D.S., Şapcaliu, A., Radoi, I., Mădaş, M.N. (2011). Biological activities of royal jelly-review. Sci. P. Anim. Sci. Biotech. 44(2):108-118.
    26.
  26. Perumal, P., Selvaraju, S., Selvakumar, S., Barik, A.K., Mohanty, D.N., Das, S., Das, R.K. and Mishra, P.C. (2011). Effect of pre freeze addition of cysteine hydrochloride and reduced glutathione in semen of crossbred jersey bulls on sperm parameters and conception rates. Reprod. Domest. Anim. 46: 636-641.
    27.
  27. Purdy P.H. (2006). A review on goat sperm cryopreservation. Small Rumin. Res. 63: 215–225.
    28.
  28. Ramadan, M.F., Al-Ghamdi, A. (2012). Bioactive compounds and health-promoting properties of royal jelly-A Review. J. Funct. Foods. 4: 39-52.
    29.
  29. Salamon, S. and Maxwell, W.M.C. (2000). Storage of ram semen. Anim. Reprod. Sci. 62: 77-111.
    30.
  30. Senger, P.L. (2003). Pathways of pregnancy and parturition.2nd ed. Cadmus Professional Communication. 365.
    31.
  31. Silici, S., Ekmekcioglu, O., Eraslan, G., Demirtas, A. (2009). Antioxidative effect of royal jelly in cisplatin-induced testes damage. Urology. 74(3): 545-51.
    32.
  32. Shahzad, Q., Mehmood, M.U., Khan, H., Husna, A., Qadeer, S., Azam, A., Naseer, Z., Ahmad, E., Safdar, M., Ahmad, M.(2016). Royal jelly supplementation in semen extender enhances post-thaw quality and fertility of Nili-Ravi buffalo bull sperm. Anim. Reprod. Sci. 167: 83-88.
    33.
  33. Tamura, S., Kono, T., Harada, C., Yamaguchi, K., Moriyama, T. (2009). Estimation and characterisation of major royal jelly proteins obtained from the honeybee Apismerifera. Food Chem. 114: 1491–1497.
    34.
  34. Tuncer, P.B., Sarıözkan, S., Bucak, M.N., Ulutaş, P.A., Akalın, P.P., Büyükleblebici, S., Canturk, F. (2011). Effect of glutamine and sugars after bull spermatozoa cryopreservation. Theriogenology. 75: 1459-1465.
    35.
  35. Yotov, S., Fasulkov, I., Vassilev, N. (2011). Effect of ejaculation frequency on spermatozoa survival in diluted semen from Pleven Blackhead rams. Turk. J. Vet. Anim. Sci. 35: 117-122.
    36.
_||_
 

مقالات مرتبط

حقوق این وب‌سایت متعلق به سامانه مدیریت نشریات دانشگاه آزاد اسلامی است.
حق نشر © 1403-1400

صفحه اصلی| عضویت/ ورود| درباره سند| تماس با ما|
[English] [العربية] [en] [ar]