بررسی اثرات ضد دردی اناریجه متعاقب درد التهابی ناشی از اسید استیک در موش کوچک آزمایشگاهی
محورهای موضوعی :
امید عصاریان
1
,
شاهین حسنپور
2
*
,
حسین اریک آغاجی
3
1 - دانشجوی دکتری عمومی دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
2 - گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
3 - گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی واحد علوم و تحقیقات
کلید واژه: اناریجه, ضد دردی, تست رایت, موش,
چکیده مقاله :
درد نوروپاتیک شرایط مزمنی است که با مکانیسم‌های پیچیده از طریق میانجی-های عصبی انجام می‌شود. بنابراین، هدف از مطالعه حاضر بررسی اثرات ضد دردی اناریجه متعاقب درد التهابی ناشی از اسید استیک در موش کوچک آزمایشگاهی بود. در این مطالعه 85 موش نر بالغ به 4 آزمایش با 4 گروه تقیبم شدند. در آزمایش 1، حیوانات صفاقی سالین، عصاره اناریجه (100، 200 و 400 میلی گرم بر کیلوگرم) و مورفین (5 میلی گرم بر کیلوگرم) را دریافت کردند. در آزمایش 2، حیوانات با سالین، عصاره اناریجه (400 میلی گرم بر کیلوگرم)، نالوکسان (2 میلی گرم بر کیلوگرم) و تزریق همزمان نالوکسان + اناریجه دریافت کردند. آزمایش 3 و 4 مشابه آزمایش 2 بود، به جز موش هایی که به جای نالوکسان، L-NAME (10 میلی گرم بر کیلوگرم) و سیپروهپتادین (4 میلی گرم بر کیلوگرم) تزریق شدند. سپس تزریق اسید استیک انجام و درصد مهار انقباضات شکمی ثبت شد. براساس یافته¬ها، تزریق سطوح 200 و 400 میلی گرم عصاره اناریجه بطور معنی داری موجب مهار انقباضات شکمی ناشی از تزریق اسید استیک شد (05/0P<). تزریق توام نالوکسان به علاوه اناریجه بطور معنی داری موجب کاهش اثرات ضد دردی اناریجه در مقایسه با گروه اناریجه شد (05/0P<). تزریق توام L-NAME به علاوه عصاره اناریجه بطور معنی داری موجب مهار انقباضات شکمی ناشی از تزریق اسید استیک شد (05/0P<). تزریق توام L-NAME به علاوه اناریجه بطور معنی داری موجب مهار انقباضات شکمی ناشی از تزریق اسید استیک و مهار انقباضات شکمی ناشی از تزریق اسید استیک شد (05/0P<). نتایج نشان دهنده این است که اناریجه دارای فعالیت ضد دردی بوده و این اثرات از طریق گیرنده‌های اوپیوئیدرژیک و نیترارژیک در موش سوری انجام می‌شود.
Neuropathic pain is a chronic condition that is carried out by complex mechanisms through nerve mediators. Therefore, the aim of the present study was to determine Anti-nociceptive effects of Froriepia subpinnata extract following Acid acetic induced inflammatory pain in mice. In this study, 85 adult male mice were divided into 4 experiments with 4 groups. In experiment 1, peritoneal animals received saline, Froriepia subpinnata (100, 200, and 400 mg/kg) extract and morphine (5 mg/kg). In experiment 2, animals received saline, Froriepia subpinnata extract (400 mg/kg), naloxone (2 mg/kg), and naloxone + Froriepia subpinnata co-injection. Experiments 3 and 4 were identical to Experiment 2, except that rats were injected with L-NAME (10 mg/kg) and cyproheptadine (4 mg/kg) instead of naloxone. Writhing test was done by, injection of the acetic acid and the percentage of inhibition of abdominal contractions was recorded. Based on the findings, Froriepia subpinnata significantly inhibited the abdominal contractions caused by the injection of acetic acid (P<0.05). The co-injection of naloxone plus Froriepia subpinnata significantly reduced the analgesic effects of Froriepia subpinnata compared to the troxerutin group (P<0.05). The combined injection of L-NAME + Froriepia subpinnata significantly inhibited abdominal contractions caused by acetic acid injection (P<0.05). The combined injection of L-NAME + Froriepia subpinnata significantly inhibited abdominal contractions caused by acetic acid injection (P<0.05).
1. Chiu IM, Ribeiro F, Woolf CJ. Pain and infection: pathogen detection by nociceptors. Pain. 2016;157(6):1192.
2. Zarei M, Mohammadi S, Abolhassani N, ASGARI NM. The antinociceptive effects of hydroalcoholic extract of bryonia dioica in male rats. 2015.
3. Izadpanah E, Nikandam F, Moloudi MR, Hassanzadeh K. Evaluation of the analgesic effect of hydroalcoholic extract of Cinnamomum in rats. Scientific Journal of Kurdistan University of Medical Sciences. 2016;21(4):41-8.
4. Zarei M, Mohammadi S, Shahidi S, Fallahzadeh AR. Effects of Sonchus asper and apigenin-7-glucoside on nociceptive behaviors in mice. Journal of Pharmacy & Pharmacognosy Research. 2017;5(4):227-37.
5. Tekin S, Erden Y, Colak C, Sandal S. Effects of chronic central administration of irisin on food intake, body weight and body temperature in the rats. 2014.
6. Duan H, Ma B, Ma X, Wang H, Ni Z, Wang B, et al. Anti-diabetic activity of recombinant irisin in STZ-induced insulin-deficient diabetic mice. International journal of biological macromolecules. 2016;84:457-63.
7. Mani BK, Puzziferri N, He Z, Rodriguez JA, Osborne-Lawrence S, Metzger NP, et al. LEAP2 changes with body mass and food intake in humans and mice. The Journal of clinical investigation. 2019;129(9):3909-23.
8. Ikeda H, Yatomi Y, Yanase M, Satoh H, Maekawa H, Ogata I, et al. Biological activities of novel lipid mediator sphingosine 1-phosphate in rat hepatic stellate cells. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 2000;279(2):G304-G10.
9. Elias E, Hruban Z, Wade JB, Boyer JL. Phalloidin-induced cholestasis: a microfilament-mediated change in junctional complex permeability. Proceedings of the National Academy of Sciences. 1980;77(4):2229-33.
10. de Buy Wenniger LM, Beuers U. Bile salts and cholestasis. Digestive and Liver Disease. 2010;42(6):409-18.
11. Shearn CT, Fennimore B, Orlicky DJ, Gao YR, Saba LM, Battista KD, et al. Cholestatic liver disease results increased production of reactive aldehydes and an atypical periportal hepatic antioxidant response. Free Radical Biology and Medicine. 2019;143:101-14.
12. Silva ASCPd. BSEP drug inhibition and cholestasis: Development of a Pharmacokinetic model 2016.
13. Lefkowitch JH. Scheuer's liver biopsy interpretation E-Book: Elsevier Health Sciences; 2020.